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초록
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본 연구에서는 육종이 필요한 종계장에서 슬라이드 위에 도말된 닭 정액시료를 간편하게 염색하여 정자의 염색질 이상성과 운동성을 유추할 수 있는 기법을 확립하고자 실시하였다. 오계 정자 도말 슬라이드를 Diff-Quik 시약으로 염색하여 관찰하면 신선정액에서는 정자 생존성이 93.53%, 82.42% 및 90.63%일 때, Diff-Quik 염색질의 정상도는 87.96%, 74.25% 및 85.10%로 관찰되었다. 동일한 시료를 동결하고 융해후 정액의 생존성은 조사하면 69.58%, 61.98% 및 72.20%로 관찰되었으며, 염색질의 정상도는 58.91%, 48.49% 및 63.34%로 관찰되었다. 융해된 동결정액에서 활력이 우수한 정자를 쉽게 관찰하기 위하여 정자를 HS-1 희석액으로 재 희석하고, $37^{\circ}C$에서 가온하여 도말하면 염색된 정자의 두부에서 활력이 우수한 정자의 비율을 간단히 유추할 수 있음을 보여주었다. 특히, 신선 정자에서 정상 염색질을 가진 정자의 비율과 생존성이 상관관계는 매우 높은 것으로 판단되며, 동결정자에서도 상관관계가 높다고 추정되었다. 이러한 결과는 Diff-Quik 염색방법으로 닭 정액의 품질을 정자의 염색질의 이상성 유무로 판단할 수 있음을 보여주고 있다. 특히 본 연구에서 제시된 방법은 닭 정자의 우수성을 판단하는데 유용할 것으로 판단되며, 닭 정액 시료를 준비할 때 준비한 도말슬라이드를 현미경적 관찰에 의하여 활성화된 정자의 비율과 정상 염색질을 가진 정자의 비율을 추정하는 방법을 제시하였으며, 이는 인공 수정에 필요한 현장에서 수컷 개체의 종축 이용성을 쉽게 판단할 수 있는 근거를 마련할 수 있음을 의미한다.

Abstract AI-Helper 아이콘AI-Helper

Ogye rooster sperm chromatin status can be detected using well established sperm assays. In this paper, a simple and fast method to monitor rooster sperm chromatin status could be employed in field for assessment of chicken sperm quality. Using standard bright field microscope, Diff-Quik stains can ...

주제어

AI 본문요약
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문제 정의

  • 본 연구에서는 오계 정자에 Diff Quik 염색을 실시하여 닭 정자의 형태 관찰과 생존성을 동시에 판별하는 방법으로 이용될 수 있음을 증명하였다. 또한, 신선정액과 동결정액에서 또한 동일한 시료를 디지털 영상으로 컴퓨터에 저장하여 운동성을 관찰함으로써 운동성을 보이는 정자와 보이지 않는 정자를 분석하였고, 현장에서 채취한 닭정자는 Diff Quik 용액으로 간단히 염색하여 생존성과 운동성을 유추할 수 있는 근거를 마련하고자 실험을 실시하였다
  • 본 연구에서는 오계 정자의 동결 과정에 나타날 수 있는 염색질 이상도를 신선정자와 비교하여 관찰하였으며, 정자의 생존성과 연관성을 분석하였다. 최 등(2013)에 의한 MA동결 보호제를 활용한 오계 정자의 동결 결과, 정자의 생존율이 35%에서 67%로 다양하게 나타남을 보고하였다.
  • 본 연구에서는 육종이 필요한 종계장에서 슬라이드 위에 도말된 닭 정액시료를 간편하게 염색하여 정자의 염색질 이상성과 운동성을 유추할 수 있는 기법을 확립하고자 실시하였다. 오계 정자 도말 슬라이드를 Diff-Quik 시약으로 염색하여 관찰하면 신선정액에서는 정자 생존성이 93.
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질의응답

핵심어 질문 논문에서 추출한 답변
닭 동결 정자의 융해 후 생존성과 활력도를분석하는 방법의 단점은? 동결 정액과 같은 영구보존 유전자원을 확보하는 방법으로 가금 생식 세포를 동결하는 기술은 유전자원을 보존하고 활용하는 방법의 기초가 되며, 유전자원을 영구 보존하는 방법의 기초가 된다. 닭 동결 정자의 융해 후 생존성과 활력도를분석하는 방법은 동결 정자의 효율성을 판별하는 측도가 되고 있으나, 포유류 정액과는 달리 형태가 창형 구조로 매우길며, 뱀이 이동하는 형태(snake like movement)와 유사하게 움직이고 있어서 정자의 움직임을 정확하게 판단하기가 어렵다(Holsberger et al., 1998).
닭의 동결정액을 활용한 인공수정에 필요한 정확한 정자수를 추정하기 어려운 이유는? 그럼에도불구하고, 가금류의 인공수정에 1개의 난자를 수정하기에 필요한 최소 정자 수를 정확하게 추정할 수 없는 문제점의존 제하므로, 동결정액을 활용한 인공수정에 정확한 정자수를 추정함에 있어 어려움이 존재한다. 이는 닭의 생리적 특성상 인공 수정된 정액이 자성생식도관에서, 자궁과 질의경계부에 정자저장소(semen storage tubule)에 1차적으로 보존되고, 장기간에 걸쳐 체내에서 지속적인 수정이 이루어지기 때문이다(Blesbois and Brillard, 2007). 그러므로 닭 정자의 형태적 이상은 정자의 활력도 보다 더 중요한 요인으로 간주하며, 1차적으로 정액의 질적 가치를 판단하는 중요한 자료가 된다.
동물의 정자가 지닌 특성은? 포유류를 포함하여 동물의 정자는 난자를 수정시켜 새로운 생명을 탄생시키는 운동성을 가지고 있는데, 이를 분석하는 것은 생자생리 연구에 반드시 필요하다. 특히 축산업의기반이 되는 품종육성 및 개량기술은 가축을 인공수정하여다양한 순수 계통을 생산․유지하게 되고, 이것을 활용하여 실용 축을 생산하는데 동결정액를 활용하는 기술은 필수적이다.
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참고문헌 (30)

  1. Agarwal A, Allamaneni S 2004 The effect of sperm DNA damage on assisted reproduction outcomes. A review. Minerva Ginecol 56:235-245. 

  2. Alvarez JG 2003 DNA fragmentation in human spermatozoa: Significance in the diagnosis and treatment of infertility. Minerva Ginecol 55:233-239. 

  3. Bakst MR, Cecil HC 1997 Techniques for semen evaluation, semen storage, and fertility determination. 3. Sperm viability. I. Nigrosin/eosin stain for determining live/dead and abnormal sperm counts. The Poultry Science Association Inc., Savoy, Illinois. pages 29-34. 

  4. Benchaib M, Lornage J, Mazoyer C, Lejeune H, Salle B, Francois GJ 2007 Sperm deoxyribonucleic acid fragmentation as a prognostic indicator of assisted reproductive technology outcome. Fertil Steril 87:93-100. 

  5. Blesbois E, Brillard JP 2007 Specific features of in vivo and in vitro sperm storage in birds. Animal 1:1477-1481. 

  6. Bungum M, Humaidan P, Spano M, Jepson K, Bungum L, Giwercman A 2004 The predictive value of sperm chromatin structure assay (SCSA) parameters for the outcome of intrauterine insemination, IVF and ICSI. Hum Reprod 19:1401-1408. 

  7. Burrows WH, Quinn JP 1935 A method of obtaining spermatozoa from the domestic fowl. Poultry Sci 14:251-254. 

  8. Burrows WH, Quinn JP 1937 Artificial insemination of chickens and turkeys. Proc. 7th World's Poultry Congress. pages 82-85. 

  9. Choi JS, Shin DB, Ko YG, Do YJ, Byun M, Park SB, Seong HH, Kim H, Kong IK, Kim SW 2013 Effects of kinds of cryoprotectants on the characteristics of frozen fowl semen. Korean J Poult Sci 40:171-1789. 

  10. Donnelly ET, O'Connell M, McClure N, Lewis SE 2000 Differences in nuclear DNA fragmentation and mitochondrial integrity of semen and prepared spermatozoa. Hum Reprod. 15:1552-1562. 

  11. Donoghue AM, Wishart GJ 2000. Storage of poultry semen. Animal Reprod Sci 62:213-232. 

  12. Erenpreiss J, Bungum M, Spano M, Elzanaty S, Orbidans J, Giwercman A 2006 Intra-individual variation in sperm chromatin structure assay parameters in men from infertile couples: Clinical implications. Hum Reprod 21:2061-2064. 

  13. Garner DL, Johnson LA 1995. Viability assessment of mammalian sperm using SYBR-14 and propidium iodide. Biol Reprod 53:276-84. 

  14. Hanzawa S, Niinomi T, Miyata T, Tsutsui M, Tajima A 2010 Cryopreservation of chicken semen using N-methylacetamide as cryoprotectant. Jp Poult Sci 47:J27-J32. 

  15. Henkel R, Hajimohammad M, Stalf T, Hoogendijk C, Mehnert C, Menkveld R, Gips H, Schill WB, Kruger TF 2004 Influence of deoxyribonucleic acid damage on fertilization and pregnancy. Fertil Steril 81:965-972. 

  16. Holsberger DR, Donoghue AM, Froman DP, Ottinger MA, 1998. Assessment of ejaculate quality and sperm characteristics in turkeys: Sperm mobility phenotype is independent of time. Poult Sci 77:1711-1717. 

  17. Howarth Jr B 1983. Fertilizing ability of cock spermatozoa from the testis, epididimis, and vas deferens following intramagnal insemination. Biol Reprod 28:586-590. 

  18. Hughes CM, Lewis SEM, McKelvey-Martin A, Thompson W 1996 Comparison of baseline and induced DNA damage in human spermatozoa from fertile and infertile men, using the modified comet assay. Mol Hum Reprod 2:613-619. 

  19. Kuster CE, Singer RS, Althouse GC 2004. Determining sample size for the morphological assessment of sperm. Theriogenology 61:691-703. 

  20. Lake PE 1978 The principles and practice of semen collection and preservation in birds. In: Symp Zool Soc. London. p. 43. 

  21. Larson-Cook KL, Brannian JD, Hansen KA, Kasperson KM, Aamold ET, Evenson DP 2003 Relationship between the outcomes of assisted reproductive techniques and sperm DNA fragmentation as measured by the sperm chromatin structure assay. Fertil Steril 80:895-902. 

  22. Lukaszewicz E, Jerysz A, Partyka A, Siudzinska A 2008 Efficacy of evaluation of rooster sperm morphology using different staining methods. Res Vet Sci 85:583-588 

  23. Maeda T, Terada T, Tsutsumi Y 1986 Studies of the factors causing abnormal acrosomes and crooked-necks in fowl spermatozoa during freezing and thawing. Br Poult Sci 27:695-702 

  24. Mota PC, Ramalho-Santos J 2006 Comparison between different markers for sperm quality in the cat: Diff-Quik as a simple optical technique to assess changes in the DNA of feline epididymal sperm. Theriogenology 65:1360-1375. 

  25. Root-Kustritz MV, Olson PN, Johnston SD, Root TK 1998 The effects of stains and investigators on assessment of morphology of canine spermatozoa. Journal of the American Animal Hospital Association 34:348-352. 

  26. Sharma RK, Said T, Agarwal A 2004 Sperm DNA damage and its clinical relevance in assessing reproductive outcome. Asian J Androl 6:139-148. 

  27. Sousa APM, Tavares RS, Velez de la Calle JF 2009 Dual use of Diff-Quik-like stains for the simultaneous evaluation of human sperm morphology and chromatin status. Human Reprod 24:28-36. 

  28. Spano M, Seli E, Bizzaro D, Manicardi GC, Sakkas D 2005 The significance ofsperm nuclear DNA strand breaks on reproductive outcome. Curr Opin Obstet Gynecol 17:255-260. 

  29. Tomlinson MJ, Moffatt O, Manicardi GC, Bizzaro D, Afnan M, Sakkas D 2001 Interrelationships between seminal parameters and sperm nuclear DNA damage before and after density gradient centrifugation: Implications for assisted conception. Hum Reprod 16:2160-2165. 

  30. Varum S, Bento C, Sousa AP, Gomes-Santos CS, Henriques P, Almeida-Santos T, Teodosio C, Paiva A, Ramalho-Santos J 2007 Characterization of human sperm populations using conventional parameters, surface ubiquitination, and apoptotic markers. Fertil Steril 87:572-583. 

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