$\require{mediawiki-texvc}$

연합인증

연합인증 가입 기관의 연구자들은 소속기관의 인증정보(ID와 암호)를 이용해 다른 대학, 연구기관, 서비스 공급자의 다양한 온라인 자원과 연구 데이터를 이용할 수 있습니다.

이는 여행자가 자국에서 발행 받은 여권으로 세계 각국을 자유롭게 여행할 수 있는 것과 같습니다.

연합인증으로 이용이 가능한 서비스는 NTIS, DataON, Edison, Kafe, Webinar 등이 있습니다.

한번의 인증절차만으로 연합인증 가입 서비스에 추가 로그인 없이 이용이 가능합니다.

다만, 연합인증을 위해서는 최초 1회만 인증 절차가 필요합니다. (회원이 아닐 경우 회원 가입이 필요합니다.)

연합인증 절차는 다음과 같습니다.

최초이용시에는
ScienceON에 로그인 → 연합인증 서비스 접속 → 로그인 (본인 확인 또는 회원가입) → 서비스 이용

그 이후에는
ScienceON 로그인 → 연합인증 서비스 접속 → 서비스 이용

연합인증을 활용하시면 KISTI가 제공하는 다양한 서비스를 편리하게 이용하실 수 있습니다.

은대구, Anoplopoma fimbria 소화기관의 형태 및 조직학적 특징
Morphology and Histology of the Digestive Organ in the Sablefish, Anoplopoma fimbria (Teleostei: Anoplopomatidae) 원문보기

Korean journal of Ichthyology = 한국어류학회지, v.28 no.1, 2016년, pp.19 - 27  

김수지 (전남대학교 수산생명의학과) ,  강주찬 (부경대학교 수산생명의학과) ,  이정식 (전남대학교 수산생명의학과)

초록
AI-Helper 아이콘AI-Helper

은대구의 소화관 상대길이 비는 1.52 (n=12)이며, 소화관은 위의 후방부에 5~6개의 유문수를 가진다. 점막주름의 형태는 식도와 위에서는 미분지형이지만 장에서는 분지형이다. 횡단면에서 소화관은 조직학적으로 점막층, 점막하층, 근육층 및 장막으로 구분할 수 있다. 식도의 점막상피층은 단층이며, 원주섬모상피세포들과 점액세포들로 구성된다. 위 점막층의 위선은 관상선으로 주세포, 벽세포 및 뮤신분비세포들로 구성된다. 뮤신분비세포는 원주형으로 AB-PAS (pH 2.5) 반응에서 분홍색과 푸른색을 나타내는 분비과립을 가진다. 장의 점막상피층은 단층이며, 원주섬모상피세포들과 배상세포들로 구성된다. 점막하층은 소성결합조직층으로 주로 교원섬유들로 구성되며, 식도에서 잘 발달되어 있다. 소화관의 근육층은 종주근층과 환상근층으로 구분되며, 위에서 잘 발달되어 있다. 간은 다수의 소엽구조와 담관들로 이루어져 있으며, H-E 염색에서 간세포의 세포질은 호산성이며, 핵과 인은 호염기성을 보였다. 췌장조직은 소화관 주변의 지방조직에 산재하며, 다수의 외분비세포들로 구성된 포상선이었다. H-E 염색에서 외분비선세포의 세포질은 호염기성을 나타내며, 다수의 호산성 전효소 과립들을 함유한다.

Abstract AI-Helper 아이콘AI-Helper

The RLG (relative length of gut) is 1.52 (n=12) in the sablefish, Anoplopoma fimbria. The digestive tract has five or six pyloric caeca in the posterior region of stomach. Morphology of mucosal fold is unbranched type in the esophagus and stomach, but branched type in the intestine. The histological...

주제어

AI 본문요약
AI-Helper 아이콘 AI-Helper

* AI 자동 식별 결과로 적합하지 않은 문장이 있을 수 있으니, 이용에 유의하시기 바랍니다.

문제 정의

  • 본 연구의 목적은 은대구의 초기생활사 동안 먹이 탐색을 위한 소화기관의 분화 및 발달 연구에 필요한 선행연구로서 성체 소화관의 형태 및 조직학적 특징을 기재하였다.
본문요약 정보가 도움이 되었나요?

질의응답

핵심어 질문 논문에서 추출한 답변
은대구는 무엇이며 주로 분포하는 지역은? 은대구, Anoplopoma fimbria는 쏨뱅이목(Scorpaeniformes), 은대구과 (Anoplopomatidae)에 속하는 경골어류로서 알레스카, 일본, 러시아, 북미 서부해안에 주로 분포하는 냉수성 대형종으로 중요한 상업종이기도 하다(Sasaki, 1985; Hanselman etal., 2011).
경골어류의 소화기관 기능은? 경골어류의 소화기관은 다른 척추동물과 마찬가지로 섭이를 통한 체성장과 발달에 필요한 영양분의 소화·흡수 측면에서 매우 중요한 기능을 담당하고 있다. 경골어류 소화관의 형태및 기능적 차이는 종과 어류의 식성에 따라 매우 다양하며, 소화관의 형태학적 정보는 어류의 섭이생리를 이해하는 데 매우 중요한 자료이다(Moraes et al.
은대구 소화기관인 식도의 형태학적 특징은? 26)(n=12)로 분석되었다. 식도는 직선형으로 길이는 소화관의 약 9%를 차지하였으며, 위는 상부 팽대부가 잘 발달하여 유문부까지 Y형으로 관찰되었으며, 후방부에는 5~6개의 유문수가 형성되어 있었다. 장은 외형적으로는 위 후방의 담관이 유입되는 바로 앞부터 항문부까지 신장된 부위로 길이는 전체 소화관의 약 75%를 차지하였으며, 소화관 중간 부위에 루프를 형성하고 있었다.
질의응답 정보가 도움이 되었나요?

참고문헌 (44)

  1. Abaurrea-Equisoain, M.A. and M.V. Ostos-Garrido. 1996. Cell types in the esophageal epithelium of Anguilla anguilla (Pisces, Teleostei). cytochemical and ultrastructural characteristics. Micron, 27: 419-429. 

  2. Al-Hussaini, A.H. 1949. On the functional morphology of the alimentary tract of some fish in relation to differences in their feeding habits: anatomy and histology. Q. J. Microsc. Sci., 90: 109-139. 

  3. Arellano, J.M., V. Storch and C. Sarasquete. 2001. A histological and histochemical study of the oesophagus and oesogaster of the Senegal sole, Solea senegalensis. Eur. J. Histochem., 45: 279-294. 

  4. Babkin, B.P. and D.J. Bowie. 1928. The digestive system and its function in Fundulus heteroclitus. Biol. Bull., 54: 254-277. 

  5. Bagarinao, T. and K. Thayaparan. 1986. The length-weight relationship, food habits and condition factor of wild juvenile milkfish in Sri Lanka. Aquaculture, 55: 241-246. 

  6. Caceci, T. 1984. Scanning electron microscopy of goldfish, Carassius auratus, intestinal mucosa. J. Fish Biol., 25: 1-12. 

  7. Cao, X.J. and W.M. Wang. 2009. Histology and mucin histochemistry of the digestive tract of yellow catfish, Pelteobagrus fulvidraco. Anat. Histol. Embryol., 38: 254-261. 

  8. Carrasson, M., A. Grau, L.R. Dopazo and S. Crespo. 2006. A histological, histochemical and ultrastructural study of the digestive tract of Dentex dentex (Pisces, Sparidae). Histol. Histopathol., 21: 579-593. 

  9. Chao, L.N. 1973. Digestive system and feeding habits of the cunner, Tautogolabrus adspersus, a stomachless fish. Fish. Bull., 71: 565-586. 

  10. Cho, N.G., Y.G. Jin, J.W. Lee, J.J. Park and J.S. Lee. 2008. Histopathological changes in the organs of the crucian carp, Carassius auratus (Teleostei: Cyprinidae) long-term exposed to nonylphenol. Bull. Fish. Sci. Inst. Chonnam Nat'l Univ., 17: 23-30. (in Korean) 

  11. Domeneghini, C., R. Pannelli Straini and A. Veggetti. 1998. Gut glycoconjugates in Sparus aurata L. (Pisces, Teleostei). A comparative histochemical study in larval and adult ages. Histol. Histopathol., 13: 359-372. 

  12. Domeneghini, C., S. Arrighi, G. Radaelli, G. Bosi and A. Veggetti. 2005. Histochemical analysis of glycoconjugate secretion in the alimentary canal of Anguilla anguilla L. Acta Histochem., 106: 477-487. 

  13. Faccioli, C.K., R.A. Chedid, A.C. do Amaral, I.B.F. Vicentini and C.A. Vicentini. 2014. Morphology and histochemistry of the digestive tract in carnivorous freshwater Hemisorubim platyrhynchos (Siluriformes: Pimelodidae). Micron, 64: 10-19. 

  14. Ferraris, R.P., J.D. Tan and M.C. De La Cruz. 1987. Development of the digestive tract of milkfish, Chanos chanos (Forsskal): histology and histochemisty. Aquaculture, 61: 241-257. 

  15. Fishelson, L., D. Golani, B. Russell, B. Galil and M. Goren. 2011. Comparative morphology and cytology of the alimentary tract in lizardfishes (Teleostei, Aulopiformes, Synodontidae). Acta Zool., 93: 308-318. 

  16. Fletcher, T.C. and P.T. Grant. 1969. Immunoglobulins in the serum and mucus of the plaice (Pleuronectes platessa). Biochem. J., 115: 65. 

  17. Germano, R.M., S.R. Stabille, R.B. Mari, J.N.B. Pereira, J.R.S. Faglioni and M.H. Miranda Neto. 2014. Morphological characteristics of the Pterodoras granulosus digestive tube (Valenciennes, 1821) (Osteichthyes, Doradidae). Acta Zool., 95: 166-175. 

  18. Grau, A., S. Crespo, M.C. Sarasquete and M.L. Gonzalez de Canales. 1992. The digestive tract of the amberjack Seriola dumerili, Risso: a light and scanning electron microscope study. J. Fish Biol., 41: 287-303. 

  19. Hanselman, D.H., C.R. Lunsford and C.J. Rodgveller. 2011. Assessment of the sablefish stock in Alaska. In: North Pacific Fishery Management Council (eds.), Stock assessment and fishery evaluation report for the ground fish of the gulf of Alaska and Bering Sea/Aleutian Islands. Anchorage, Alaska, pp. 307-412. 

  20. Hernandez, D.R., M. Perez Gianeselli and H.A. Domitrovic. 2009. Morphology, histology and histochemistry of the digestive system of South American catfish (Rhamdia quelen). Int. J. Morphol., 27: 105-111. 

  21. Humbert, W., R. Kirsch and M.F. Meister. 1984. Scanning electron microscopic study of the oesophageal mucous layer in the eel, Anguilla anguilla L. J. Fish Biol., 25: 117-122. 

  22. Jenkins, P.G., A.L. Pulsford and J.E. Harris. 1992. Microscopy of the absorptive cells and gut associated lymphoid tissue of the flounder Platichthys flesus. J. Mar. Biol. Assoc. U.K., 72: 553-567. 

  23. Kapoor, B.G., H. Smit and I.A. Verighina. 1975. The alimentary canal and digestion in teleosts. In: Russell, F.S. and M. Young (eds.), Advances in marine biology. Academic Press, London, pp. 109-239. 

  24. Kim, J.W., J.H. Jee, J.C. Kang, J.S. Lee and P. Chin. 2003. Histological response of kidney, gill and hepatopancreas of the juvenile olive flounder, Paralichthys olivaceus after PCBs exposure. J. Kor. Fish. Soc., 36: 283-289. (in Korean) 

  25. Lee, J.S. and P. Chin. 1995. Morphology and histochemical characteristics of the alimentary tract in surfperch, Ditrema temmincki. Korean J. Ichthyol., 7: 140-149. (in Korean) 

  26. Lee, J.S., J.C. Kang, Y.K. Shin, Y.G. Jin and J.J. Park. 2004. Toxicity of bis (tri-n-butyltin)oxide (TBTO) on the organ structure of the flounder, Paralichthys olivaceus. Korean J. Environ. Biol., 22: 133-140. (in Korean) 

  27. Leknes, I.L. 2010. Histochemical study on the intestine goblet cells in cichlid and poecilid species (Teleostei). Tissue Cell, 42: 61-64. 

  28. Lokka, G., L. Austbo, K. Falk, I. Bjerkas and E.O. Koppang. 2013. Intestinal morphology of the wild Atlantic salmon (Salmo salar). J. Morphol., 274: 859-876. 

  29. Marchetti, L., M. Capacchietti, M.G. Sabbieti, D. Accili, G. Materazzi and G. Menghi. 2006. Histology and carbohydrate histochemistry of the alimentary canal in the rainbow trout Oncorhynchus mykiss. J. Fish Biol., 68: 1808-1821. 

  30. Menin, E. and O.M. Mimura. 1993. Anatomia comparativa do estomago de tres peixes teleostei de ogua-doce de habito alimentar ictiofago. Rev. Ceres, 40: 203-222. 

  31. Moraes, M.F.P.G., I.F. Barbola and E.A.C. Guedes. 1997. Alimentacao e relacoes morfologicas com o aparelho digestivo do "curimbata", Prochilodus lineatus (Valenciennes) (Osteichthyes, Prochilodontidae), de uma lagoa do sul do Brasil. Rev. Bras. Zool., 14: 169-180. 

  32. Murray, H.M., G.M. Wright and G.P. Goff. 1996. A comparative histological and histochemical study of the post-gastric alimentary canal from three species of pleuronectid, the Atlantic halibut, the yellowtail flounder and the winter flounder. J. Fish Biol., 48: 187-206. 

  33. Park, J.Y. and I.S. Kim. 2001. Histology and mucin histochemistry of the gastrointestinal tract of the mud loach, in relation to respiration. J. Fish Biol., 58: 861-872. 

  34. Peretti, D. and I.F. Andrian. 2008. Feeding and morphological analysis of the digestive tract of four species of fish (Astyanax altiparanae, Parauchenipterus galeatus, Serrasalmus marginatus and Hoplias aff. malabaricus) from the upper Parana River floodplain, Brazil. Braz. J. Biol., 68: 671-679. 

  35. Rodrigues, S.S. and E. Menin. 2008. Anatomia do tubo digestivo de Salminus brasiliensis (Cuvier, 1817) (Pisces, Characidae, Salmininae). Biotemas, 21: 65-75. 

  36. Santos, C.M., S. Duarte, T.G.L. Souza, T.P. Ribeiro, A. Sales and F.G. Araujo. 2007. Histologia e caracterizacao histoquimica do tubo gastrintestinal de Pimelodus maculatus (Pimelodidae, Siluriformes) no reservatorio de Funil, Rio de Janeiro, Brasil. Iheringia. Ser. Zool., 97: 411-417. 

  37. Sasaki, T. 1985. Studies on the sablefish resources in the North Pacific Ocean. Far Seas Fisheries Research Laboratory, 108p. 

  38. Scocco, P., D. Accili, G. Menghi and P. Ceccarelli. 1998. Unusual glycoconjugates in the oesophagus of a tilapine polyhybrid. J. Fish Biol., 53: 39-48. 

  39. Seixas Filho, J.T., J.M. Bras, A.T.M. Gomide, M.G.A. Oliveira, J.L. Donzele and E. Menin. 2001. Anatomia funcional e morfometria do intestino no teleostei (Pisces) de agua doce surubim (Pseudoplatystoma coruscans - Agassiz, 1829). Rev. Bras. Zootec., 30: 1670-1680. 

  40. Spicer, S.S. and B.A. Schulte. 1992. Diversity of cell glycoconjugates shown histochemically: a perspective. J. Histochem. Cytochem., 40: 1-38. 

  41. Takashima, F. 1995. Digestive system. In: Takashima, F. and T. Hibiya (eds.), An atlas of fish histology. Kodansha Ltd. Tokyo, pp. 88-115. 

  42. Tibbetts, I.R. 1997. The distribution and function of mucous cells and their secretions in the alimentary tract of Arrhamphus sclerolepis krefftii. J. Fish Biol., 50: 809-820. 

  43. Wilson, J.M. and L.F.C. Castro. 2010. Morphological diversity of the gastrointestinal tract in fishes. In: Grosell, M., A.P. Farrell and C.J. Brauner (eds.), Fish physiology: the multifunctional gut of fish. Academic Press, San Diego, pp. 1-55. 

  44. Xiong, D., L. Zhang, H. Yu, C. Xie, Y. Kong, Y. Zeng, B. Huo and Z. Liu. 2011. A study of morphology and histology of the alimentary tract of Glyptosternum maculatum (Sisoridae, Siluriformes). Acta Zool., 92: 161-169. 

저자의 다른 논문 :

섹션별 컨텐츠 바로가기

AI-Helper ※ AI-Helper는 오픈소스 모델을 사용합니다.

AI-Helper 아이콘
AI-Helper
안녕하세요, AI-Helper입니다. 좌측 "선택된 텍스트"에서 텍스트를 선택하여 요약, 번역, 용어설명을 실행하세요.
※ AI-Helper는 부적절한 답변을 할 수 있습니다.

선택된 텍스트

맨위로