$\require{mediawiki-texvc}$

연합인증

연합인증 가입 기관의 연구자들은 소속기관의 인증정보(ID와 암호)를 이용해 다른 대학, 연구기관, 서비스 공급자의 다양한 온라인 자원과 연구 데이터를 이용할 수 있습니다.

이는 여행자가 자국에서 발행 받은 여권으로 세계 각국을 자유롭게 여행할 수 있는 것과 같습니다.

연합인증으로 이용이 가능한 서비스는 NTIS, DataON, Edison, Kafe, Webinar 등이 있습니다.

한번의 인증절차만으로 연합인증 가입 서비스에 추가 로그인 없이 이용이 가능합니다.

다만, 연합인증을 위해서는 최초 1회만 인증 절차가 필요합니다. (회원이 아닐 경우 회원 가입이 필요합니다.)

연합인증 절차는 다음과 같습니다.

최초이용시에는
ScienceON에 로그인 → 연합인증 서비스 접속 → 로그인 (본인 확인 또는 회원가입) → 서비스 이용

그 이후에는
ScienceON 로그인 → 연합인증 서비스 접속 → 서비스 이용

연합인증을 활용하시면 KISTI가 제공하는 다양한 서비스를 편리하게 이용하실 수 있습니다.

[국내논문] 갯봄맞이(Glaux maritima L.)의 캘루스 배양을 통한 식물체 재분화
Plant regeneration via callus culture of sea-milkwort (Glaux maritima L.) 원문보기

Journal of plant biotechnology = 식물생명공학회지, v.44 no.2, 2017년, pp.171 - 177  

한증술 (경북대학교 농업생명과학대학 원예과학과)

초록
AI-Helper 아이콘AI-Helper

우리나라에서 멸종위기 해안식물로 지정된 갯봄맞이의 캘루스배양을 통한 재분화 프로토콜을 보고한다. 마디배양을 통해 육성한 기내 유식물체의 절편은 유전자형, 절편의 종류, 광조건 및 2,4-D 첨가농도에 따라 캘루스 형성에 상이한 반응을 보였다. 특히, 다른 처리와는 무관하게 연속 암배양이 절편으로부터 캘루스 유도에 결정적인 영향을 미쳤다. 2,4-D 0.1-3.0mg/L 농도 범위의 배지에서 유도된 캘루스를 동일한 조성의 배지로 이식하여 암배양했을 때왕성하게 캘루스가 증식하였다. 연속 암조건에서 zeatin 1.0mg/L 첨가배지에 'Pistachio' 유전자형의 캘루스를 배양했을 때만 유일하게 정상적인 신초가 재분화 되었고, 이 때 신초는 캘루스로부터 형성된 마디구조에서 발달하였으며 신초의 재분화율은 24.4%였다. 재분화 신초를 식물호르몬 무첨가 배지로 이식하여 명배양 했을 때 지상부 녹화와 더불어 뿌리가 발생하여 유식물체로 발달하였다. 기내 유식물체를 기 보고된 마디배양 프로토콜(Bae et al. 2016)에 따라 배양했을 때 효과적으로 유식물체를 증식시킬 수 있었다. 기외 순화시킨 유식물체는 내륙 자연 환경하에서 성숙식물체로 생육하였으며 이듬 해 4월에 개화하였다. 본 연구의 결과는 Bae et al. (2016)이 제안한 마디배양 프로토콜과 통합하여 운용될 수 있고, 통합된 프로토콜은 갯봄맞이의 기내 번식 시스템으로서 갯봄맞이 자생지 복원에 기여할 수 있을 것이다.

Abstract AI-Helper 아이콘AI-Helper

A callus-mediated regeneration protocol for sea-milkwort, an endangered coastal plant species in South Korea, is reported here. The explants of in vitro-plantlets generated from a node culture revealed distinguishable responses in callus induction depending on genotype, explant source, light conditi...

주제어

AI 본문요약
AI-Helper 아이콘 AI-Helper

* AI 자동 식별 결과로 적합하지 않은 문장이 있을 수 있으니, 이용에 유의하시기 바랍니다.

문제 정의

  • 본 연구의 목적은 이전 Bae et al. (2016)의 연구에서 절편으로 활용한 마디와 더불어 버려졌던 뿌리와 잎 절편으로부터 캘루스를 유도・증식 한 후 이로부터 식물체를 재분화 시키는 일련의 배양조건을 구명하는데 있다. 본 연구를 통해 얻을 수 있는 캘루스로부터 재분화된 유식물체는 기내증식(Bae et al.
  • 우리나라에서 멸종위기 해안식물로 지정된 갯봄맞이의 캘루스배양을 통한 재분화 프로토콜을 보고한다. 마디배양을 통해 육성한 기내 유식물체의 절편은 유전자형, 절편의 종류, 광조건 및 2,4-D 첨가농도에 따라 캘루스 형성에 상이한반응을 보였다.
본문요약 정보가 도움이 되었나요?

질의응답

핵심어 질문 논문에서 추출한 답변
멸종 위기 식물종 복원을 위한 기내배양 기술 활용 시, 필연적으로 필요한 것은? 2010). 멸종위기 식물종의 복원을 위한 증식에 기내배양 기술을 활용할 경우에는 필연적으로 재료 식물체가 필요하며, 진정한 의미의 복원을 위해서는 복원용으로 증식된 집단이 기존 자생지(hot spot) 개체군이 가지고 있는 대립유전자를 최대한 포함하여야 한다. 이것은 재료수집과정에서 야기될 수 있는 자생지 파괴 또는 교란을 회피 하면서도 가능한 한 다양한 유전자형으로부터 기내배양용 재료 식물체를 획득할 필요가 있다는 것을 의미한다.
멸종위기 식물종의 복원을 위한 기내배양 기술 활용 시, 복원용으로 증식된 집단이 기존 자생지 개채군이 가지는 대립유전자를 최대한 포함해야 하는 조건이 시사하는 바는 무엇인가? 멸종위기 식물종의 복원을 위한 증식에 기내배양 기술을 활용할 경우에는 필연적으로 재료 식물체가 필요하며, 진정한 의미의 복원을 위해서는 복원용으로 증식된 집단이 기존 자생지(hot spot) 개체군이 가지고 있는 대립유전자를 최대한 포함하여야 한다. 이것은 재료수집과정에서 야기될 수 있는 자생지 파괴 또는 교란을 회피 하면서도 가능한 한 다양한 유전자형으로부터 기내배양용 재료 식물체를 획득할 필요가 있다는 것을 의미한다.
갯봄맞이란 무엇인가? APG III 분류체계에서 자금우아과(Myrsinoideae)에 속한 갯봄맞이는 유사일년생(pseudo-annual) 초본으로 염습지에 분포하는 것으로 알려져 있는데, 우리나라 남한에서는 현재 울산과 포항 해안가 일부 지역에서만 극히 소규모 개체군이 자생한다(APG III 2009; IUCN 2015; Jerling 1988a; Jerling1988b; NIBR 2012; Son et al. 2011).
질의응답 정보가 도움이 되었나요?

참고문헌 (23)

  1. APG III (2009) An update of the Angiosperm Phylogeny Group classification for the orders and families of flowering plants: APG III. Bot J Linn Soc 161:105-121 

  2. Bae SJ, Kang BC, Jeon MH, Kim SC, Kim CK, Han JS (2016) In vitro multiplication through single-node culture of sea-milkwort (Glaux maritima L.) Korean J Hortic Sci Technol 34:461-471 

  3. Bunn E, Turner SR, Dixon KW (2011) Biotechnology for saving rare and threatened flora in a biodiversity hotspot. In Vitro Cell Dev Biol-Plant 47:188-200 

  4. Compton ME (1999) Dark pretreatment improves adventitious shoot organogenesis from cotyledons of diploid watermelon. Plant Tissue Organ Cult 58:185-188 

  5. Curuk S, Ananthakrishnan G, Singer S, Xia X, Elman C, Nestel D, Cetiner S, Gaba V (2003) Regeneration in vitro from the hypocotyls of Cucumis species produces almost exclusively diploid shoots, and does not require light. HortScience 38:105-109 

  6. De Souza TV, Thiesen JF, Lando AP, Guerra MP, Santos M (2017) Morpho-histodifferentiation of Billbergia nodular cultures. Protoplasma 254:435-443 

  7. Farhadi N, Panahandeh J, Azar AM, Salte SA (2017) Effects of explant type, growth regulators and light intensity on callus induction and plant regeneration in four ecotypes of Persian shallot (Allium hirtifolium). Sci Hort 218:80-86 

  8. Han JS, Oh DG, Mok IG, Park HG, Kim CK (2004) Efficient plant regeneration from cotyledon explants of bottle gourd (Lagenaria siceraria Standl.). Plant Cell Rep 23:291-296 

  9. Ikeuch M, Sugimoto K, Iwase A (2013) Plant callus: Mechanisms of induction and Repression. Plant Cell 25:3159-3173 

  10. IUCN (2015) Threatened species in past and present IUCN Red Lists: 2015, The IUCN Red List of Threatened Species TM 2-2015: Summary statistics. Available via http://www.iucnredlist.org/about/summary-statistics#Tables_1_2 Accessed 9 September 2015 

  11. Jerling L (1988a) Clone dynamics, population dynamics and vegetation pattern of Glaux maritima on a Baltic sea shore meadow. Vegetatio 74:171-185 

  12. Jerling L (1988b) Population dynamics of Glaux maritima L. along a distributional cline. Vegetatio 74:161-170 

  13. Leshem B, Ronen R, Soudry E, Lurie S, Gepstein S (1995) Cytokinin and white light coact to enhance polypeptide metabolism and shoot regeneration in cultured melon cotyledons. J Plant Physiol 145:291-295 

  14. Murashige T, Skoog F (1962) A revised method for rapid growth and bioassays with tobacco tissue cultures. Physiol Plant 15:472-497 

  15. NIBR (National Institute of Biological Resources) (2012) Korean Red List of Threatened Species-Vascular plants. Nature and Ecology, Incheon, Republic of Korea 

  16. Pence VC (2011) Evaluation costs for the in vitro propagation and preservation of endangered plants. In Vitro Cell Dev Biol-Plant 47:176-187 

  17. Pence VC (2013) In vitro methods and the challenge of exceptional species for target 8 of the global strategy for plant conservation. Ann Miss Bot Gard 99:214-220 

  18. Raghavan V (2004) Role of 2,4-dichlorophenoxyacetic acid (2,4-D) in somatic embryogenesis on cultured zygotic embryos of Arabidopsis: cell expansion, cell cycling, and morphogenesis during continuous exposure of embryos to 2,4-D. American J Bot 91:1743-1756 

  19. Sahai A, Shahzad A, Sharma S (2010) Histology of organogenesis and somatic embryogenesis in excised root cultures of an endangered species Tylophora indica (Asclepiadaceae). Austrian J Bot 58:198-205 

  20. Scalzo J, Donno D, Miller S, Ghezzi M, Mellano MG, Cerutti AK, Beccaro GL (2016) Effect of genotype, medium and light on in vitro plant proliferation of Vaccinium spp. New Zealand J Crop Hortic Sci 44:231-246 

  21. Son SW, Lee BC, Yang HH, Seol YJ (2011) Distribution of five rare plants in Korea. Korean J Pl Taxon 41:280-286 

  22. Tomes DT, Smith OS (1985) The effect of parental genotype on initiation of embryogenic callus from elite maize (Zea mays L.) germplasm. Theor Appl Gen 70:505-509 

  23. Yokoyama T, Moriyasu Y, Sugawara Y (2011) Adventitious bud formation through nodule induction by thidiazuron in cultured leaf segments of the Japanese persimmon (Diospyros kaki Thunb.). Plant Biotech 28:339-344 

저자의 다른 논문 :

섹션별 컨텐츠 바로가기

AI-Helper ※ AI-Helper는 오픈소스 모델을 사용합니다.

AI-Helper 아이콘
AI-Helper
안녕하세요, AI-Helper입니다. 좌측 "선택된 텍스트"에서 텍스트를 선택하여 요약, 번역, 용어설명을 실행하세요.
※ AI-Helper는 부적절한 답변을 할 수 있습니다.

선택된 텍스트

맨위로