$\require{mediawiki-texvc}$

연합인증

연합인증 가입 기관의 연구자들은 소속기관의 인증정보(ID와 암호)를 이용해 다른 대학, 연구기관, 서비스 공급자의 다양한 온라인 자원과 연구 데이터를 이용할 수 있습니다.

이는 여행자가 자국에서 발행 받은 여권으로 세계 각국을 자유롭게 여행할 수 있는 것과 같습니다.

연합인증으로 이용이 가능한 서비스는 NTIS, DataON, Edison, Kafe, Webinar 등이 있습니다.

한번의 인증절차만으로 연합인증 가입 서비스에 추가 로그인 없이 이용이 가능합니다.

다만, 연합인증을 위해서는 최초 1회만 인증 절차가 필요합니다. (회원이 아닐 경우 회원 가입이 필요합니다.)

연합인증 절차는 다음과 같습니다.

최초이용시에는
ScienceON에 로그인 → 연합인증 서비스 접속 → 로그인 (본인 확인 또는 회원가입) → 서비스 이용

그 이후에는
ScienceON 로그인 → 연합인증 서비스 접속 → 서비스 이용

연합인증을 활용하시면 KISTI가 제공하는 다양한 서비스를 편리하게 이용하실 수 있습니다.

초록
AI-Helper 아이콘AI-Helper

화학농약의 오남용은 환경오염을 유발하고, 사람의 건강에 악영향을 미치므로 그 대안으로 미생물을 이용한 생물학적 방제에 대한 관심이 높아지고 있다. 본 연구에서는 환경에서 안정성을 유지할 수 있는 생물방제균을 확보하기 위하여 잿빛곰팡이병균인 Botrytis cinerea의 생육을 억제할 수 있는 Bacillus 속 균주를 탐색한 후, 선정된 균주의 항진균 물질 생산을 위한 조건, 항진균 기작 및 물리화학적 안정성에 대하여 조사하였다. 가장 높은 항진균 활성을 가진 균주는 고추의 근권 토양에서 분리된 AF4 균주였으며, 표현형적 특성 및 16S rRNA 유전자 염기 서열에 근거하여 동정한 결과, Bacillus subtilis로 확인되었다. AF4 균주는 최적 탄소원으로 glycerol을, 최적 질소원으로 casein을 요구하였으며, 25-40℃ 및 pH 7-10에서 항진균 활성을 나타내었다. 최적조건에서 항진균 활성은 140±3 AU/ml로, 기본배지보다 활성이 증가했음을 알 수 있었다. AF4 균주는 B. cinereas 균사를 형태적으로 변화시킴으로써 항진균 효과를 나타내는 것으로 추정되었으며, 다양한 식물병원성 곰팡이의 생육을 억제할 수 있었다. 또한 AF4 균주가 생성하는 항진균 물질은 열, pH, 유기용매 및 단백질 분해효소 처리에도 항진균 활성을 유지하였으므로 대단히 안정한 물질인 것으로 판단되었다. 따라서 Bacillus subtilis AF4는 다양한 곰팡이유래 식물질병방제에 적용가능성이 높은 균주임을 알 수 있었다.

Abstract AI-Helper 아이콘AI-Helper

In this study, to retain a stable bacterial inoculant, Bacillus strains showing antifungal activity were screened. The improved production, antifungal mechanism, and stability of the antifungal metabolite by a selected strain, AF4, a potent antagonist against phytopathogenic Botrytis cinerea, were a...

주제어

AI 본문요약
AI-Helper 아이콘 AI-Helper

* AI 자동 식별 결과로 적합하지 않은 문장이 있을 수 있으니, 이용에 유의하시기 바랍니다.

문제 정의

  • B. subtilis AF4가 가지는 생리활성을 보다 구체적으로 조사하기 위하여 식물생육 촉진 활성과 길항 가능한 곰팡이의 종류를 조사하였다. 실험 균주의 배양상등액은 Nessler 시약과 Salkowsky 시약에 의하여 각각 노란색과 분홍색으로 변화됨에 따라 암모니아와 식물성장호르몬인 indole-3-acetic acid를 생성할 수 있음을 알 수 있었다 (Fig.
  • 또한 내 생포자를 형성하는 Bacillus 속 균주는 열악한 환경에서도 안정성을 유지할 수 있기 때문에 생물방제균으로서 큰장점을 가진다[15, 20]. 따라서 본 연구에서는 다양한 농작물의근권 토양으로부터 Bacillus 속 균주를 분리하여 식물병원성곰팡이에 대한항진균 활성 및 식물생육 촉진 활성을 조사함으로써 생물학적 방제에 이용될 수 있는 새로운 토착 미생물자원을 확보하고자 하였다.
본문요약 정보가 도움이 되었나요?

참고문헌 (25)

  1. Besson, F., Chevanet, C. and Michel, G. 1987. Influence of the culture medium on the production of iturin A by Bacillus subtilis. J. Gen. Microbiol. 3, 767-772. 

  2. Bhaskar, N., Sudeepa, E. S., Rashmi, H. N. and Tamil, S. A. 2007. Partial purification and characterization of protease of Bacillus proteolyticus CFR3001 isolated from fish processing waste and its antibacterial activities. Bioresour. Technol. 98, 2758-2764. 

  3. Botelho, G. R. and Mendonca-Hagler, L. C. 2006. Fluorescent Pseudomonads associated with the rhizosphere of crop - an overview. Braz. J. Microbiol. 37, 401-416. 

  4. Chaiharn, M., Chunhaleuchanon, S. and Lumyong, S. 2009. Screening siderophore producing bacteria as potential biological control agent for fungal rice pathogens in Thailand. World. J. Microbiol. Biotechnol. 25, 1919-1928. 

  5. Chitarra, G. S., Breeuwer, P., Nout, M. J. R., van Aelst, A. C., Rombouts, F. M. and Abee, T. 2003. An antifungal compound produced by Bacillus subtilis YM10-20 inhibits germination of Penicillium roqueforti conidiospores. J. Appl. Microbiol. 94, 159-166. 

  6. Choudhary, D. K. and Johri, B. N. 2009. Interactions of Bacillus spp. and plants - with special reference to induced systemic resistance (ISR). Microbiol. Res. 164, 493-513. 

  7. Dye, R., Pal, K. K., Bhatt, D. M. and Chauhan, S. M. 2004. Growth promotion and yield enhancement of peanut (Arachis hypogaea L.) by application of plant growth-promoting rhizobacteria. Microbiol. Res. 159, 371-394. 

  8. Franken, P. 2012. The plant strengthening root endophytic Piriformospora indica: potential application and the biology behind. Appl. Microbiol. Biotechnol. 96, 1455-1464. 

  9. Garcia-Tabares, F., Herraiz-Tomico, T., Amat-Guerri, F. and Bilbao, J. L. G. 1987. Production of 3-indoleacetic acid and 3-indolelactic acid in Azotobacter vinelandii cultures supplemented with tryptophan. Appl. Microbiol. Biotechnol. 25, 502-506. 

  10. Gerhardt, P., Murray, R. G. E., Costilow, R. N., Nester, E. W., Wood, W. A., Krieg, N. R. and Phillips, G. B. 1981. Manual of methods for general bacteriology. American Society for Microbiology, Washington, D.C. 

  11. Getha, K. and Vikineswary, S. 2002. Antagonistic effects of Streptomyces violaceusniger strain G10 on Fusarium oxysporum f.sp. cubense race 4: Indirect evidence for the role of antibiosis in the antagonistic process. J. Ind. Microbiol. Biotechnol. 28, 303-310. 

  12. Gu, X., Zheng. Z., Yu, H., Wang, J., Liang, F. and Liu, R. 2005. Optimization of medium constituents for a novel lipopeptide production by Bacillus subtilis MO-01 by a response surface method. Proc. Biochem. 40, 3196-3201. 

  13. Kishore, G. K., Pande, S. and Podile, A. R. 2005. Biological control of collar rot disease with broad-spectrum antifungal bacteria associated with groundnut. Can. J. Microbiol. 51, 123-132. 

  14. Lane, D. J. 1991. 16S/23S rRNA sequencing, pp. 115-175, In E. Stackebrandt and M. Goodfellow (eds.), Nucleic acid techniques in bacterial systematics. John Wiley and Sons, New York. 

  15. Li, W., Robertsb, D. P., Dery, P. D., Meyer, S. L. F., Lohrke, S., Lumsden, R. D. and Hebbar, K. P. 2002. Broad spectrum antibiotic activity and disease suppression by the potential biocontrol agent Burkholderia ambifaria BC-F. Crop Prot. 21, 129-135. 

  16. Mizumoto, S. and Shoda, M. 2007. Medium optimization of antifungal lipopeptide, iturin A, production by Bacillus subtilis in solid-state fermentation by response surface methodology. Appl. Microbiol. Biotechnol. 76, 101-108. 

  17. Montealegre, J. R., Reyes, R., Perez, L. M., Herrera, R., Silva, P. and Besoain, X. 2003. Selection of bioantagonistic bacteria to be used in biological control of Rhizoctonia solani in tomato. Electron. J. Biotechnol. 6, 115-127. 

  18. Palaniyandi, S. A., Yang, S. H., Zhang, L. and Suh, J. W. 2013. Effects of actinobacteria on plant disease suppression and growth promotion. Appl. Microbiol. Biotechnol. 97, 9621-9636. 

  19. Paul, D. and Lade, H. 2014. Plant-growth-promoting rhizobacteria to improve crop growth in saline soils: a review. Agron. Sustain. Dev. 34, 737-752. 

  20. Sansinenea, E. and Ortiz, A. 2011. Secondary metabolites of soil Bacillus spp. Biotechnol. Lett. 33, 1523-1538. 

  21. Schwyn, B. and Neilands, J. B. 1987. Universal chemical assay for the detection and determination of siderophores. Anal. Biochem. 160, 47-56. 

  22. Slininger, P. and Shea-Wilbur, M. 1995. Liquid-culture pH, temperature, and carbon (not nitrogen) source regulate phenazine productivity of take-all biocontrol agent Pseudomonas fluorescens 2 - 79. Appl. Microbiol. Biotechnol. 43, 794-800. 

  23. Szeszak, F. and Szabo, G. 1967. Antibiotic production of hyphal fractions of Streptomyces griseus. Appl. Microbiol. 15, 1010-1013. 

  24. Tang, Y. W. and Bonner, J. 1947. The enzymatic inactivation of indoleacetic acid I. Some characteristics of the enzyme contained in pea seedlings. Arch. Biochem. 13, 17-25. 

  25. Vyas, P., Rahi, P., Chadh, B. S. and Gulati, A. 2014. Statistical optimization of medium components for mass production of plant growth-promoting microbial inoculant Pseudomonas trivialis BIHB 745 (MTCC5336). Indian J. Microbiol. 54, 239-241. 

저자의 다른 논문 :

관련 콘텐츠

오픈액세스(OA) 유형

GOLD

오픈액세스 학술지에 출판된 논문

이 논문과 함께 이용한 콘텐츠

섹션별 컨텐츠 바로가기

AI-Helper ※ AI-Helper는 오픈소스 모델을 사용합니다.

AI-Helper 아이콘
AI-Helper
안녕하세요, AI-Helper입니다. 좌측 "선택된 텍스트"에서 텍스트를 선택하여 요약, 번역, 용어설명을 실행하세요.
※ AI-Helper는 부적절한 답변을 할 수 있습니다.

선택된 텍스트

맨위로