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천연물 및 식품소재의 항알레르기 활성평가
Evaluation of Antiallergic Activities of Natural and Food Materials 원문보기

식품과학과 산업 = Food science and industry, v.48 no.1, 2015년, pp.50 - 55  

신희순 (한국식품연구원) ,  손동화 (한국식품연구원)

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성능/효과

  • 이는 타이트정크션의 occludin, zonula occludens-1, junctional adhesion molecule-1 발현을 증가시킴으로써 장관 장벽을 강화시키는 것으로 확인되었다. in vivo에서 난백알부민의 섭취 3시간 후, 혈액에 존재하는 난백알부민을 살펴본 결과, 체내에서도 확실하게 알레르겐의 통과를 억제한다는 것을 확인할 수 있었다. 또한 황금의 활성성분을 조사한 결과, 황금의 주성분인 바이칼레인(baicalein)이 장관장벽기능을 강화시킴으로써 알레르겐의 통과를 억제한다는 것을 밝혀냈고, 이것은 식품알레르기 마우스 모델에서 황금을 섭취시킨 군이 식품알레르기의 증상이 확연히 개선된다는 것을 확인할 수 있었다(18)(그림 5).
  • 의약품과는 달리 일부 소재들은 장기복용에도 독성이나 부작용이 없기 때문에, 소비자들 또한 안전하게 섭취 가능하다는 것이다. 두 번째는 천연 물이나 식품은 여러 가지 성분들의 혼합물이기에 한 가지 표적 작용기작만이 작용하는 것이 아니라, 다양하게 작용하므로 효과적으로 알레르기를 억제할 수 있다는 것이다. 마지막으로 의약품과는 달리 소비자들이 손쉽게 구할 수 있고, 섭취할 수 있다는 것이다.
  • 이렇게 선별된 NPM-9은 trimellitic anhydride (TMA)에 의해 유도된 알레르기성 접촉성 피부염 마우스 모델에 있어서도 그 증상을 개선시킨다는 것이 확인되었다. 또한 그의 항알레르기 기전으로써는 Th1-매개 면역반응을 증가시킴으로써 Th2-매개 면역반응을 억제시킨다는 것을 확인할 수 있었다(그림 4).
  • 그 작용 기전으로서는 칼슘의 유입(influx), cAMP의 감소, PKC (protein kinase C)의 억제가 관여하고 있다는 것을 밝혀냈다. 또한 이는 알레르기성 천식모델에 있어 호산구(eosinophil) 및 면역세포의 침윤(inflitration)을 억제하였고, 폐조직내에서도 섬유화(fibrosis)나 술잔세포(goblet cells)의 작용 등이 억제되는 것을 확인할 수 있었다(그림 7).
  • in vivo에서 난백알부민의 섭취 3시간 후, 혈액에 존재하는 난백알부민을 살펴본 결과, 체내에서도 확실하게 알레르겐의 통과를 억제한다는 것을 확인할 수 있었다. 또한 황금의 활성성분을 조사한 결과, 황금의 주성분인 바이칼레인(baicalein)이 장관장벽기능을 강화시킴으로써 알레르겐의 통과를 억제한다는 것을 밝혀냈고, 이것은 식품알레르기 마우스 모델에서 황금을 섭취시킨 군이 식품알레르기의 증상이 확연히 개선된다는 것을 확인할 수 있었다(18)(그림 5).
  • 이렇게 선별된 NPM-9은 trimellitic anhydride (TMA)에 의해 유도된 알레르기성 접촉성 피부염 마우스 모델에 있어서도 그 증상을 개선시킨다는 것이 확인되었다. 또한 그의 항알레르기 기전으로써는 Th1-매개 면역반응을 증가시킴으로써 Th2-매개 면역반응을 억제시킨다는 것을 확인할 수 있었다(그림 4).

후속연구

  • 현재 우리나라에서도 다양한 천연물 및 식품을 이용한 건강기능성 식품이 개발되었고, 개별 인정형 기능성 원료를 살펴보더라도 면역과민반응 개선에 도움을 주는 것이 구아바잎 추출물을 비롯한 5건, 면역과민반응에 의한 피부상태 개선에 도움을 주는 것이 과채유래유산균을 비롯한 4 건이 등록되어있다. 이것들을 포함한 여러 알레르기를 개선할 수 있는 천연물 및 식품유래의 소재들의 개발은 알레르기 질환을 효과적으로 개선할 수 있을 것으로 기대된다. 이는 각종 알레르기 질환으로 고통 받는 사람들에게 좀 더 나은 삶의 질을 제공할 수 있을 것이고 또한, 사회적, 경제적, 기술적, 과학적으로도 큰 기여를 할 수 있을 것으로 기대된다.
  • 이것들을 포함한 여러 알레르기를 개선할 수 있는 천연물 및 식품유래의 소재들의 개발은 알레르기 질환을 효과적으로 개선할 수 있을 것으로 기대된다. 이는 각종 알레르기 질환으로 고통 받는 사람들에게 좀 더 나은 삶의 질을 제공할 수 있을 것이고 또한, 사회적, 경제적, 기술적, 과학적으로도 큰 기여를 할 수 있을 것으로 기대된다.
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질의응답

핵심어 질문 논문에서 추출한 답변
항알레르기 활성을 갖는 천연물 및 식품 개발의 타겟이 될 수 있는 기전을 크게 무엇으로 나눌 수 있는가? 여기서, 항알레르기 활성을 갖는 천연물 및 식품의 개발을 위한 몇 가 지 타겟이 될 수 있는 기전을 살펴보면 크게 세 가지로 나눌 수 있다. [1] 상피세포층을 통과하는 알레르겐의 침투억제, [2] 분화된 Th2 세포에서 생산되는 사이토카인들의 생산 억제, [3] 비만세 포에서 발생하는 탈과립 억제이다(그림 2). 이외에도 항원제시세포(마크로파지, 수지상세포, B세 포)의 조절, 조절성 T세포(Treg: regulatory T cells)의 유도, 리셉터의 결합 방해 등 여러 가지 항알레르기 활성 구명을 위한 타겟이 있다.
황금은 무엇인가? 황금(Scutellaria baicaleinsis, skullcap)은 꿀풀과에 속하는 식물로서 그 뿌리는 식품이나 약재로써 널리 활용되고 있다. 특히 황금은 소화기나 호흡기 에 항염증, 항암, 항균, 항바이러스 활성을 갖는다고 알려져 있다(13-15).
알레르겐은 어떤 통로로 체내에 흡수되는가? 알레르겐은 주로 상피세포의 부세포적 확산 경 로(paracellular diffusion pathway)를 통하여 체내로 흡수된다. 이 경로는 상피세포의 액틴(actin)과 세포막(cellular membrane)에 연결되어 존재하는 타이트정크션(tight junction)이라는 단백질 복합체에 의해서 조절된다.
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참고문헌 (29)

  1. World Health Organization: Asthma; Fact sheet no. 307: (2013) 

  2. Conen S, Theunissen EL, Vermeeren A, van Ruitenbeek P, Stiers P, Mehta MA, Toennes SW, Ramaekers JG. The role of P-glycoprotein in CNS antihistamine effects. Psychopharmacology. 229: 9-19 (2013) 

  3. de Benedictis FM, Bush A. Corticosteroids in respiratory diseases in children. Am. J. Respir. Crit. Care Med. 185: 12-23 (2012) 

  4. Galli SJ, Tsai M, Piliponsky AM. The development of allergic inflammation. Nature. 454: 445-454 (2008) 

  5. Bae MJ, Shin HS, Shon DH. Immunosuppression of the trimellitic anhydride-induced Th2 response by novel non-natural products mixture in mice. J. Evid. Based Complementary Altern. Med. 748123: 1-9 (2013) 

  6. Furuse M, Hirase T, Itoh M, Nagafuchi A, Yonemura S, Tsukita S, Tsukita S. Occludin: a novel integral membrane protein localizing at tight junctions. J. Cell Biol. 123: 1777-1788 (1993) 

  7. Furuse M, Fujita K, Hiiragi T, Fujimoto K, Tsukita S. Claudin-1 and -2: novel integral membrane proteins localizing at tight junctions with no sequence similarity to occludin. J. Cell Biol. 141: 1539-1550 (1998) 

  8. Martin-Padura I, Lostaglio S, Schneemann M, Williams L, Romano M, Fruscella P, Panzeri C, Stoppacciaro A, Ruco L, Villa A, Simmons D, Dejana E. Junctional adhesion molecule, a novel member of the immunoglobulin superfamily that distributes at intercellular junctions and modulates monocyte transmigration. J. Cell Biol. 142: 117-127 (1998) 

  9. Gonzalez-Mariscal L, Betanzos A, Nava P, Jaramillo BE. Tight junction proteins. Prog. Biophys. Mol. Bio. 81: 1-44 (2003) 

  10. Chahine BG, Bahna SL. The role of the gut mucosal immunity in the development of tolerance against allergy to food. Curr. Opin. Allergy ClinImmunol. 10: 220-225 (2010) 

  11. Isobe N, Suzuki M, Oda M, Tanabe S. Enzyme-modified cheese exerts inhibitory effects on allergen permeation in rats suffering from indomethacin induced intestinal inflammation. Biosci. Biotech. Bioch. 72: 1740-1745 (2008) 

  12. Yasumatsu H, Tanabe S. The casein peptide Asn-Pro-Trp-Asp-Gln enforces the intestinal tight junction partly by increasing occludin expression in Caco-2 cells. Brit. J. Nutr. 104: 951-956 (2010) 

  13. Lu Y, Joerger R, Wu C. Study of the chemical composition and antimicrobial activities of ethanolic extracts from roots of Scutellaria baicalensis Georgi. J. Agric. Food Chem. 59: 10934-10942 (2011) 

  14. Ye F, Xui L, Yi J, Zhang W, Zhang DY. Anticancer activity of Scutellaria baicalensis and its potential mechanism. J. Altern. Complem. Med. 8: 567-572 (2002) 

  15. Yoon SB, Lee YJ, Park SK, Kim HC, Bae H, Kim HM, Ko SG, Choi HY, Oh MS, Park W. Antiinflammatory effects of Scutellaria baicalensis water extract on LPS-activated RAW 264.7 macrophages. J. Ethnopharmacol. 125: 286-290 (2009) 

  16. Jung HS, Kim MH, Gwak NG, Im YS, Lee KY, Sohn Y, Choi H, Yang WM. Antiallergic effects of Scutellaria baicalensis on inflammation in vivo and in vitro. J. Ethnopharmacol. 141: 345-349 (2012) 

  17. Shin HS, Bae MJ, Jung SY, Shon DH. Inhibitory effect of skullcap (Scutellaria baicalensis) extract on ovalbumin permeation in vitro and in vivo. Food Chem. 140: 22-30 (2013) 

  18. Shin HS, Bae MJ, Jung SY, Shon DH. Preventive effects of skullcap (Scutellaria baicalensis) extract in a mouse model of food allergy. J. Ethnopharmacol. 153: 667-673 (2014) 

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  20. Feuerer M, Hill JA, Mathis D, Benoist C. Foxp3+ regulatory T cells: differentiation, specification, subphenotypes. Nat. Immunol. 10: 689-695 (2009) 

  21. Nakae S, Nambu A, Sudo K, Iwakura Y. Suppression of immune induction of collagen-induced arthritis in IL-17-deficient mice. J. Immunol. 171: 6173-6177 (2003) 

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  23. Sakaguchi S. Naturally arising Foxp3-expressing CD25+CD4+ regulatory T cells in immunological tolerance to self and non-self. Nat. Immunol. 6: 345-352 (2005) 

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  25. Ma C, Ma Z, Fu Q, Ma S. Curcumin attenuates allergic airway inflammation by regulation of CD4+CD25+ regulatory T cells (Tregs)/Th17 balance in ovalbumin-sensitized mice. Fitoterapia 87: 57-64 (2013) 

  26. Wong CP, Nguyen LP, Noh SK, Bray TM, Bruno RS, Ho E. Induction of regulatory T cells by green tea polyphenol EGCG. Immunol. Lett. 139: 7-13 (2011) 

  27. Kwon HK, Lee CG, So JS, Chae CS, Hwang JS, Sahoo A, Nam JH, Rhee JH, Hwang KC, Im SH. Generation of regulatory dendritic cells and CD4+Foxp3+ T cells by probiotics administration suppresses immune disorders. Proc. Natl. Acad. Sci. USA. 107: 2159-2164 (2010) 

  28. Stassen M1, Schmitt E, Bopp T. From interleukin-9 to T helper 9 cells. Ann. N Y. Acad. Sci. 1247: 56-68 (2012) 

  29. Bae MJ, Shin HS, See HJ, Chai OH, Shon DH. Cheonggukjang ethanol extracts inhibit a murine allergic asthma via suppression of mast cell-dependent anaphylactic reactions. J. Med. Food. 17: 142-149 (2014) 

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