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[국내논문] Lipopolysaccharide로 활성화된 RAW 264.7 세포에서 적하수오(Polygonum multiflorum) 추출물의 항염증 효과 검증
Anti-inflammatory effect of Polygonum multiflorum extraction in activated RAW 264.7 cells with lipopolysaccharide 원문보기

한국식품저장유통학회지 = Korean journal of food preservation, v.21 no.5, 2014년, pp.740 - 746  

이은수 (대구한의대학교 화장품약리학과) ,  김현정 (대구한의대학교 화장품약리학과) ,  유재묘 (대구한의대학교 화장품약리학과) ,  조용훈 (대구한의대학교 화장품약리학과) ,  김동인 (대구한의대학교 화장품약리학과) ,  신유현 (대구한의대학교 화장품약리학과) ,  조영제 (경북대학교 식품공학부) ,  권오준 (대경지역사업평가원) ,  안봉전 (대구한의대학교 화장품약리학과)

초록
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적하수오 추출물의 추출용매별 항염증 작용을 알아보기 위해 LPS로 자극된 RAW 264.7 세포를 이용하여 실험을 진행 한 결과 열수 추출물 및 70% 에탄올 추출물 모두 $100{\mu}g/mL$에서 60%이상의 NO 생성 억제 율을 보이는 것을 확인 하였다. 또한 사이토 카인들에 대하여 적하수오 추출물은 TNF-${\alpha}$, IL-$1{\beta}$, IL-6, $PGE_2$ 생성량은 농도 의존적으로 감소하였고, 이는 적하수오 추출물이 염증성 사이토 카인의 발현을 억제 하여 염증 발생을 억제 할 수 있다고 할 수 있다. PMW는 $100{\mu}g/mL$의 농도에서 iNOS 단백질 발현량이 89%, COX-2는 54%의 효과를 나타내었으며, PME는 $100{\mu}g/mL$의 농도에서 iNOS 91%, COX-2는 57%의 단백질 발현 저해효과가 있음을 확인 할 결과로 보아 적하수오는 대식세포에서 NO, TNF-${\alpha}$, IL-$1{\beta}$, IL-6, PGE2 iNOS, COX-2 발현을 억제 하며, 특히 적하수오 70% 에탄올 추출물의 경우 저 농도에서부터 효과를 나타내어 우수한 항염증 소재임을 확인 할 수 있었다.

Abstract AI-Helper 아이콘AI-Helper

The anti-inflammatory effects of Polygonum multiflorum water extracts (PMWs) and Polygonum multiflorum 70 % ethanol extracts(PMEs) were investigated using lipopolysaccharide-induce by inflammatory response. The inhibitory effects of PMWs and PMEs on the production of nitric oxide (NO) and pro - infl...

Keyword

AI 본문요약
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문제 정의

  • 최근 사회가 발전함에 따라 사람들의 건강에 대한 관심도가 급증하면서 피부 트러블을 보완 할 수 있는 천연 항염증 소재에 대한 관심이 증대되고 있으나 아직 다양한 천연소재들이 개발되어 있지 않다(11). 이에 본 논문에서는 마디 풀과의 여러해살이풀(Polygonum multiflorum)의 덩이뿌리로 간을 보하고 신의 기능을 더하여 혈을 보하여 풍사를 제거하는 효능이 있고 간양이 성하여 생긴 풍증, 머리가 희어지는 현상, 어지러운 혈이 허하여 어지러운 증상, 허리와 무릎에 힘이 없음 등을 치료하는 데에 활용 되고 있는(12-14) 적하수오(Polygonum multiflorum)의 추출방법에 따른 염증 억제 효과를 실험을 통하여 증명하고, 피부 트러블을 완화하는 천연 항염증 소재 개발을 위해 본 논문을 활용하고자 한다.
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질의응답

핵심어 질문 논문에서 추출한 답변
대식세포는 어떤 염증성 인자를 생성하여 염증반응이 매개 되는가? 대식세포는 대표적인 면역세포로써(3), 동물 체내 모든 조직에서 분포하며, 세균이나 이물질을 탐식 제거하는 과정에서 IL-1β(Interleukin 1-β), IL-6(interleukin-6), TNF- α(tumor necrosis factor- α)등의 염증 매개 물질들을 분비하여 초기 염증 반응에 주요 역할을 담당한다(4,5). 또한, iNOS(inducible nitric oxide synthase)와COX-2(cyclooxygenase2)의 발현을 유도하여 NO(nitric oxide) 및 PGE2(prostaglandin E2) 와 같은 염증성 인자가 생성됨으로써 염증반응이 매개 된다(6,7). 구체적으로 살펴보면, NO는 체내 방어기능, 신호전달기능, 신경독성, 혈관 확장 등의 다양한 생리기능을 가지고 있으며, 3종류의 NOS(nitric oxide synthase), nNOS(neuronal nitric oxide synthase), eNOS(endoterial nitric oxide synthase), iNOS(inducible nitric oxide synthase) 에 의해 합성된다.
염증은 어떤 역할을 하는가? 염증은 생명체의 생로병사의 과정에서 중요한 병리적 요소로 작용하며, 급성 염증은 화학적 혹은 물리적 자극 등에 대항하는 인체의 방어 기전이며, 조직이나 장기의 손상을 회복시키는 기전으로서 중요한 역할을 담당하고 있다. 염증이 유발되는 과정은 그 자체로는 질병으로 취급받지 않지만, 장기간 지속 할 경우 다른 질환을 유발하는 원인으로 작용하기도 한다(1).
NO는 체내에서 어떤 기능을 가지고 있는가? 또한, iNOS(inducible nitric oxide synthase)와COX-2(cyclooxygenase2)의 발현을 유도하여 NO(nitric oxide) 및 PGE2(prostaglandin E2) 와 같은 염증성 인자가 생성됨으로써 염증반응이 매개 된다(6,7). 구체적으로 살펴보면, NO는 체내 방어기능, 신호전달기능, 신경독성, 혈관 확장 등의 다양한 생리기능을 가지고 있으며, 3종류의 NOS(nitric oxide synthase), nNOS(neuronal nitric oxide synthase), eNOS(endoterial nitric oxide synthase), iNOS(inducible nitric oxide synthase) 에 의해 합성된다. 이들 NOS 중 iNOS에 의한 NO생성이 절대적으로 많으며 이는 병리적으로 중요한 작용을 한다(8).
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참고문헌 (23)

  1. Higuchi M, Higashi N, Taki H, Osawa T (1990) Cytolytic mechanism of activated macrophages. Tumor necrosis factor and L-arginine-dependent mechanism acts as synergistically as the major cytolytic mechanism of activated macrophages, J Immunol, 144, 1425-31. 

  2. Hernandez-Ledesma B, Hsieh CC, de Lumen BO (2009) Antioxidant and anti-inflammatory properties of cancer preventive peptide lunasin in RAW 264.7 macrophages. Biochem, 390, 803-8. 

  3. Yonglimsa (2000) National Professor of Herbology College of Oriental Medicine. Herbology, Seoul, Korea, p 583-4. 

  4. Hippeli S, Elstner EF (1999) Inhibition of biochemical model reactions for inflammatory processes by plant exreacts: a review on recent developments. Free Radic Res, 31 Supp l, S81-7. 

  5. MacMicking J, Xie QW, Nathan C (1997) Nitric oxide and macrophage fuction. Annu Rev Immunol, 15, 323-50. 

  6. Albina JE, Reichner JS (1999) Nitric oxide in inflammation and immunity. New Horiz, 3, 46-64. 

  7. Lee YS. Kim HS, Kim SK, Kim SD (2000) IL-6 mRNA Expression in Mouse Peritoneal Macrophages and NIH3T3 Fibroblasts in Response to Candida albicans, J Microbiol Biotechnol, 10, 8-15. 

  8. Sinilsangsa (2005) Herbal pharmacology textbook compilation committee. Herbal Pharmacology, 755-6. 

  9. Hirohashi N, Morrison DC (1996) Low-dose lipopolysaccharide (LPS) pretreatment of mouse macrophage in vitro. Infect Immun, 64, 1011. 

  10. Mu MM, Chakravotty D, Sugiyama, Koide N, Takahashi K, Morei I, Yoshida T and Yokochi T (2001) The inhibitory action of quercetin on lipopolysaccharideinduced nitric oxide production in RAW 264.7 macrophage cells. J Endotoxin Res, 7, 431-8. 

  11. Won SJ, Park HJ, Lee KT (2008) Inhibition of LPS induced iNOS, COX-2 and cytokines expression by salidroside through the NF- $\kappa$ B inactivation in RAW 264.7 cells. Korean J Pharmacogn, 39, 110-7. 

  12. Funk CD (2001) Prostaglandins and leukotrienes advances in eicosanoid biology. Science, 294, 1871-1875. 

  13. Ramadori G, Damme JV, Rieder H, Buschenfelde KH (1988) Interleukin 6, the third mediator of acute phase reaction, modulates hepatic protein synthesis in heman and mouse. Comparison with interleukin $1{\beta}$ and tumor necrosis factor- $\alpha$ . Eur J Immunol, 18, 1259-1264. 

  14. Tetley TD (2005) Inflammatory cells and chronic obstructive pulmonary disease. Curr Drug Targets Inflamm Allergy, 4, 607-18. 

  15. Park SC, Son DY (2011) Inhibitory effects of Euphorbiasupina Eafin on the production of proinflammatory mediator by LPS-stimulated RAW 264.7 macrophages. Food Sci Nutr, 40, 486-92. 

  16. Maruotti N, Cantatore FP, Crivellato E, Vacca A, Ribatti D (2007) Macrophages in rheumatoid arthritis. Histopathol, 22, 581-6. 

  17. McCartney-Francis N, Allen JB, Mizel DE, Albina JE, Xie QW, Nathan CF, (1993) Suppression of arthritis by an inhibitor of nitric oxide synthase. J Exp Med, 178, 749-54. 

  18. Ko SK, Pyo MY (2011) Anti-inflammatory effect of Inonotus obliquus extracts in lipopolysaccharide- induced mouse peritoneal macrophage. Korean J Pharmacogn, 42, 253-259. 

  19. Lee SJ, Lim KT (2008) Phytogly coprotein inhibits interleukin- $1{\beta}$ and interleukin-6 via p38 mitogenactivated protein kinase in lipopolysaccharide-stimulated RAW 264.7 cells. Naunyn schmi Arch Pharmacol, 377, 45-54. 

  20. Horwood NJ, Page TH, McDaid JP, Palmer CD, Campbell j, Mahon T, Brennan FM, Webster D, Foxwell BM (2006) Bruton's tyrosine kinase is required for TLR2 and TLR4-induced TNF, but not IL-6, production. J Immunol, 176, 3635-41. 

  21. Kang TB., Yoon TJ (2011) Effect of herbal composition on alcohol degradation and anti-inflammatory activity in mice. Korean J Food Nutr, 24, 489-495. 

  22. An deokgyun (1999) Gyohaksa, Korean herbology book, Seoul, Korea, 675. 

  23. Aeberi D, Oertle S, Mauron H, Reichenbach S, Jordi B, Villiger PM (2002) Inhibition of the TNF pathway : use of infliximab and etanercept se remission - inducing agents in cases of therapy-resistant chronic inflammatory disorders. Swiss Med 132, 414-22. 

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