본 연구는 희소한우의 증식을 위해 성 감별 처리된 정자를 체내수정란 생산 및 이식 기술에 적용하고자 정자의 농도별 수정란 회수 결과를 조사하고, 생산된 수정란은 이식을 통해 후대 생산 기술을 정립하고자 실시하였다. 가축유전자원센터에서 보유 중인 칡소암소를 선발하여 공란우로 공시하였으며, 과배란처리는 발정주기에 관계없이 CIDR-Plus(Intravaginal Progesterone Releasing Device)를 질 내에 삽입하고, 4일 후부터 FSH(Antorin)를 12시간 간격으로 4일간 총 28AU(Amour unit) 절감 주사하고, FSH 주사 3일째 CIDR-Plus을 제거함과 동시에 $PGF_{2{\alpha}}$(Lutalyse) 3.0 ml를 주사해 과배란을 유기하였다. 인공수정은 발정이 확인된 후 12시간 간격으로 3회 실시하였다. 대조구의 경우, 보편적으로 사용하는 인공수정용 스트로우인 2,000만 농도의 칡소 동결정액 스트로우를 이용하였으며, 성감별 처리구의 경우, 스트로우 당 400만과 1,000만의 두 실험군으로 인공수정을 실시하였다. 수정란의 회수는 인공수정 후 7일째 되는 날 실시하였으며, 이식가능 수정란은 IETS의 기준에 따라 판정하였다. 대조구에서 체내수정란 회수 결과는 이식가능 수정란이 두 당 $6.20{\pm}2.28$개로 전체 회수 수정란의 67.39%로 나타났으나, 성감별 정자처리구에서는 $4{\times}10^6$ 농도에서 $4.33{\pm}5.39$개(26.53%), $10{\times}10^6$ 농도에서 $1.57{\pm}1.72$개(24.44%)로, 대조구에 비해 유의적으로 낮은 이식가능 수정란 결과를 나타냈다. 미수정란의 비율은 성감별 처리구가 각각 52.04%와 57.78%로 대조구의 8.70%에 비해 유의적으로 매우 높았다(p<0.05). 이식가능 수정란의 발달 단계에 대한 조사 결과, 대조구의 경우 초기배반포배 단계의 수정란이 30.43%로 가장 높은 비율을 차지했으며, 그 다음이 확장배반포배(19.57%), 상실배(17.39%) 단계였다. 반면에 처리구의 경우, 두 처리구 모두 상실배 단계의 수정란이 15.31%와 24.44%로 가장 높은 비율을 나타냈다. 생산된 체내수정란을 한우 수란우에 이식한 결과, 대조구의 경우 35.00%, 처리구의 경우 12.50%의 수태율을 나타내었다. 성감별 정자 유래 암송아지의 염색체 핵형분석 결과, 2n=60으로 일반 한우와 다르지 않은 염색체 분포 양상을 나타내었으며, 29개의 상동염색체와 XX 성 염색체를 가진 정상 암컷 개체임을 확인하였다.
본 연구는 희소한우의 증식을 위해 성 감별 처리된 정자를 체내수정란 생산 및 이식 기술에 적용하고자 정자의 농도별 수정란 회수 결과를 조사하고, 생산된 수정란은 이식을 통해 후대 생산 기술을 정립하고자 실시하였다. 가축유전자원센터에서 보유 중인 칡소 암소를 선발하여 공란우로 공시하였으며, 과배란처리는 발정주기에 관계없이 CIDR-Plus(Intravaginal Progesterone Releasing Device)를 질 내에 삽입하고, 4일 후부터 FSH(Antorin)를 12시간 간격으로 4일간 총 28AU(Amour unit) 절감 주사하고, FSH 주사 3일째 CIDR-Plus을 제거함과 동시에 $PGF_{2{\alpha}}$(Lutalyse) 3.0 ml를 주사해 과배란을 유기하였다. 인공수정은 발정이 확인된 후 12시간 간격으로 3회 실시하였다. 대조구의 경우, 보편적으로 사용하는 인공수정용 스트로우인 2,000만 농도의 칡소 동결정액 스트로우를 이용하였으며, 성감별 처리구의 경우, 스트로우 당 400만과 1,000만의 두 실험군으로 인공수정을 실시하였다. 수정란의 회수는 인공수정 후 7일째 되는 날 실시하였으며, 이식가능 수정란은 IETS의 기준에 따라 판정하였다. 대조구에서 체내수정란 회수 결과는 이식가능 수정란이 두 당 $6.20{\pm}2.28$개로 전체 회수 수정란의 67.39%로 나타났으나, 성감별 정자처리구에서는 $4{\times}10^6$ 농도에서 $4.33{\pm}5.39$개(26.53%), $10{\times}10^6$ 농도에서 $1.57{\pm}1.72$개(24.44%)로, 대조구에 비해 유의적으로 낮은 이식가능 수정란 결과를 나타냈다. 미수정란의 비율은 성감별 처리구가 각각 52.04%와 57.78%로 대조구의 8.70%에 비해 유의적으로 매우 높았다(p<0.05). 이식가능 수정란의 발달 단계에 대한 조사 결과, 대조구의 경우 초기배반포배 단계의 수정란이 30.43%로 가장 높은 비율을 차지했으며, 그 다음이 확장배반포배(19.57%), 상실배(17.39%) 단계였다. 반면에 처리구의 경우, 두 처리구 모두 상실배 단계의 수정란이 15.31%와 24.44%로 가장 높은 비율을 나타냈다. 생산된 체내수정란을 한우 수란우에 이식한 결과, 대조구의 경우 35.00%, 처리구의 경우 12.50%의 수태율을 나타내었다. 성감별 정자 유래 암송아지의 염색체 핵형분석 결과, 2n=60으로 일반 한우와 다르지 않은 염색체 분포 양상을 나타내었으며, 29개의 상동염색체와 XX 성 염색체를 가진 정상 암컷 개체임을 확인하였다.
The objective of this study was to investigate the result of in vivo embryo collection and pregnancy rate after embryo transfer using sex-sorted sperm of Korean brindle cattle. Donor Korean brindle cattle superovulation treated by decreasing dose of FSH injection. Embryos were recovered on 7 days af...
The objective of this study was to investigate the result of in vivo embryo collection and pregnancy rate after embryo transfer using sex-sorted sperm of Korean brindle cattle. Donor Korean brindle cattle superovulation treated by decreasing dose of FSH injection. Embryos were recovered on 7 days after the third artificial insemination. Control group semen straw used artificial insemination contained 20 million sperm. Sex-sorted semen straws contained 4 million sperm or 10 million sperm. As for the result of the recovery of the in vivo embryos derived from sex-sorted sperm, the number of transferable embryos was significantly highly recovered to be $6.20{\pm}2.28/donor$ from the control group and was significantly lowly recovered to be $1.57{\pm}1.72/donor$ from the group treated at a sperm concentration of $10{\times}10^6$ (p<0.05). The number of unfertilized embryo was $0.8{\pm}1.30/donor$ in control group which was significantly lower than the group treated at a sperm concentration of $4{\times}10^6$ (p<0.05). However, there was no significant difference in the number of undeveloped ova between control and treatment groups. Pregnancy rate after embryo transfer was shown to be 35.00% in control group and 12.50% in treatment group. The karyotype analysis of the calf derived from sex-sorted sperm resulted in a similar chromosomal distribution pattern (2n=60, XX) compared to those of common Korean native cattle.
The objective of this study was to investigate the result of in vivo embryo collection and pregnancy rate after embryo transfer using sex-sorted sperm of Korean brindle cattle. Donor Korean brindle cattle superovulation treated by decreasing dose of FSH injection. Embryos were recovered on 7 days after the third artificial insemination. Control group semen straw used artificial insemination contained 20 million sperm. Sex-sorted semen straws contained 4 million sperm or 10 million sperm. As for the result of the recovery of the in vivo embryos derived from sex-sorted sperm, the number of transferable embryos was significantly highly recovered to be $6.20{\pm}2.28/donor$ from the control group and was significantly lowly recovered to be $1.57{\pm}1.72/donor$ from the group treated at a sperm concentration of $10{\times}10^6$ (p<0.05). The number of unfertilized embryo was $0.8{\pm}1.30/donor$ in control group which was significantly lower than the group treated at a sperm concentration of $4{\times}10^6$ (p<0.05). However, there was no significant difference in the number of undeveloped ova between control and treatment groups. Pregnancy rate after embryo transfer was shown to be 35.00% in control group and 12.50% in treatment group. The karyotype analysis of the calf derived from sex-sorted sperm resulted in a similar chromosomal distribution pattern (2n=60, XX) compared to those of common Korean native cattle.
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문제 정의
국내에서는 Flowcytometry를 이용한 한우 정자의 성 감별(유, 2011)과 성 감별 시 희석제에 첨가되는 첨가제에 관한 연구(이 등, 2011), 성 감별 정자를 이용한 ICSI (Intracytoplasmic Sperm Injection)(조, 2013) 등 정자의 성 감별 기술에 대한 연구는 진행 중이나, 실제 가축의 증식 특히 희소한우에 적용한 연구사례는 아직 부족한 실정이다. 따라서 본 연구에서는 국립축산과학원 가축유전자원센터 내에 사육 중인 희소한우 품종 중 칡소의 보다 효율적인 증식을 위하여 칡소공란우 개체를 선발하고, 성 감별 처리된 칡소 정자를 과배란처리된 암컷에 인공수정한 뒤 다수의 수정란을 회수하여 한우 수란우에 이식함으로써 칡소 암컷의 반복적인 활용과 회수 되는 이식가능 수정란의 수, 수정란의 발달 단계, 수정란 이식 후 수태율에 대해 조사하고, 염색체 핵형분석을 실시하여 생산된 산자의 염색체 이상 여부에 대해 분석하고자 하였다.
본 연구는 희소한우의 증식을 위해 성 감별 처리된 정자를 체내수정란 생산 및 이식 기술에 적용하고자 정자의 농도별 수정란 회수 결과를 조사하고, 생산된 수정란은 이식을 통해 후대 생산 기술을 정립하고자 실시하였다. 가축유전자원센터에서 보유 중인 칡소 암소를 선발하여 공란우로 공시하였으며, 과배란처리는 발정주기에 관계없이 CIDR-Plus(Intravaginal Progesterone Releasing Device)를 질 내에 삽입하고, 4일 후부터 FSH(Antorin)를 12시간 간격으로 4일간 총 28AU(Amour unit) 절감 주사하고, FSH 주사 3일째 CIDR-Plus을 제거함과 동시에 PGF2α(Lutalyse) 3.
제안 방법
고정처리는 상기 고정액을 이용하였으며, 3회 반복 처리한 후 냉장 보관된 슬라이드의 가장자리에 3∼4방울을 떨어뜨려 염색체 표본을 제작하였다. 1번 염색체부터 성 염색체(XX)까지를 배열, 대조하여 성 감별 정자 유래 송아지의 핵형 분석을 실시하였다.
가축유전자원센터에서 보유 중인 칡소 암소를 선발하여 공란우로 공시하였으며, 과배란처리는 발정주기에 관계없이 CIDR-Plus(Intravaginal Progesterone Releasing Device)를 질 내에 삽입하고, 4일 후부터 FSH(Antorin)를 12시간 간격으로 4일간 총 28AU(Amour unit) 절감 주사하고, FSH 주사 3일째 CIDR-Plus을 제거함과 동시에 PGF2α(Lutalyse) 3.0 ml를 주사해 과배란을 유기하였다.
고정처리는 상기 고정액을 이용하였으며, 3회 반복 처리한 후 냉장 보관된 슬라이드의 가장자리에 3∼4방울을 떨어뜨려 염색체 표본을 제작하였다.
본 연구는 국립축산과학원 가축유전자원센터에서 보유하고 있는 칡소와 한우 개체 중 번식 장애가 없고, 외모 특성이 우수한 개체를 선발 후 실험에 공시하였다. 과배란처리 과정 중 인공수정을 위해 대조구는 성 감별 과정을 거치지 않은 칡소 동결정액을 이용하였고, 처리구는 성 감별 과정을 거친 칡소 동결정액을 이용하였다. 공시된 한우의 사양관리는 가축유전자원센터 사양표준에 따라 실시하였다.
인공수정은 발정이 확인된 후 12시간 간격으로 3회 실시하였다. 대조구의 경우, 보편적으로 사용하는 인공수정용 스트로우인 2,000만 농도의 칡소 동결정액 스트로우를 이용하였으며, 성감별 처리구의 경우, 스트로우 당 400만과 1,000만의 두 실험군으로 인공수정을 실시하였다. 수정란의 회수는 인공수정 후 7일째 되는 날 실시하였으며, 이식가능 수정란은 IETS의 기준에 따라 판정하였다.
마지막 인공수정 후 7일째에 3-way catheter(IMV Technologies, France)를 이용하여 비외과적인 방법으로 수정란을 회수하였다. 채란 전 공란우는 2% Lidocaine HCl(DAIHAN Pharm.
성 감별 정자를 이용하여 생산된 칡소 송아지의 염색체 개수 및 형태 등의 이상 여부를 조사하기 위해 염색체 핵형분석 (karyotype)을 실시하였다. Fig.
수정란의 이식은 공란우로부터 회수한 수정란을 발정 후 7일의 수란우 자궁 내에 이식하는 비 외과적인 이식방법(직장질법에 의한 자궁경관 경유법)으로 실시하였다. 임신 여부는 수정란 이식 후 약 2∼3개월 사이에 직장검사에 의한 임신감정을 실시함으로써 판단하였다.
시험축은 공란우의 발정주기와 관계없이 0일째 Progesterone Releasing Intravaginal Device(CIDR-plus, Inter-Ag, New Zealand)를 질내 삽입하고, 4일째부터 FSH(Antorin, KYORITSU SEIYAKU CO., Kawasaki Mitaka, Japan) 28 AU(1 AU=0.5 ml) 를 12시간 간격으로 4일간 점감 주사하였으며, CIDR 삽입 후 7일째 PGF2α(LutalyseTM, Phamacia Co., Belgium)를 오전 25 mg, 오후 15 mg을 12시간 간격으로 근육주사 후 CIDR를 제거 하였다.
(B)는 동일 연령의 한우 암송아지의 혈액을 동일한 방법으로 분석한 것이다. 염색체의 중기(metaphase)상을 확인한 뒤 염색체의 크기와 형태에 따라 나열하여 핵형(Karyotype)을 작성하였다. 두 개체 모두 염색체상은 60개(2n), 30쌍으로 나타났다.
인공수정은 PGF2α 주사 후 48시간 전후 발정을 확인하고, 100 μg GnRH(FertagylTM, Intervet, Holland)를 근육주사 후 12시간 간격으로 동결정액을 이용하여 인공수정을 3회 실시하였다.
0 ml를 주사해 과배란을 유기하였다. 인공수정은 발정이 확인된 후 12시간 간격으로 3회 실시하였다. 대조구의 경우, 보편적으로 사용하는 인공수정용 스트로우인 2,000만 농도의 칡소 동결정액 스트로우를 이용하였으며, 성감별 처리구의 경우, 스트로우 당 400만과 1,000만의 두 실험군으로 인공수정을 실시하였다.
혈액 배양은 90% RPMI 1640, 10% Fetal Bovine Serum(JRH Biosciences, West Lenexa, USA), 1% Penicillin & Streptomycin(Gibco, Invitrogen Corp. Grand Island, N.Y, USA)과 2% Lectin(Sigma, StLouis, MO, USA)이 배합된 완전 배양액에 1 ml의 전 혈액을 첨가하고, 37℃, 5% CO2의 배양기 조건에서 72시간 동안 배양하였다.
회수를 위한 관류액은 Embryo Collection Medium(Agtech, Manhattan, USA)를 이용하였고, 수정란 회수가 완료되면 PGF2α를 주사하여 자궁 내에 잔류하고 있는 수정란이 수태되지 않도록 황체를 퇴화시켰다.
대상 데이터
국립축산과학원 가축유전자원센터에서 보유하고 있는 개체 중 성 감별 정자 유래 칡소 송아지와 동일 연령(8개월)의 일반 한우 암컷을 대조군으로 분석을 실시하였다. 각 개체의 경정맥으로부터 일회용 주사기를 이용하여 약 5 ml의 혈액을 채취한뒤 헤파린이 함유된 진공채혈관에 보관하였다.
본 연구는 국립축산과학원 가축유전자원센터에서 보유하고 있는 칡소와 한우 개체 중 번식 장애가 없고, 외모 특성이 우수한 개체를 선발 후 실험에 공시하였다. 과배란처리 과정 중 인공수정을 위해 대조구는 성 감별 과정을 거치지 않은 칡소 동결정액을 이용하였고, 처리구는 성 감별 과정을 거친 칡소 동결정액을 이용하였다.
정자의 성 감별은 가축유전자원센터에 보유 중인 칡소 1두의 원정액을 채취하여 제조하였다. 성 분리는 MoFlo XDP Cell Sorter(Beckman Coulter, California, United states) 장비를 이용하였고, 실험에 공시된 정액의 총 정자 수는 스트로우당 400만 마리와 1,000만 마리 농도로 XX성별의 동결정액을 이용하였다. 성 분리 방법은 Tubman 등(2004)의 방법에 준하여 분리 하였다.
인공수정은 PGF2α 주사 후 48시간 전후 발정을 확인하고, 100 μg GnRH(FertagylTM, Intervet, Holland)를 근육주사 후 12시간 간격으로 동결정액을 이용하여 인공수정을 3회 실시하였다. 실험에 공시된 정액의 총 정자 수는 대조구인 일반 칡소 정액이 스트로우당 2,000만 마리, 처리구인 성 감별된 칡소 정액은 400만 마리와 1,000만 마리로 3회 인공수정을 실시 하였다.
정자의 성 감별은 가축유전자원센터에 보유 중인 칡소 1두의 원정액을 채취하여 제조하였다. 성 분리는 MoFlo XDP Cell Sorter(Beckman Coulter, California, United states) 장비를 이용하였고, 실험에 공시된 정액의 총 정자 수는 스트로우당 400만 마리와 1,000만 마리 농도로 XX성별의 동결정액을 이용하였다.
데이터처리
정자 성 감별에 따른 회수된 이식가능 수정란의 개수와 발달단계의 유의성 분석은 SAS program을 이용하였다.
이론/모형
과배란처리 과정 중 인공수정을 위해 대조구는 성 감별 과정을 거치지 않은 칡소 동결정액을 이용하였고, 처리구는 성 감별 과정을 거친 칡소 동결정액을 이용하였다. 공시된 한우의 사양관리는 가축유전자원센터 사양표준에 따라 실시하였다. 연구에 사용된 동물관리 및 절차는 국립축산과학원 동물복지위원회(Suwon, Korea)의 승인(승인번호: 2014-078)을 얻었다.
성 분리는 MoFlo XDP Cell Sorter(Beckman Coulter, California, United states) 장비를 이용하였고, 실험에 공시된 정액의 총 정자 수는 스트로우당 400만 마리와 1,000만 마리 농도로 XX성별의 동결정액을 이용하였다. 성 분리 방법은 Tubman 등(2004)의 방법에 준하여 분리 하였다.
대조구의 경우, 보편적으로 사용하는 인공수정용 스트로우인 2,000만 농도의 칡소 동결정액 스트로우를 이용하였으며, 성감별 처리구의 경우, 스트로우 당 400만과 1,000만의 두 실험군으로 인공수정을 실시하였다. 수정란의 회수는 인공수정 후 7일째 되는 날 실시하였으며, 이식가능 수정란은 IETS의 기준에 따라 판정하였다. 대조구에서 체내수정란 회수 결과는 이식 가능 수정란이 두 당 6.
회수를 위한 관류액은 Embryo Collection Medium(Agtech, Manhattan, USA)를 이용하였고, 수정란 회수가 완료되면 PGF2α를 주사하여 자궁 내에 잔류하고 있는 수정란이 수태되지 않도록 황체를 퇴화시켰다. 채란이 완료된 수정란을 실체현미경을 이용하여 회수한 후, 수정란의 평가는 Manual of the International Embryo Transfer Society(Stringfellow와 Seidel, 1998)의 기준에 따라 Code 1(excellent or good)과 Code 2(fair)로 평가된 수정란은 이식가능 수정란, Code 3(poor)과 Code 4(dead or degenerated)로 평가된 수정란은 이식 불가능 수정란으로 구분하였다.
성능/효과
Table 3은 생산된 체내수정란을 일반 한우 수란우에 이식한 결과이다. 대조구는 20개의 수정란을 이식한 결과, 7두가 수태하여 35.00%의 수태율을 나타냈다. 성 감별 정자 처리구의 경우, 총 16개의 수정란 이식 결과, 2두가 수태하여 12.
대조구에서 체내수정란 회수 결과는 이식 가능 수정란이 두 당 6.20±2.28개로 전체 회수 수정란의 67.39%로 나타났으나, 성감별 정자처리구에서는 4×106 농도에서 4.33±5.39개(26.53%), 10×106 농도에서 1.57±1.72개(24.44%)로, 대조구에 비해 유의적으로 낮은 이식가능 수정란 결과를 나타냈다.
Table 2는 회수된 수정란 중 이식가능 수정란의 발달단계에 대한 결과로 성 감별 처리구의 낮은 채란성적의 원인을 검토하고자 조사를 실시하였다. 대조구의 경우, 상실배 단계의 수정란이 전체 회수란의 17.39%, 초기배반포배 단계가 30.43%, 확장배반포배 단계가 19.57%로 초기배반포배 단계의 수정란이 가장 높은 비율을 차지하였다. 처리구의 경우, 스트로우 당 4×106 농도의 처리구에서 상실배 단계가 15.
반면에 10×106 농도의 경우, 미수정란이 14.4%, 발달중지란이 44.6%로 본 연구의 결과인 미수정란 57.78%, 발달중지란 17.78%와는 상반된 결과를 나타내었다.
성 염색체(X,X)는 차중부 동원체형(sub-metacentric)이었다. 분석결과, 여(1984, 1987), 오 등(1991), 홍 등(1991), 손과 이(1998)이 발표한 한우 염색체 분석결과와 다르지 않은 염색체 분포 양상을 나타내었으며, 29개의 상동염색체와 XX 성 염색체를 가진 정상 암송아지임을 확인하였다.
44%로 가장 높은 비율을 나타냈다. 생산된 체내수정란을 한우 수란우에 이식한 결과, 대조구의 경우 35.00%, 처리구의 경우 12.50%의 수태율을 나타내었다. 성감별 정자 유래 암송아지의 염색체 핵형분석 결과, 2n=60으로 일반 한우와 다르지 않은 염색체 분포 양상을 나타내었으며, 29개의 상동염색체와 XX 성 염색체를 가진 정상 암컷 개체임을 확인하였다.
94%에 불과했다. 성 감별 정자를 체내수정란 생산에 이용한 경우, 일반 동결정액을 이용한 경우에 비해 상실배 단계의 수정란이 배반포배나 확장배반포배 단계의 수정란보다 높은 비율로 관찰되는 것으로 보아, 정자의 성 감별 과정에서 받는 손상으로 인해 수정의 시기가 달라지는 것으로 사료된다. 본 실험에서는 인공수정 후 8일째 되는 날에 수정란 회수를 실시하였지만, 추가적인 연구를 실시하여 최적의 수정란 회수 시기를 확립하여야 할 것으로 사료된다.
50%의 수태율을 나타내었다. 성감별 정자 유래 암송아지의 염색체 핵형분석 결과, 2n=60으로 일반 한우와 다르지 않은 염색체 분포 양상을 나타내었으며, 29개의 상동염색체와 XX 성 염색체를 가진 정상 암컷 개체임을 확인하였다.
05). 이식가능 수정란의 발달 단계에 대한 조사 결과, 대조구의 경우 초기배반포배 단계의 수정란이 30.43%로 가장 높은 비율을 차지했으며, 그 다음이 확장배반포배(19.57%), 상실배(17.39%) 단계였다. 반면에 처리구의 경우, 두 처리구 모두 상실배 단계의 수정란이 15.
후속연구
성 감별 정자를 체내수정란 생산에 이용한 경우, 일반 동결정액을 이용한 경우에 비해 상실배 단계의 수정란이 배반포배나 확장배반포배 단계의 수정란보다 높은 비율로 관찰되는 것으로 보아, 정자의 성 감별 과정에서 받는 손상으로 인해 수정의 시기가 달라지는 것으로 사료된다. 본 실험에서는 인공수정 후 8일째 되는 날에 수정란 회수를 실시하였지만, 추가적인 연구를 실시하여 최적의 수정란 회수 시기를 확립하여야 할 것으로 사료된다.
최근 축산 분야에서 농업생물 다양성에 대한 관심이 높아 지고 있다. 앞으로의 축산 발전을 위해서는 품종의 유전자원으로써의 가치를 증진시키고, 멸종위기에 처한 품종을 보존, 증식시키는 많은 연구가 필요하다. 국내의 가축 품종 중 유엔식량농업기구(FAO: Food and Agriculture of United Nations)에 등재되어 있는 멸종위기의 희소한우(칡소, 흑우, 제주흑우, 백우)는 개체 수가 적어 증식에 어려움을 겪고 있다(축산기술연구소, 2003).
질의응답
핵심어
질문
논문에서 추출한 답변
유엔식량농업기구에 등재되어 있는 멸종위기의 희소한우는 무엇이 있는가?
앞으로의 축산 발전을 위해서는 품종의 유전자원으로써의 가치를 증진시키고, 멸종위기에 처한 품종을 보존, 증식시키는 많은 연구가 필요하다. 국내의 가축 품종 중 유엔식량농업기구(FAO: Food and Agriculture of United Nations)에 등재되어 있는 멸종위기의 희소한우(칡소, 흑우, 제주흑우, 백우)는 개체 수가 적어 증식에 어려움을 겪고 있다(축산기술연구소, 2003). 이러한 희소 가축의 품종과 품종 내 개체간의 유전적 다양성을 보존하는 것은 구제역 및 고병원성 조류인플루엔자와 같은 악성질병의 발생이나 기후변화와 같은 예측할 수 없는 미래 축산의 변화에 대비하는데 그 목적이 있다(농촌진흥청, 2014).
본 논문에서 정자의 성 감별에 사용한 성 분리 장비는 무엇인가?
정자의 성 감별은 가축유전자원센터에 보유 중인 칡소 1두의 원정액을 채취하여 제조하였다. 성 분리는 MoFlo XDP Cell Sorter(Beckman Coulter, California, United states) 장비를 이용하였고, 실험에 공시된 정액의 총 정자 수는 스트로우당 400만 마리와 1,000만 마리 농도로 XX성별의 동결정액을 이용하였다. 성 분리 방법은 Tubman 등(2004)의 방법에 준하여 분리 하였다.
희소한우와 같은 희소 가축의 품종을 보존하는 것은 어떤 목적을 갖는가?
국내의 가축 품종 중 유엔식량농업기구(FAO: Food and Agriculture of United Nations)에 등재되어 있는 멸종위기의 희소한우(칡소, 흑우, 제주흑우, 백우)는 개체 수가 적어 증식에 어려움을 겪고 있다(축산기술연구소, 2003). 이러한 희소 가축의 품종과 품종 내 개체간의 유전적 다양성을 보존하는 것은 구제역 및 고병원성 조류인플루엔자와 같은 악성질병의 발생이나 기후변화와 같은 예측할 수 없는 미래 축산의 변화에 대비하는데 그 목적이 있다(농촌진흥청, 2014). 소의 경우, 인공수정(AI: Artificail Insemination) 기술의 확립으로 적은 수의 수소만으로도 집단의 증식이 가능하지만, 암소는 더 많은 개체의 확보가 필요한 상황이다.
참고문헌 (22)
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