본 연구는 다슬기(Semisulcospira libertine) 열수 추출물이 D-galactosamine에 의해 급성 간독성이 유도된 흰쥐에 미치는 보호 효과를 조사하였다. 다슬기 열수 추출물은 D-galactosamine에 의해 유발된 간 조직 내 국소적 지방변성과 염증세포 침윤을 크게 완화하여 대조군과 유사하게 보호하는 경향을 보였다. 또한 다슬기 열수 추출물을 처리한 실험군은 간 손상 지표 효소인 AST와 ALT, LDH 및 ALP의 활성이 대조군 수준으로 유지되었으며 간조직 내 지질함량과 과산화지질함량이 감소되는 것으로 나타나 다슬기 열수 추출물이 D-galactosamine으로 인한 혈중 효소 활성과 조직 내 지질함량을 개선하는 것으로 조사되었다. 또한 다슬기 열수 추출물을 처리한 실험군은 염증반응을 촉진시켜 조직 상해 및 괴사를 유도하는 TNF-α의 발현을 억제하고 있어 염증 반응에서 세포 손상을 감소시키는 데 관여하는 것으로 나타났다. 따라서 다슬기 열수 추출물은 D-galactosamine에 의한 조직 괴사를 감소시키고 혈중 효소의 활성과 조직 내 지질함량을 개선하는 효과를 나타내고 있으며 염증 반응 인자의 발현과 항산화효소 활성을 조절하여 간독성에 대해 보호 효과가 높을 것으로 생각된다.
본 연구는 다슬기(Semisulcospira libertine) 열수 추출물이 D-galactosamine에 의해 급성 간독성이 유도된 흰쥐에 미치는 보호 효과를 조사하였다. 다슬기 열수 추출물은 D-galactosamine에 의해 유발된 간 조직 내 국소적 지방변성과 염증세포 침윤을 크게 완화하여 대조군과 유사하게 보호하는 경향을 보였다. 또한 다슬기 열수 추출물을 처리한 실험군은 간 손상 지표 효소인 AST와 ALT, LDH 및 ALP의 활성이 대조군 수준으로 유지되었으며 간조직 내 지질함량과 과산화지질함량이 감소되는 것으로 나타나 다슬기 열수 추출물이 D-galactosamine으로 인한 혈중 효소 활성과 조직 내 지질함량을 개선하는 것으로 조사되었다. 또한 다슬기 열수 추출물을 처리한 실험군은 염증반응을 촉진시켜 조직 상해 및 괴사를 유도하는 TNF-α의 발현을 억제하고 있어 염증 반응에서 세포 손상을 감소시키는 데 관여하는 것으로 나타났다. 따라서 다슬기 열수 추출물은 D-galactosamine에 의한 조직 괴사를 감소시키고 혈중 효소의 활성과 조직 내 지질함량을 개선하는 효과를 나타내고 있으며 염증 반응 인자의 발현과 항산화효소 활성을 조절하여 간독성에 대해 보호 효과가 높을 것으로 생각된다.
This study aimed to investigate the protective effect of Semisulcospira libertina extract on liver injury induced by D-galactosamine in rats. After the administration of S. libertina extract, the local fat degeneration and infiltration of inflammatory cells in liver tissues were significantly decrea...
This study aimed to investigate the protective effect of Semisulcospira libertina extract on liver injury induced by D-galactosamine in rats. After the administration of S. libertina extract, the local fat degeneration and infiltration of inflammatory cells in liver tissues were significantly decreased and peripheral hemorrhages around portal triads and central necrosis around central veins were found to be protective. The elevated levels of plasma ALT, AST, and LDH, the ALP activation lipid peroxidation, and the lipid contents of a damaged liver were recovered in experimental rats administrated with S. libertina extract, suggesting its role in blood enzyme activation and lipid content restoration within damaged rat liver tissues. Moreover, the expression rate of TNF-α, which accelerates inflammation and induces tissue damage and necrosis, was significantly decreased. In addition, the activities of antioxidant enzymes were more effectively upregulated compared to those of the control group induced hepatotoxicity. All data showed that S. libertina extract has a preventive role against liver damages, such as inflammation and tissue necrosis, as instigated with D-galactosamine by improving the activities of blood enzymes and antioxidant enzymes and modulating the expression of inflammation factor, suggest S. libertina extract is an effective medicinal resource for the restoration of hepatotoxicity.
This study aimed to investigate the protective effect of Semisulcospira libertina extract on liver injury induced by D-galactosamine in rats. After the administration of S. libertina extract, the local fat degeneration and infiltration of inflammatory cells in liver tissues were significantly decreased and peripheral hemorrhages around portal triads and central necrosis around central veins were found to be protective. The elevated levels of plasma ALT, AST, and LDH, the ALP activation lipid peroxidation, and the lipid contents of a damaged liver were recovered in experimental rats administrated with S. libertina extract, suggesting its role in blood enzyme activation and lipid content restoration within damaged rat liver tissues. Moreover, the expression rate of TNF-α, which accelerates inflammation and induces tissue damage and necrosis, was significantly decreased. In addition, the activities of antioxidant enzymes were more effectively upregulated compared to those of the control group induced hepatotoxicity. All data showed that S. libertina extract has a preventive role against liver damages, such as inflammation and tissue necrosis, as instigated with D-galactosamine by improving the activities of blood enzymes and antioxidant enzymes and modulating the expression of inflammation factor, suggest S. libertina extract is an effective medicinal resource for the restoration of hepatotoxicity.
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문제 정의
다슬기 열수 추출물이 D-galactosamine에 의한 산화적 스트레스에 미치는 영향을 알아보고자 간 조직 내의 항산화효소 활성을 조사하였다. 각 실험군별 SOD 활성은 D-galactos- amine의 투여에 따라 감소하여 GalN군이 31.
기존의 연구에서 Jeon 등[13]과 Lee 등[22]은 다슬기가 사염화탄소에 의한 간 손상에 미치는보호 효과를 알아보기 위하여 조직학적 변화와 혈청 성분을분석한 바 있으나 다슬기 열수 추출물이 염증 반응 인자의발현과 항산화효소 활성 변화에 미치는 영향에 대해 조사한연구는 전무한 실정이다. 따라서 본 연구에서는 다슬기 열수추출물이 D-galactosamine 투여에 의해 유발되는 간독성에대한 보호효과를 조직학적 변화와 혈액 성분 분석 및 염증반응 인자의 발현과 항산화효소 활성 변화를 통하여 알아보고자 하였다.
본 연구에서는 다슬기 열수 추출물이 D-galactosamine 투여로 인한 간조직의 미세구조 변화에 미치는 영향을 조사하였다. 대조군의 간 조직은 중심정맥에서부터 방사상으로 간세포삭이 배열되었고 그 사이에 동모양의 혈관이 형성되어 어떠한 조직학적 이상도 관찰되지 않았다(Fig.
5 mM PMSF)를 이용하여 균질화한 후, 단백질은 Bradford [5] 법에따라 정량하였다. 간 조직 내 tumor necrosis factor alpha (TNF-α)는 간에서 추출한 단백질 40 μg을 전기영동한 후 1차 antibody (TNF-alpha) (Cell signaling Technology, Beverly, USA)를 처리하였고, 2차 antibody (anti-rabbit IgG-HRP) (Santa Cruz Biotechnology, Santa Cruz, USA)를 처리하여 확인하였고, heme oxygenase-1 (HO-1)의 인산화비는 간에서 추출한 단백질을 전기영동을 한 후 1차 antibody (heme oxy- genase-1)를 처리하였고, 2차 antibody (anti-rabbit IgG-HRP) (Santa Cruz Biotechnology, Santa Cruz, USA)를 처리하였다. 이후 ECL detection polaroid camera (Amersham Biosciences, USA)를 사용하여 촬영하였으며, 발현 수준은 Un-SCAN-IT gel Version 5.
방법에 따라 분석하였다. 간 조직 시료를 만들기 위하여 간 조직에 chloroform : methanol 혼합액(2:1)을 첨가하여 균질화하였고, 4, 000 ×g에서 10분간 원심 분리한 후 chloroform 층을 분리하였다. 이후 다시 chloroform을 첨가한 다음 원심분리하여 chloroform층을 분리한 후 감압 건조한 후 함량을 측정하였다.
간 조직의 total RNA는 TRIzol Reagent (Gibco Inc., USA) 를 이용하여 추출한 후 total RNA Clean up kit (Ambion, USA)를 사용하여 정제하였다. 정제된 RNA를 template로 SuperScript™ kit (Invitrogen, USA)를 이용하여 single stranded cDNA를 제조하였다.
간 조직의 미세구조를 관찰하기 위해 일반적인 조직 제작 방법에 따라 절취한 간 조직을 4℃ FAA 용액에서 24시간 고정하였다. paraffin blocke 4 ㎛의 두께로 절편하였고 hema- toxylin과 eosin에 이 중 염색하였다.
정제된 RNA를 template로 SuperScript™ kit (Invitrogen, USA)를 이용하여 single stranded cDNA를 제조하였다. 간독성에 관련된 유전자들을 특이적으로 증폭하기 위해 primer (Table 1)를 제작하였으며 각 유전자의 발현 정도를 mGAPDH 유전자의 발현과 비교하여 확인하였다. 유전자의 발현은 전기 영동 후 Gel image analysis system (Core Bio iMaxTM, Korea)에서 UV illumi- nator로 결과를 확인하였으며, 발현 수준은 Un-SCAN-IT gel Version 5.
다슬기 열수 추출물의 급성 간독성에 대한 보호 효과를 조사하기 위하여 흰쥐를 아무것도 처리하지 않은 실험군(대조군)과 D-galactosamine (700 ㎎/㎏)에 의해 급성 간독성을 유발한 실험군(GalN 실험군), 양성대조군은 천연물의 활성 성분으로 밝혀진 silymaine과 urusodeoxycoline acid (UDCA) 를 사용하여 silymarin (25 ㎎/㎏)을 미리 투여한 후 간독성을 유발한 실험군(Silymarine 실험군)과 UDCA (40 ㎎/㎏) 를 미리 투여한 후 간독성을 유발한 실험군(UDCA 실험군)으로 설정하였고 선행연구를 통해 가장 유효한 결과를 나타낸 공 시료의 유효농도를 선정하여 다슬기 열수 추출물(300 mg/ kg, 800 ㎎/㎏)을 미리 투여한 후 간독성을 유발한 실험군 (SL-300, SL-800 실험군)으로 나누었다. 각 실험군은 군당 10 마리씩 실험에 사용하였으며, 매일 일정한 시간에 체중을 측정하였다.
다슬기 열수 추출물이 D-galactosamine에 의해 유도된 간독성에 미치는 보호 효과를 알아보고자 간 조직 내 지질함량과 과산화지질 함량을 조사하였다. 대조군의 지질함량은 31.
다슬기 열수 추출물이 간독성에 대한 보호 효과를 알아보기 위하여 혈액 내 AST, ALT, LDH 및 ALP의 활성을 측정하였다. 대조군의 AST 활성은 62.
다슬기 열수 추출물이 간독성에 의한 염증성 사이토카인에 미치는 영향을 알아보기 위해 GalN 실험군에 대한 실험군별 상대적 TNF-α 발현율을 분석하였다. GalN 실험군에 대한대조군의 TNF-α 발현율은 29.
각 실험군은 군당 10 마리씩 실험에 사용하였으며, 매일 일정한 시간에 체중을 측정하였다. 모든 시험 약물은 극소량의 DMSO (dimethyl sulf- oxide)에 용해 후 생리식염수와 1%의 olive oil로 희석하여 D-galactosamine 투여 2일 전, 1일 전 및 2시간 전에 3회씩 경구 투여하였다. 이후 간독성은 D-galactosamine (700 mg/ kg)을 복강 투여하여 인위적으로 유발하였다.
본 실험에서는 각 약물을 경구 투여한 후 D-galactosamine 을 복강 투여하여 간독성을 유발한 각 실험군의 체중을 비교하였다. D-galactosamine을 이용하여 간 병변을 유발했을 때대조군에 비해 D-galactosamine만을 투여한 GalN 실험군에서 188.
기질액과 정색시액을 1:1 로혼합하여 37℃에서 5분간 반응시킨 다음 시료와 혼합하였다. 이 후 37℃에서 10분간 방치하였고 염산으로 반응을 종료시킨 후 570 nm에서 흡광도를 측정하였으며 표준곡선에 따라활성도를 분석하였다. ALP는 Kind-King [19]법에 따라 조제된 kit (Asan, Korea)를 사용하여 기질 완충액에 혈장을 첨가한 후에 표준액과 혼합하여 37℃에서 15분간 반응시켰다.
간 조직 내 tumor necrosis factor alpha (TNF-α)는 간에서 추출한 단백질 40 μg을 전기영동한 후 1차 antibody (TNF-alpha) (Cell signaling Technology, Beverly, USA)를 처리하였고, 2차 antibody (anti-rabbit IgG-HRP) (Santa Cruz Biotechnology, Santa Cruz, USA)를 처리하여 확인하였고, heme oxygenase-1 (HO-1)의 인산화비는 간에서 추출한 단백질을 전기영동을 한 후 1차 antibody (heme oxy- genase-1)를 처리하였고, 2차 antibody (anti-rabbit IgG-HRP) (Santa Cruz Biotechnology, Santa Cruz, USA)를 처리하였다. 이후 ECL detection polaroid camera (Amersham Biosciences, USA)를 사용하여 촬영하였으며, 발현 수준은 Un-SCAN-IT gel Version 5.1 (Silk Scientific, Inc.) 프로그램을 통해 분석하였다.
모든 시험 약물은 극소량의 DMSO (dimethyl sulf- oxide)에 용해 후 생리식염수와 1%의 olive oil로 희석하여 D-galactosamine 투여 2일 전, 1일 전 및 2시간 전에 3회씩 경구 투여하였다. 이후 간독성은 D-galactosamine (700 mg/ kg)을 복강 투여하여 인위적으로 유발하였다. 24시간 경과 후에 혈액을 경동맥에서 채취하여 2,000 ×g에서 15분간 원심분리 한 후 혈장만을 회수하여 분석 전까지 -80℃에서 보관하였다.
간 조직 시료를 만들기 위하여 간 조직에 chloroform : methanol 혼합액(2:1)을 첨가하여 균질화하였고, 4, 000 ×g에서 10분간 원심 분리한 후 chloroform 층을 분리하였다. 이후 다시 chloroform을 첨가한 다음 원심분리하여 chloroform층을 분리한 후 감압 건조한 후 함량을 측정하였다.
ALP는 Kind-King [19]법에 따라 조제된 kit (Asan, Korea)를 사용하여 기질 완충액에 혈장을 첨가한 후에 표준액과 혼합하여 37℃에서 15분간 반응시켰다. 이후 정색시약을 처리하여 10분간 실온 방치한 다음 570 nm에서 흡광도를 측정하여 표준곡선에 따라 효소 활성을 분석하였다.
, USA) 를 이용하여 추출한 후 total RNA Clean up kit (Ambion, USA)를 사용하여 정제하였다. 정제된 RNA를 template로 SuperScript™ kit (Invitrogen, USA)를 이용하여 single stranded cDNA를 제조하였다. 간독성에 관련된 유전자들을 특이적으로 증폭하기 위해 primer (Table 1)를 제작하였으며 각 유전자의 발현 정도를 mGAPDH 유전자의 발현과 비교하여 확인하였다.
paraffin blocke 4 ㎛의 두께로 절편하였고 hema- toxylin과 eosin에 이 중 염색하였다. 조직은 Olympus BX50 (Japan)하에서 관찰하였고, Olympus DP-71을 사용해 촬영하였다.
채취한 혈액은 4,000 ×g에서 원심 분리하여 AST (aspartate aminotransferase), ALT (alanine aminotransferase), LDH (lactate dehydrogenase) 및 ALP (alkaline phosphate) 활성을조사하였다. AST와 AST 분석은 Reitman-Frankle법[29]에 따라 조제된 kit (Asan, Korea)를 사용하여 기질액을 37℃에서 5분간 반응시킨 후 혈장을 첨가하여 37℃에서 ALT는 30분, AST는 60분간 반응시켰다.
24시간 경과 후에 혈액을 경동맥에서 채취하여 2,000 ×g에서 15분간 원심분리 한 후 혈장만을 회수하여 분석 전까지 -80℃에서 보관하였다. 혈액 채취 후 실험동물로부터 간 조직을 적출하여 생리식염수에 세척한 후 여과지로 물기를 닦아내었다. 이후 간 조직의 중량을 측정하였고 조직 관찰을 위하여 간 조직의 일부를 FAA에 고정하였고 나머지는 차후 실험을 위해 -80℃에서 보관하였다.
대상 데이터
SL-800 실험군)으로 나누었다. 각 실험군은 군당 10 마리씩 실험에 사용하였으며, 매일 일정한 시간에 체중을 측정하였다. 모든 시험 약물은 극소량의 DMSO (dimethyl sulf- oxide)에 용해 후 생리식염수와 1%의 olive oil로 희석하여 D-galactosamine 투여 2일 전, 1일 전 및 2시간 전에 3회씩 경구 투여하였다.
본 실험에 사용한 4주령 수컷 흰쥐(Sprague-Dawley)는 ㈜ 샘타코에서 구입하였으며 사육실에서 일정한 조건(온도 21.4 ℃±0.05℃, 습도 61%, 명암은 12시간 주기)에서 사육하였다. 식이는 물과 사료(AIN-93G purified rodent diet)를 충분히섭취하게 하면서 1주일 동안 순치한 뒤 체중이 150±10 g인흰쥐를 선별하여 실험에 사용하였다.
모든 동물실험 과정은안동대학교 동물실험윤리위원회의 승인을 취한 후 실시하였다(2014-3-1111-05-01). 본 연구에 사용된 시약은 Sigma-Aldrich (St. Louis, USA)로부터 구입하였으며 기타의 시약은 별도로표기하였다.
본 연구의 다슬기(Semisulcospira libertina)는 경북 안동 남선면 갈라산에서 채집, 동정하여 사용하였다. 다슬기의 열수 추출물은 다슬기를 이틀 간 해감과정을 거친 뒤 가식 부만을 골라낸 공시료에 증류수를 첨가해 3시간 동안 100℃에서 추출하였다.
05℃, 습도 61%, 명암은 12시간 주기)에서 사육하였다. 식이는 물과 사료(AIN-93G purified rodent diet)를 충분히섭취하게 하면서 1주일 동안 순치한 뒤 체중이 150±10 g인흰쥐를 선별하여 실험에 사용하였다. 모든 동물실험 과정은안동대학교 동물실험윤리위원회의 승인을 취한 후 실시하였다(2014-3-1111-05-01).
데이터처리
각 실험에서 얻어진 결과는 평균 ± 표준오차로 나타내었다. 통계처리는 SPSS (version 12.
간독성에 관련된 유전자들을 특이적으로 증폭하기 위해 primer (Table 1)를 제작하였으며 각 유전자의 발현 정도를 mGAPDH 유전자의 발현과 비교하여 확인하였다. 유전자의 발현은 전기 영동 후 Gel image analysis system (Core Bio iMaxTM, Korea)에서 UV illumi- nator로 결과를 확인하였으며, 발현 수준은 Un-SCAN-IT gel Version 5.1 (Silk Scientific, Inc.) 프로그램을 통해 분석하였다.
통계처리는 SPSS (version 12.0)로 분석한 후 t-검정을 실시하여 분산과 평균의 동일성 여부를 검정하였으며, 분석결과는 일원분산분석(one way ANOVA)에 의한 Duncan 검정을 실시하여 p값이 0.05 미만일 때 유의한 것으로 간주하였다.
이론/모형
이 후 37℃에서 10분간 방치하였고 염산으로 반응을 종료시킨 후 570 nm에서 흡광도를 측정하였으며 표준곡선에 따라활성도를 분석하였다. ALP는 Kind-King [19]법에 따라 조제된 kit (Asan, Korea)를 사용하여 기질 완충액에 혈장을 첨가한 후에 표준액과 혼합하여 37℃에서 15분간 반응시켰다. 이후 정색시약을 처리하여 10분간 실온 방치한 다음 570 nm에서 흡광도를 측정하여 표준곡선에 따라 효소 활성을 분석하였다.
AST와 AST 분석은 Reitman-Frankle법[29]에 따라 조제된 kit (Asan, Korea)를 사용하여 기질액을 37℃에서 5분간 반응시킨 후 혈장을 첨가하여 37℃에서 ALT는 30분, AST는 60분간 반응시켰다. 이후 정색시액(2, 4-dinitrophenyl- hydrazine, 19.
025가 되도록 조절하고 SOD 활성은 cytochrome C의 환원 속도를 50% 억제하는 양을 1 unit 으로 정의하였다. CAT (catalase)의 활성은 Aebi [2]의 방법에따라 측정하였다. 50 mM phosphate buffer (pH 7.
효소의 활성은 1 mg의 단백질이 1분 동안에 1 μM의 H2O2를 분해시키는 효소의 양을 1 unit로하였다. GPX (glutathione peroxidase)의 활성은 Flohe 등[7] 의 방법에 따라 측정하였다. 1 mM EDTA를 함유한 100 mM phosphate buffer (pH 7.
활성도는 표준검량선에 따라 혈장 1 ml당 Karmen unit (IU/l)로 표시하였다. LDH의 측정은 Wroblewskin와 LaDue [33]의 방법에 따라 조제된 kit (Sigma-Aldrich, St. Louis, USA)를 사용하여 측정하였다. 기질액과 정색시액을 1:1 로혼합하여 37℃에서 5분간 반응시킨 다음 시료와 혼합하였다.
Superoxide dismutase (SOD)의 활성은 McCord와 Frido- vich [25]의 방법에 따라 실시하였다. 50 mM potassium phosphate buffer (pH 7.
간 조직의 지질과산화 함량은 Ohkawa 등[26]의 방법을 이용하여 측정하였다. 간 조직에서 지방층을 제거하기 위하여 N-buthanol : pyridine의 혼합액(15:1) 300 μl를 첨가한 후 3, 500 ×g에서 10분간 원심 분리하였으며 532 nm에서 상층액의 흡광도를 측정하였다.
간 조직의 총 지질 함량은 Folch 등[8]과 Bligh와 Dyer [4] 의 방법에 따라 분석하였다. 간 조직 시료를 만들기 위하여 간 조직에 chloroform : methanol 혼합액(2:1)을 첨가하여 균질화하였고, 4, 000 ×g에서 10분간 원심 분리한 후 chloroform 층을 분리하였다.
성능/효과
상대적 TNF-α 발현율을 분석하였다. GalN 실험군에 대한대조군의 TNF-α 발현율은 29.5%으로 나타났으며 양성 대조군인 silymarin과 UDCA 실험군은 각각 58.4%, 76.3%로 확인되었다. 본 연구의 SL-300 실험군은 48.
활성을 조사하였다. 각 실험군별 SOD 활성은 D-galactos- amine의 투여에 따라 감소하여 GalN군이 31.02±4.32 unit으로 가장 낮은 SOD 활성을 보였으며, 이러한 효소 활성 변화는 CAT와 GPX에서도 나타나 GalN군의 CAT 활성은 18.25± 4.58 unit, GPX 활성은 12.33±1.36 unit으로 나타나 GalN군에서 항산화효소의 활성이 모두 감소하는 경향을 보였다. 양성대조군인 silymarin 실험군과 UDCA 실험군은 GalN 실험군에 비해 항산화효소의 활성이 대조군과 유사한 수준을 보였다.
본 연구에서도 다슬기 열수 추출물은 D-galactosamine에 의해 간독성이 유발된 실험군에 비하여 TNF-α의 발현을 효과적으로 억제시킨 것으로 조사되었다. 다슬기 열수 추출물이 HO-1의 발현에 미치는 영향을 조사한 결과 실험군별 발현 수준에 유의적인 차이를 보이지 않아 다슬기 열수 추출물이 염증 반응에 세포를 보호하는 데에는 주목할 만한 영향을 미치지 않는 것으로 확인되었다(data not shown). 따라서 다슬기 열수 추출물에 의한 염증 반응 억제는 TNF-α의 발현을 통해 조절되어 나타나는 것으로 판단되며, 차후 심층적인 연구를 통하여 다슬기 열수 추출물의 효능 검증이 필요할 것으로 사료된다.
과산화지질 함량을 조사하였다. 대조군의 지질함량은 31.0 ±1.0 mg/g 로 나타났으나 D-galactosamine으로 간독성을 유발한 GalN 실험군은 60.9±1.0 mg/g 로 유의하게 증가하였다. 이러한 증가는 SL-300 실험군에서 35.
3 IU/l로 나타나 대조군과 유사한 수준으로 보호되는경향을 보였다. 또한 LDH의 수치는 대조군이 1063.2 ±14.6 IU/l인데 반해 GalN 실험군이 2350.0±10.2 IU/l으로 나타나간독성 유발 후 높은 수준을 보였으나 SL-300 실험군에서 1742.5±4.9 IU/l로 감소하였고, 특히 SL-800 실험군의 경우 1247.7±11.5 IU/l로 나타나 양성 대조군 보다 대조군의 LDH 수준으로 유지되는 것으로 확인되었다. 또한 대조군의 ALP 수치는 584.
1C, Fig 1D). 또한 SL-300 실험군의 경우 일부 간세포에서 지방 공포 현상이 발견되었으나, 동모양 모세혈관이 fibrin의 축적이 크게 감소하여 내강이 다소 넓어져 있었으며 중심 정맥에서부터 방사상으로 간세포가 배열되고 세포괴사가 관찰되지 않았다(Fig. 1E). 이러한 국소적인 간 손상은 SL-800 실험군에서 크게 완화되어 중심에 위치한 간샘꽈리(hapatic acinus)의 문로 주위에서 말단간세정맥이 관찰되고 핵소체가 두드러진 커다란 다각형의 간세포가 가장자리에 흩어져 있어 대조군과매우 유사한 상태로 회복되었다(Fig.
2). 또한 염증 반응에 의한 조직상해 및 괴사에 미치는 영향을 단백질 수준에서 정량하기 위한 western blot 분석 결과 대조군의 TNF-α의 단백질 발현율은 13.2%으로 나타났으며 양성 대조군인 silymarin과 UDCA실험군은 각각 48.3%, 31.5%로 확인되었다. 본 연구의 SL-300 실험군은 50.
5 IU/l로 유의하게 증가하였다. 반면 SL-300 실험군의 AST 활성은 92.0±0.3 IU/l으로 간독성 유발군에 비해 감소하였으며 특히 SL-800 실험군의 경우 AST 활성이 80.4±0.7 IU/l 로 나타나 양성대조군인 silymarin과 UDCA 실험군보다도낮은 활성을 보였다. 실험군별 혈액 내 ALT 활성은 대조군이 36.
2 μg/mg로 높은 수준을 보였다. 반면 SL-300 실험군의 과산화지질 함량은 1.2±0.1 μ g/mg로 간독성 유발군에 비해 비교적 낮은 수치를 보였으며 SL-800 실험군의 경우 과산화지질 함량이 1.1±0.2 μg/mg로 나타나 대조군과 유사한 수준으로 유지되는 경향을 보였다(Table 4).
또한 Wills와 Asha [32]는 D-galactosamine 투여에따라 광범위한 간세포 괴사와 변성, 염증세포의 침윤 및 세포질 공포화가 심하게 나타났으나 실고사리과 식물인 Lygodium flexuosum을 처리함에 따라 간병변이 감소하였다고 보고한 바있다. 본 연구에서 D-galactosamine에 의한 국소적인 세포 공포 현상과 간 조직의 염증반응, 괴사, 공포화 현상은 다슬기열수 추출물을 처리함에 따라 완화되었다. 특히 SL-800 실험군의 경우 양성 대조군인 silymarin과 UDCA 실험군에서 나타난 국소적인 지방 변성과 염증세포 침윤도 관찰되지 않아실험군 중 가장 대조군과 유사한 수준으로 간 조직을 보호하는 것으로 조사되었다.
또한 Lee 등[21]은 흰쥐에 glutathoine과 seleum yeast 을 혼합한 DWP-04를 투여하여 D-galactosamine에 의한 간 보호 효과를 확인한 시험에서 DWP-04는 독성물질에 의한 지질과산화물의 함량을 감소시켜 산화적 반응에 의한 간 손상을 억제시키는 데 효과적이었다고 보고한 바 있다. 본 연구에서도 D-galactosamine로 인해 현저하게 상승되는 지질함량과 지질 과산화 함량은 다슬기 열수 추출물을 처리한 실험 군에서 대조군과 유사한 수준을 유지하는 양상을 보였는데, 특히 SL-800 실험군은 다른 실험군과 비교하여 간의 지질함량과 지질 과산화 함량이 유의하게 낮은 것으로 조사되었다. 이와 같은 결과를 바탕으로 다슬기 열수 추출물은 D-galactos- amine에 의한 자유라디칼의 생성을 감소시킴으로서 조직 중의 지질함량과 지질과산화를 억제시켜 지질대사 개선에 효과가 있을 것으로 생각된다.
또한 Choi 등[6]은 순무(Brassica rapa)가 D-galactosamine에 의한 급격히상승된 LDH와 ALP의 활성을 유의하게 억제하여 간 장해에의한 보호효과가 높을 것이라 보고하였다. 본 연구에서도 D-galactosamine로 인해 현저하게 상승된 AST와 ALT, LDH 및 ALP 활성은 다슬기 열수 추출물을 처리함에 따라 대조군수준으로 유지되는 양상을 보였는데, 특히 SL-800 실험군은다른 실험군에 비해 상승된 간 손상 지표효소의 활성이 현저히 감소되어 대조군과 가장 유사한 수준을 보이는 것으로 조사되었다.
또한 Kim 등 [15]은 녹차(Camellia sinensis) 추출물이 에탄올에 의한 조기 간세포에 미치는 영향을 관찰하기 위해 TNF-α의 발현율을 확인한 결과 에탄올 투여 후 간 조직 내 TNF-α의 발현율이 증가하였으나 녹차 추출물을 투여함에 따라 TNF-α량 증가가 억제되는 것으로 보아 간 손상을 억제하는데 중요한 역할을 할 것이라 시사한 바 있다. 본 연구에서도 다슬기 열수 추출물은 D-galactosamine에 의해 간독성이 유발된 실험군에 비하여 TNF-α의 발현을 효과적으로 억제시킨 것으로 조사되었다. 다슬기 열수 추출물이 HO-1의 발현에 미치는 영향을 조사한 결과 실험군별 발현 수준에 유의적인 차이를 보이지 않아 다슬기 열수 추출물이 염증 반응에 세포를 보호하는 데에는 주목할 만한 영향을 미치지 않는 것으로 확인되었다(data not shown).
또한 Ha 등[9]은 표고버섯(Lentinus edodes) 균사체가 에탄올에 의한 간 손상 동물모델에서 SOD와 catalase의 활성을 증가시킨 것으로 보아 산화스트레스를 감소시킴으로서 간을 보호하는 효과가 있다고 하였다. 본 연구에서도 다슬기 열수 추출물의 처리에 따라간 독성에 대한 항산화효소의 활성이 대조군 수준으로 유지되는 것으로 나타났다. 이는 다슬기 열수 추출물이 독성물질에 대한 산화적 스트레스를 감소시키기 위해 항산화효소의 활성을 높여 간세포의 손상을 감소시켜 나타난 결과로 생각된다.
3%로 확인되었다. 본 연구의 SL-300 실험군은 48.6%, SL-800 실험군은 37.3%로 조사되어 SL-800 실험군에서 대조군에 가장 근접한 TNF-α 발현율을 보였다(Fig. 2). 또한 염증 반응에 의한 조직상해 및 괴사에 미치는 영향을 단백질 수준에서 정량하기 위한 western blot 분석 결과 대조군의 TNF-α의 단백질 발현율은 13.
5%로 확인되었다. 본 연구의 SL-300 실험군은 50.5%, SL-800 실험군은 26.3%로 조사되었다(Fig. 3).
최근 연구에서 약물에 의한 간질환은 외래물질의 대사에 있어 중심 장기인 간을 직접적으로 손상시켜 생체 대사의 이상 현상과 체조직의 합성 방해를 초래하기 때문에 체중과 간 조직의 중량이 낮게 나타난다고 보고된 바 있다[23]. 본연구에서도 실험군 중 체중과 간 조직의 중량은 GalN 실험군이 가장 낮게 나타났으나 다슬기를 경구 투여한 실험군은 대조군과 유사한 수준을 유지하는 것으로 나타났다.
7 IU/l 로 나타나 양성대조군인 silymarin과 UDCA 실험군보다도낮은 활성을 보였다. 실험군별 혈액 내 ALT 활성은 대조군이 36.4±0.1 IU/l로 나타났으나 간독성을 유발한 GalN 실험군은 109.6±0.6 IU/l로 높은 활성을 보였다. 이러한 증가는 SL-300 실험군에서 56.
1B). 양성대조구로 사용된 silymarin과 UDCA 실험군의 경우 간세포의 괴사는 관찰되지 않았고 국소적으로 지방 변성과 염증세포의 침윤이 관찰되었으나 GalN 실험군과 비교할 때 그 정도는 매우 미미한 것으로 확인되었다(Fig. 1C, Fig 1D). 또한 SL-300 실험군의 경우 일부 간세포에서 지방 공포 현상이 발견되었으나, 동모양 모세혈관이 fibrin의 축적이 크게 감소하여 내강이 다소 넓어져 있었으며 중심 정맥에서부터 방사상으로 간세포가 배열되고 세포괴사가 관찰되지 않았다(Fig.
36 unit으로 나타나 GalN군에서 항산화효소의 활성이 모두 감소하는 경향을 보였다. 양성대조군인 silymarin 실험군과 UDCA 실험군은 GalN 실험군에 비해 항산화효소의 활성이 대조군과 유사한 수준을 보였다. SL-300 실험군의 경우 SOD의 활성은 32.
본 연구에서 D-galactosamine에 의한 국소적인 세포 공포 현상과 간 조직의 염증반응, 괴사, 공포화 현상은 다슬기열수 추출물을 처리함에 따라 완화되었다. 특히 SL-800 실험군의 경우 양성 대조군인 silymarin과 UDCA 실험군에서 나타난 국소적인 지방 변성과 염증세포 침윤도 관찰되지 않아실험군 중 가장 대조군과 유사한 수준으로 간 조직을 보호하는 것으로 조사되었다.
후속연구
다슬기 열수 추출물이 HO-1의 발현에 미치는 영향을 조사한 결과 실험군별 발현 수준에 유의적인 차이를 보이지 않아 다슬기 열수 추출물이 염증 반응에 세포를 보호하는 데에는 주목할 만한 영향을 미치지 않는 것으로 확인되었다(data not shown). 따라서 다슬기 열수 추출물에 의한 염증 반응 억제는 TNF-α의 발현을 통해 조절되어 나타나는 것으로 판단되며, 차후 심층적인 연구를 통하여 다슬기 열수 추출물의 효능 검증이 필요할 것으로 사료된다.
본 연구에서도 D-galactosamine로 인해 현저하게 상승되는 지질함량과 지질 과산화 함량은 다슬기 열수 추출물을 처리한 실험 군에서 대조군과 유사한 수준을 유지하는 양상을 보였는데, 특히 SL-800 실험군은 다른 실험군과 비교하여 간의 지질함량과 지질 과산화 함량이 유의하게 낮은 것으로 조사되었다. 이와 같은 결과를 바탕으로 다슬기 열수 추출물은 D-galactos- amine에 의한 자유라디칼의 생성을 감소시킴으로서 조직 중의 지질함량과 지질과산화를 억제시켜 지질대사 개선에 효과가 있을 것으로 생각된다.
참고문헌 (33)
Adzharov, D., Donchev, N., Kerimova, M., Naidenova, E. and Borov, B. 1989. Effects of preliminary fasting on the development of D-galactosamine-induced acute lesion of the liver in rats. Biull. Exsp. Biol. Med. 107, 33-36.
Aebi, H. 1984. Catalase in vitro, pp. 121-126, In: Packer (eds.), Methods in Enzymology.. Academic Press: New York, USA.
Balakrishnan, S. D. and Anuradha, C. V. 1998. Exercise depletion of antioxidants and antioxidant manipulation. Cell Biol. 16, 269-275.
Bligh, E. G. and Dyer, W. J. 1959. A rapid method of total lipid extraction and purification. Can. J. Biochem. Physiol. 37, 911-917.
Bradford, M. M. 1976. A rapid and sensitive method for the quantitation of microgram quantities of protein utilizing the principle of protein-dye binding. Anal. Biochem. 72, 248- 254.
Choi, H. J., Han, M. J., Baek, N. I., Kim, D. H., Jung, H. G. and Kim, N. J. 2006. Hepatoprotective effects of Brassica rapa (Turnip) on d-galatosamine induced liver injured rats. Kor. J. Pharmacol. 37, 258-265.
Flohe, L., Wolfgang, A. and Gunzler, W. A. 1984. Assay of glutathione peroxidase. pp. 105-114. In: Packer (eds.), Methods in enzymatic analysis. Academic Press, New York, USA.
Folch, J., Mee, L. and Stanley, G. S. H. 1975. A simple method for the isolation and purification of total lipid from animal tissues. J. Biol. Chem. 226, 497-509.
Ha, Y. L., Kim, Y. S., Ahn, C. R., Kweon, J. M., Park, C. W., Ha, Y. K. and Kim, J. O. 2010. Mycelial culture of Lentinus edodes alleviates rat liver toxicity induced by carbon tetrachloride and ethanol. J. Life Sci. 20, 133-141.
Han, E. K., Jin, Y. X., Yoo, Y. S., Jung, E. J., Lee, J. Y. and Chung, C. K. 2009. Effect of Artemisia capillaris and Paecilomyces japonica on the reduction of hepatotoxicity and lipid metabolism induced by ethanol. J. Kor. Soc. Food Sci. Nutr. 38, 1016-1023.
Han, S. H., Kim, J. B., Min, S. G. and Lee, C. H. 1995. The effects of Puerariae Radix catechins administration on liver function in carbon tetrachloride-treated rats. J. Kor. Soc. Food Nutr. 24, 713-719.
Huber, R., Hockenjos, B. and Blum, H. E. 2004. DDB treatment of patients with chronic hepatitis. Hepatology 39, 1732-1733.
Jeon, T. W., Lee, E. S., Lee, Y. S., Ham, O. K., Park, M. H., Kim, K. J. and Kim, H. J. 2002. Hepatoprotective effects of Semisulcospira libertina and garlic on the liver damage induced by carbon tetrachloride in rats. J. Kor. Soc. Food Sci. Nutr. 31, 516-520.
Ki, S. H., Choi, J. H., Kim, C. W. and Kim, S. G. 2007. Combined metadoxine and garlic oil treatment efficaciously abrogates alcoholic steatosis and CYP2E1 induction in rat liver with restoration of AMPK activity. Chem. Biol. Interact 169, 80-90.
Kim, D. C., Jeong, S. W. and Park, P. S. 2010. Effect of green tea extract on acute ethanol-induced hepatotoxicity in rats. J. Kor. Soc. Food Sci. Nutr. 39, 343-349.
Kim, H. J., Mok, J. Y., Park, K. H., Jeon, I. H., Kim, H. S., Hwang, S. Y. and Jang, S. I. 2012. Protective effect on myeongganbo extract on acetaminophen-induced liver injury. Kor. J. Herbology 27, 85-91.
Kim, N. Y., Lee, J. S., Park, M. J., Lee, K. H., Kim, S. H., Choi, J. W. and Park, H. J. 2004. The hepatoprotective effect of active compounds of Kochiae fructus on D-galactosamine-intoxicated rats. J. Kor. Soc. Food Sci. Nutr. 33, 1286-1293.
Kim, Y. K., Moon, H. S., Lee, M. H., Park, M. J., Lim, C. W., Park, H. Y., Park J. I., Yoon, H. D. and Kim, D. H. 2009. Biological activities of seven melania snails in korea. Korean J. Fish Aquat. Sci. 42, 434-441.
Kind, P. R. and King, E. J. 1954. Estimation of plasma phosphatase by determination of hydrolysed phenol with amino antipyrine. J. Clin. Pathol. 7, 322-326.
Lee, H. H., Yoon, J. S. and Song, S. Y. 2010. Protective effect of Lithospermum erythrorhizon on galactosamine induced liver injury. Kor. J. Microscopy 40, 29-35.
Lee, J. H., Chi, S. C., Kim, S. H., Shin, Y. H. and Choi, J. W. 2005. Protective effect of DWP-04 against hepatotoxicity induced by D-galactosamine. J. Life Sci. 15, 461-467.
Lee, M. S., Park, J. B. and Yoon, S. H. 2005. Hepatoprotective effects of the water extract from Semisulcospira gottschei against liver injuries induced by carbon tetrachloride in rats. J. Kor. Soc. Hygienic Sci. 11, 17-26.
Lee, T. J. and Min, K. J. 2010. The effect of Allium sativum L. extract on hepatic function if rats with CCl 4 -induced (hepatic) injury. J. Kor. Acad. Industr. Coop. Soc. 11, 1936-1942.
Lim, C. W., Kim, Y. K., Kim, D. H., Park, J. I., Lee, M. H., Park, H. Y. and Jang, M. S. 2009. Comparison of quality characteristics of melania snails in Korea. Kor. J. Fish Aquat. Sci. 42, 555-560.
McCord, J. M. and Fridovich, I. 1969. Superoxide dismutase an enzymic function ferythrocuprotein (Hemocuprotein). J. Biol. Chem. 244, 6049-6055.
Ohkawa, H,. Ohishi, N. and Yagi, K. 1979. Assay for lipid peroxides in animal tissues by thiobarbituric acid reaction. Anal. Biochem. 95, 351-358.
Oyanagui, Y. 1989. SOD and active oxygen modulator. pp 17-36. Nihin Igakukan: Tokyo, Japan.
Park, J. Y., Park, C. M., Kim, J. J. and Song, Y. S. 2008. Hepatoprotective activity of dandelion (Taraxacum officinale) sater extract against D-galactosamine-induced hepatitis in rats. J. Kor. Soc. Food Sci. Nutr. 37, 177-183.
Reitman, S. and Frankel, S. A. 1957. Colorimetric method for determination of serum glutamic oxalacetic and glutamic pyruvic transaminases. Am. J. Clin. Pathol. 28, 56-63.
Wang, G. X., Ben, C. E. and Ye, B. K. 1988. Reparative effects of biphenyl dimethyl dicarboxylate on experimental liver injury in rats with histochemical and electronmicroscopy study. Chin. J. Integrat. Tradit. Western Med. 8, 158-160.
Wang, J. and Wendel, A. 1990. Studies on the hepatotoxicity of galactosamine endotoxin or galactosamine/TNF in the perfused mouse liver. Biochem. Pharmacol. 39, 267-270.
Wills, P. J. and Asha, V. V. 2006. Protective effect of Lygodium flexuosum (L.) Sw. (Lygodiaceae) against D-galactosamine induced liver injury in rats. J. Ethanopharmacol. 108, 116-123.
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