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레스베라트롤을 함유한 나노 에토좀 제조에 관한 연구
A Study for Preparation of Nano Ethosome Loaded with Resveratrol 원문보기

大韓化粧品學會誌 = Journal of the society of cosmetic scientists of Korea, v.41 no.2, 2015년, pp.105 - 112  

서동환 (코스맥스 R&I center) ,  윤종혁 (코스맥스 R&I center) ,  김연준 (코스맥스 R&I center) ,  변상요 (아주대학교 대학원 응용생명공학과 화장품과학전공)

초록
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레스베라트롤(Resveratrol)은 천연 폴리페놀이며 피부 손상, 자외선 및 병원성의 공격으로부터 피부를 보호한다. 본 연구에서는 레스베라트롤을 함유한 에토좀의 최적의 제조 조건을 찾기 위해 시도하였다. 에토좀은 수화액정법을 응용하여 제조하였다. 에토좀의 봉입효율 및 입자 크기에 영향을 미치는 요인에 대하여 조사하였다. 에토좀의 입자 사이즈는 입도분석기를 이용하였다. 봉입효율은 HPLC를 이용하여 측정하였다. 에토좀 입자의 크기는 111.2 ~ 112.8 nm이고, 봉입효율은 81.25 ~ 88.75%임을 확인하였다. 최적의 제조 조건으로는 레시틴 : 레스베라트롤 : 콜레스테롤 : 에탄올 = 2.0 : 0.08 : 0.05 : 20.0% (w/w)의 비율로 제조된 경우임을 확인하였다.

Abstract AI-Helper 아이콘AI-Helper

Resveratrol is a natural polyphenol. It protects skin from skin injury, ultraviolet radiation and pathogenic attack. This study is to find the optimum condition for the preparation of ethosome loading amount of resveratrol in ethosome. Ethosomes were prepared by modified hydrated liquid crystal meth...

주제어

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문제 정의

  • 본 실험에서는 지질을 에탄올에 용해시킨 후 약물수용액을 첨가하고 교반하여 수화액정(hydrated liquid crystal)을 형성시키고 여기에 증류수를 첨가하여 에토좀을 얻는 방법을 응용하여 100 nm 크기의 에토좀을 제조하고자 하였다[12]. 또한 에토좀의 구성성분인 레시틴, 레스베라트롤, 콜레스테롤 및 에탄올의 비율을 변화시켜 최적의 제조 조건과 레스베라트롤의 봉입효율을 최대로 향상 시킬 수 있는 제조 조건을 확인하고자 하였다.
  • 본 실험에서는 지질을 에탄올에 용해시킨 후 약물수용액을 첨가하고 교반하여 수화액정(hydrated liquid crystal)을 형성시키고 여기에 증류수를 첨가하여 에토좀을 얻는 방법을 응용하여 100 nm 크기의 에토좀을 제조하고자 하였다[12]. 또한 에토좀의 구성성분인 레시틴, 레스베라트롤, 콜레스테롤 및 에탄올의 비율을 변화시켜 최적의 제조 조건과 레스베라트롤의 봉입효율을 최대로 향상 시킬 수 있는 제조 조건을 확인하고자 하였다.
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질의응답

핵심어 질문 논문에서 추출한 답변
레스베라트롤은 무엇인가? 레스베라트롤은 포도껍질과 포도씨, 땅콩 등에 존재하는 폴리페놀계 성분이며, 곰팡이나 해충 등의 다양한 외부 환경의 변화로부터 식물 스스로 자신을 보호하기 위해 만들어내는 phytoalexin으로 알려져 있다[7]. 레스베라트롤은 강력한 항산화 활성을 비롯하여 혈청 콜레스테롤 저하, 항바이러스, 항비만, 신경보호 작용, 항염증작용 및 항노화 등 다양한 생리활성을 나타내어 의약품과 식품산업에서 매우 각광을 받고 있다.
에토좀은 어떤 방법인가? 에토좀은 에탄올에 인지질과 약물을 용해시키고 물에 분산시켜 베지클을 만드는 방법이며 에탄올은 예전부터 피부투과 증진제로 많이 알려져 있으며 에탄올을 지질과 함께 사용하여 베지클을 만들면 지질, 에탄올, 피부지질층 간의 상호작용으로 인하여 약물의 투과 시 시너지 효과를 얻을 수 있게 된다. 피부 각질세포 사이의 정돈된 지질층에 에탄올이 접근하면 지질분자의 극성머리 부분과 작용하여 각질층 지질의 전이온도(Transition temperature)를 낮추고 피부 지질층의 유동성을 증대시켜 지질구조를 느슨하게 만들어 투과성이 높아질 수 있도록 구조적 변형이 발생하며 유연한 막을 가진 에토좀은 구조적 변형이 쉽게 이루어져 피부 침투가 용이해진다.
리포좀을 적극적으로 활용하지 못하게 만드는 리포좀의 단점에는 어떤 것들이 있는가? 양친매성 분자로 수용성과 유용성 모두 포집할 수 있고, 제조 방법에 따라 다양한 성질의 리포좀을 만들 수 있다. 그러나 막자체의 물리-화학적 불안정성, 낮은 봉입효율 및 유기용매를 제거해야 되는 어려움이 있다. 또한 피부 침투효과가 기대 이상으로 높지 않은 부분으로 인해 적극적으로 활용되지 못하는 경우가 많았다[1]. 
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참고문헌 (19)

  1. O. Braun-Falco, H. C. Korting, and H. I. Mailbach, Liposome Dermatics, Spinger-Verlag, 70 (1992). 

  2. C. Kirby and G. Gregoriadis, Dehydration-Rehydration Vesicles: A Simple Method for High Yield Drug Entrapment in Liposomes, Nature Biotechnology, 2, 979 (1984). 

  3. R. R. C. New, Liposomes: A Practical Approach, Oxford University Press, Oxford (1990). 

  4. G. Gregoriadis, Liposome Technology 2nd, CRC Press, Florida (1993). 

  5. J. M. Lopez-Pinto, M. L. Gonzalez-Rodriguez, and A. M. Rabasco, Effect of cholesterol and ethanol on dermal delivery from DPPC liposomes, Int., J. Pharm, 298(1), 1 (2005). 

  6. E. Touitou, N. Dayana, L. Bergelsonb, B. Godina, and M. Eliaza, Ethosomes-novel vesicular carriers for enhanced delivery: characterization and skin penetration properties, J. Control. Release, 65(3), 403 (2000). 

  7. Y. A. Kim, S. H. Rhee, W. H. Lee, K. Y. Park, and Y. H. Choi, Molecular Biological Mechanisms of Resveratrol for Cancer Chemoprevention, J. Cancer Prev., 9, 19 (2004). 

  8. I. Gulcin, Antioxidant properties of resveratrol: A structure-activity insight, innov. food sci. emerg. technol, 11, 210 (2010). 

  9. N. R. Jo, S. A. Park, S. H. Jeon, J. H. Ha, and S. N. Park, Cellular protective effects and antioxidative activity of resveratrol, Appl. Chem. Eng., 24(5), 483 (2013). 

  10. P. Bernard and J. Y. Berthon, Resveratrol: an original mechanism on tyrosinase inhibition, Int. J. Cosmet. Sci., 22(3), 219 (2000). 

  11. K. Subbaramaiah, W. J. Chung, P. Michaluart, N. Telang, T. Tanabe, H. Inoue, M. Jang, J. M. Pezzuto, and A. J. Dannenberg, Resveratrol inhibits cyclooxygenase-2 transcription and activity in phorbol ester-treated human mammary epithelial cells, J. Biol. Chem., 273, 21875 (1998). 

  12. B. S. Jin, S. M. Lee, and K. H. Lee, A study on the factors affecting entrapment efficiency and particle size of ethosomes, J. Korean. Ind. Eng. Chem., 17(2), 138 (2006). 

  13. H. Y. Kwon, J. Y. Lee, S. W. Choi, Y. S. Jang, and J. H. Kim, Preparation of PLGA nanoparticles containing estrogen by emulsification-diffusion method, Colloids Surf., A, 182(1-3), 123 (2001). 

  14. P. Kan, Z. B. Chen, R. Y. Kung, C. J. Lee, and I. M. Chu, Study on the formulation of o/w emulsion as carriers for lipophilic drugs, Colloids Surf. B Biointerfaces, 15(2), 117 (1999). 

  15. M. Jumaa and B. W Muller, Parenteral emulsions stabilized with a mixture of phospholipids and PEG-660-12-hydroxy-stearate: evaluation of accelerated and long-term stability, Eur. J. Pharm. Biopharm., 54(2), 207 (2002). 

  16. B. S. Jin, Y. M. Han, K. H. Lee, and M. J. Choi, Preparation and characterization of Calcein entrapped ethosome, J. Korean Ind. Eng. Chem., 15(2), 205 (2004). 

  17. J. J. Collins and M. C. Phillips The stability and structure of cholesterol-rich codispersions of cholesterol and phosphatidylcholine, J. Lipid Res., 23, 291 (1982). 

  18. L. P. Tseng, H. J. Liang, T. W. Chung, Y. Y. Huang, and D. Z. Liu, Liposomes incorporated with cholesterol for drug release triggered by magnetic field, J. Med. Biol. Eng., 27(1), 29 (2007). 

  19. H. J. Gwak and B. S, Jin, Preparation and characterization of EGCG entrapped ethosome, J. Korean Ind. Eng. Chem., 18(2), 130 (2007). 

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