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수수 추출물에 의한 primary 전립선 암세포의 caspase 의존성 apoptosis 유도 및 대식세포 면역활성 증가
Sorghum Extract Enhances Caspase-dependent Apoptosis in Primary Prostate Cancer Cells and Immune Activity in Macrophages 원문보기

생명과학회지 = Journal of life science, v.26 no.12 = no.200, 2016년, pp.1431 - 1437  

조현동 (경북대학교 식품공학과) ,  김정호 (순천대학교 식품영양학과) ,  홍성민 (동아대학교 생명공학과) ,  이주혜 (농촌진흥청 국립농업과학원 농식품자원부 기능성식품과) ,  이용석 (동아대학교 생명공학과) ,  김두현 (동아대학교 생명자원산업학과) ,  서권일 (동아대학교 생명공학과)

초록
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본 연구에서는 수수 에탄올 추출물(ethanol extract of Sorghum bicolor L., SE)을 이용하여 RC-58T/h/SA#4 primary 인체 전립선 암세포에 대한 apoptosis 유도효과 및 RAW 264.7 마우스 대식세포에 대한 면역활성 증진효능에 대해 알아보고자 하였다. SE의 처리는 RC-58T/h/SA#4 세포의 증식을 억제하였으며 세포수축을 통한 형태학적 변화를 유발하였다. 또한 apoptosis 관련 지표현상인 apoptotic body 및 핵의 형태변화를 관찰할 수 있었다. RC-58T/h/SA#4 세포에 SE를 처리하였을 때 caspase-8, -9, -3 단백질 활성을 증가시켰으며 pro-apoptotic 단백질인 Bax, p53, 분절된 PARP 및 세포질의 cytochrome c 단백질은 증가시킨 반면, anti-apoptotic 단백질인 Bcl-2 단백질은 감소시켰다. 이는 z-VAD-fmk로 caspase 활성을 억제시켰을 때 SE에 의한 세포증식 억제효과가 감소되었으며 이를 통해 SE에 의한 세포증식 억제효과는 caspase 의존적임을 확인할 수 있었다. 면역반응에서 nitric oxide(NO)의 증가는 면역활성 지표로 여겨지며, 본 연구에서 SE를 처리하였을 때 RAW 264.7 세포에서 NO 생성능이 증가하는 것으로 나타났다. 본 연구의 결과들은 SE가 primary 전립선 암세포에서 caspase 의존형 apoptosis를 유도하며 대식세포의 면역활성을 증가시킨다는 것을 나타낸다. 따라서 수수를 전립선 암 예방 및 면역활성을 증진효능이 있는 기능성 식품 소재로 활용할 수 있을 것으로 생각된다.

Abstract AI-Helper 아이콘AI-Helper

Sorghum bicolor L. is one of the important minor cereals in Asia, Africa, and the central United States, and it is considered a rich source of polyphenols, flavonoids, and dietary fiber. However, there is a lack of data on the anti-cancer activity of Sorghum in prostate cancer cells and immune activ...

주제어

AI 본문요약
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문제 정의

  • Lee 등[16]은 Bax/Bcl-2 family의 발현변화에 의해 mitochondria 투과성이 증대되면 cytochrome c가 세포질로 방출되고 이로 인해 caspase 단백질이 활성화 되어 caspase 의존형 apoptosis를 유도한다고 보고하였다. 본 연구에서 SE의 처리에 의한 primary 전립선 암세포의 apoptosis 유도 및 세포증식 억제효과가 caspase 활성과 관련이 있는지 재확인하기 위하여 caspase inhibitor인 z-VAD-fmk를 처리하여 세포생존율을 SRB assay로 알아보았다(Fig. 5). 그 결과 caspase inhibitor인 z-VAD-fmk를 전처리하여 인위적으로 caspase 활성을 억제한 군에서 250 및 500 μg/ml의 SE를 단독으로 처리한 군과 비교하여 유의적으로 높은 세포생존율을 나타내었으며, 이는 SE에 의한 세포사멸이 caspase 의존형 apoptosis와 관련이 있다는 것을 보여준다.
  • 이에 본 연구에서는 수수 에탄올 추출물의 처리가 전이되기 이전의 형태인 primary 전립선 암세포의 사멸 및 면역활성 증진에 미치는 영향을 확인하였으며 이를 기능성 소재로의 이용가능성을 제시하기 위한 기초자료로 활용하고자 하였다.
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질의응답

핵심어 질문 논문에서 추출한 답변
수수는 어떤 효능이 있는가? Moench)는 외떡잎식물 벼목 화본과의 한해살이 초본으로 아시아, 아프리카 및 중미 지역뿐만 아니라 국내에서도 재배되는 잡곡으로 예로부터 쌀과 함께 많이 섭취되고 있는 식량자원이다[20, 23]. 수수에는 식이섬유, polyphenol 화합물 및 flavonoid류의 유효성분이 다량 함유되어 있다고 보고되었으며[11], 항돌연변이 활성[6], 항산화 활성[13], 콜레스테롤 흡수억제[10], 항균[19] 및 난소암 억제효능[4] 등이 있다고 알려져 있다. 하지만 수수의 항암활성에 관련된 연구는 아직 미흡한 실정이며 특히 전이되기 이전의 primary 전립선암에 대한 보고는 거의 없다.
수수 에탄올 추출물을 이용하여 RC-58T/h/SA#4 세포에 처리한 결과, 각 단백질의 증감은 어떻게 나타났는가? 또한 apoptosis 관련 지표현상인 apoptotic body 및 핵의 형태변화를 관찰할 수 있었다. RC-58T/h/SA#4 세포에 SE를 처리하였을 때 caspase-8, -9, -3 단백질 활성을 증가시켰으며 pro-apoptotic 단백질인 Bax, p53, 분절된 PARP 및 세포질의 cytochrome c 단백질은 증가시킨 반면, anti-apoptotic 단백질인 Bcl-2 단백질은 감소시켰다. 이는 z-VAD-fmk로 caspase 활성을 억제시켰을 때 SE에 의한 세포증식 억제효과가 감소되었으며 이를 통해 SE에 의한 세포증식 억제효과는 caspase 의존적임을 확인할 수 있었다.
전립선 암을 예방하기 위한 연구는 어떤 세포를 주로 이용하는가? 이러한 전립선암의 치료방법으로는 호르몬 치료, 방사선 요법, 화학적 치료 등이 이용되고 있으나, 치료효과는 제한적이기에 암의 예방을 위한 관리에 중점을 두는 추세이다[2]. 전립선 암을 예방하기 위하여 다양한 기반연구들이 진행되고 있지만 대부분의 연구에서 LNCaP 및 PC-3와 같은 상피나 척추로 전이된 형태의 전립선 암세포만을 이용해 왔을 뿐, 전이되기 이전의 형태인 primary 전립선암세포를 사용한 연구는 미흡한 실정이다.
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참고문헌 (24)

  1. Byun, E. B., Jang, B. S., Sung, N. Y. and Byun, E. H. 2016. Immunomodulatory activity of crude polysaccharide separated from Cudrania tricuspidata leaf. J. Kor. Soc. Food Sci. Nutr. 45, 1099-1106. 

  2. Chung, M. K. 2004. Review of the treatment outcome in the adenocarcinoma of the prostate. J. Kor. Med. Assoc. 47, 432-440. 

  3. Darvin. P., Joung, Y. H., Nipin, S. P., Kang, D. Y., Byun, H. J., Hwang, D. Y., Cho, K. H., Park, K. D., Lee, H. K. and Yang, Y. M. 2015. Sorghum polyphenol suppresses the growth as well as metastasis of colon cancer xenografts through co-targeting jak2/STAT3 and PI3K/Akt/mTOR pathways. J. Funct. Foods 15, 193-206. 

  4. Dia, V. P., Pangloli, P., Jones, L., Mcclure, A. and Patel, A. 2016. Phytochemical concentrations and biological activities of Sorghum bicolor alcoholic extracts. Food Funct. 7, 3410-3420. 

  5. Fulda, S. and Debatin, K. M. 2006. Extrinsic versus intrinsic apoptosis pathways in anticancer chemotherapy. Oncogene 25, 4798-4811. 

  6. Grimmer, H. R., Parbhoo, V. and Mcgrath, R. M. 1992. Antimutagenicity of polyphenol-rich fractions from Sorghum bicolor grain. J. Sci. Food Agr. 59, 251-256. 

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  8. Kim, G. H., Lee, M. H., Han, M. H., Park, C., Hong, S. H. and Choi, Y. H. 2013. Induction of apoptosis by citri pericarpium methanol extract through reactive oxygen species generation in U937 human leukemia cells. J. Life Sci. 23, 1057-1063. 

  9. Kim, J. H. and Kim, M. Y. 2015. Anticancer effect of citrus fruit prepared by gamma irradiation of Budsticks. J. Life Sci. 25, 1051-1058. 

  10. Kim, J. Y., Noh, S. K., Woo, K. S. and Seo, M. C. 2016. Sorghum extract lowers lymphatic absorption of trans fat and cholesterol in rats. J. Kor. Soc. Food. Sci. Nutr. 45, 783-788. 

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  12. Kim, Y. E., Kwon, E. K., Han, D. S., Kim, I. H. and Ku, K. H. 2008. Antioxidant activity, fibrinolysis and angiotensin converting enzyme inhibitory activity of pine mushroom juice (Tricholoma matsutake Sing.). J. Kor. Soc. Food Sci. Nutr. 37, 535-541. 

  13. Kwak, C. S., Lim, S. J., Kim, S. A., Park, S. C. and Lee, M. S. 2004. Antioxidative and antimutagenic effects of Korean buckwheat, Sorghum, Millet and job's tears. J. Kor. Soc. Food Sci. Nutr. 33, 921-929. 

  14. Kwon, D. H., Kang, H. J., Choi, Y. H., Chung, K. T., Lee, J. H., Kang, K. H., Hyun, S. K., Kim, B. W. and Hwang, H. J. 2016. Immunomodulatory activity of water extract of Ulmus macrocarpa in Macrophages. J. Life Sci. 26, 50-58. 

  15. Lee, J. H., Oh, E. K., Cho, H. D., Kim, J. Y., Lee, M. K. and Seo, K. I. 2013. Crude saponins from Platycodon grandiflorum induce apoptotic cell death in RC-58T/h/SA#4 prostate cancer cells through the activation of caspase cascades and apoptosis-inducing factor. Oncol. Rep. 29, 1421-1428. 

  16. Lee, J. W. and Kim, Y. H. 2011. Activation of pro-apoptotic multidomain Bcl-2 family member Bak and mitochondria-dependent caspase cascade are involved in p-coumaric acid-induced apoptosis in human jurkat T cells. J. Life Sci. 21, 1678-1688. 

  17. Lee, S. M., Choi, H. K. and Yu, G. H. 2003. Effect of bisphenol A, nonylphenol, pentachlorophenol on the proliferation of MCF-7 and PC-3 cells. Kor. J. Biotechnol. Bioeng. 18, 424-428. 

  18. Park, H. Y., Lim, C. W., Kim, Y. K., Yoon, H. D. and Lee, K. J. 2006. Immunostimulating and anticancer activities of hot water extract from capsosiphon fulvescens. J. Kor. Soc. Appl. Biol. Chem. 49, 343-348. 

  19. Sa, Y. J., Kim, J. S., Kim, M. O., Jeong, H. J., Yu, C. Y., Park, D. S. and Kim, M. J. 2010. Comparative study of electron donating ability, reducing power, antimicrobial activity and inhibition of ${\alpha}$ -glucosidase by Sorghum bicolor extracts. Kor. J. Food Sci. Technol. 42, 598-604. 

  20. Seo, M. C., Ko, J. Y., Song, S. B., Lee, J. S., Kang, J. R., Kwak, D. Y., Oh, B. G., Yoon, Y. N., Nam, M. H., Jeong, H. S. and Woo, K. S. 2011. Antioxidant compounds and activities of foxtail millet, proso millet and sorghum with different pulverizing methods. J. Kor. Soc. Food Sci. Nutr. 40, 790-797. 

  21. Siegel, R., Miller, K. and Jemal, A. 2015. Cancer statistics, 2015. CA Cancer J. Clin. 65, 5-29 

  22. Wen, X., Lin, Z. Q., Liu, B. and Wei, Y. Q. 2012. Caspasemediated programmed cell death pathways as potential therapeutic targets in cancer. Cell Prolif. 45, 217-224. 

  23. Woo, K. S., Lee, J. S., Kang, J. R., Ko, J. Y., Song, S. B., Oh, B. G., Seo, M. C., Kwak, D. Y. and Nam, M. H. 2011. Effects of cultivated area on antioxidant compounds and antioxidant activities of sorghum (Sorghum biolor L. Moench. J. Kor. Soc. Food Sci. Nutr. 40, 1512-1517. 

  24. Wyllie, A. H., Kerr, J. F. and Currie, A. R. 1980. Cell death: the significance of apoptosis. Int. Rev. Cytol. 68, 251-306. 

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