[논문]한천분해 미생물 Vibrio sp. GNUM08123의 동정 및 agarase 생산의 발효적 특성

지원재; 김윤희; 김종희; 홍순광

doi:10.4014/mbl.1707.07003

한천분해 미생물 Vibrio sp. GNUM08123의 동정 및 agarase 생산의 발효적 특성
Identification and Characterization of Agar-degrading Vibrio sp. GNUM08123 Isolated from Marine Red Macroalgae 원문보기

Microbiology and biotechnology letters = 한국미생물·생명공학회지, v.45 no.3, 2017년, pp.243 - 249

지원재 (국립생물자원관 유용자원분석과) , 김윤희 (명지대학교 생명과학정보학부) , 김종희 (서일대학교 식품영양과) , 홍순광 (명지대학교 생명과학정보학부)

Abstract ▼ AI-Helper

An agar-degrading bacterium, designated as the GNUM08123 strain, was isolated from samples of red algae collected from the Yongil Bay near East Sea, Korea. The isolated GNUM08123 strain was gram-negative, aerobic, motile, and beige-pigmented, with $C_{16:0}$ (25.9%) and summed feature 3 (comprising $C_{16:1}{\omega}7c/iso-C_{15:0}2-OH$, 34.4%) as its major cellular fatty acids. A similarity search based on the 16S rRNA gene sequence revealed that it belonged to class Gammaproteobacteria and shared 97.7% similarity with the type strain Vibrio chagasii $R-3712^T$. The DNA G+C content of strain $GNUM08123^T$ was 46.9 mol%. The major isoprenoid quinone was ubiquinone-8. The results of DNA-DNA relatedness and 16S rRNA sequence similarity analyses, in addition to its phenotypic and chemotaxonomic characteristics, suggest that strain GNUM08123 is a novel species within genus Vibrio, designated as Vibrio sp. GNUM08123. Agarase production by strain GNUM08123 was induced by agar and sucrose, but was repressed probably owing to carbon catabolite repression by glucose and maltose.

주제어

AI 본문요약
AI-Helper

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문제 정의

한천 바이오매스의 산업적 이용을 위해서는 한천을 효율적으로 분해하여 저분자화 할 수 있는 기술이 필수적이며, 이를 위해서는 탁월한 한천분해 능력을 갖고 있는 미생물의 탐색이 중요하다. 본 논문에서는, 아가레이즈(agarase) 활성을 갖고 한천을 유일 탄소원으로 이용하여 생장이 가능한 Vibrio 속에 속하는 신균주(GNUM08123)의 동정 및 이 균주가 생산하는 아가레이즈 생산 특성에 관하여 기술하였다.

제안 방법

30 μl의 각 항생제를 포함한 항생제 감수성 시험용 종이디스크를 도말 한 플레이트에 올려 놓고, 28℃에서 24시간 배양한 후 종이디스크 주위에 생기는 투명한 환을 관찰하여 항생제에 대한 생장저해 감수성 여부를 판정하였다.
GNUM08123 균주로부터 균체 생장 및 아가레이즈 생산성을 증대시키기 위해, ASW-YP 배지의 탄소원을 조정하는 시험을 실시하였다. ASW-YP 본래 조성에 5종류의 탄소원(아가, 설탕, 포도당, 맥아당)을 최종 0.1%가 되도록 각각 첨가하여, 상기와 동일한 방법으로 균주 생장 및 아가레이즈 생산을 측정, 비교하였다.
그램 염색은 gram stain kit (BD Diagnostics, USA)를 사용하여 제조자의 사용 지침에 따라 실시하였다. Flagella는 세포를 1% (w/v) phosphotungstic acid로 염색(negative staining)한 후 투과전자현미경(JEM1010, JEOL, Japan)으로 분석하였다.
GNUM08123 균주 생장에 미치는 배양온도의 영향은 배양온도 4℃, 15℃, 25℃, 37℃, 40℃, 45℃에서 분석하였고, 배지 pH의 영향은 pH 4에서 pH 11까지 pH 1의 간격으로 분석하였으며, NaCl 요구도는 0−20% NaCl (w/v) 범위에서 조사하였다.
또한 샘플을 16,000×g에서 10분간 원심분리하여 얻은 상등액을 이용하여 DNS 방법으로 아가레이즈 활성을 측정하였다. GNUM08123 균주로부터 균체 생장 및 아가레이즈 생산성을 증대시키기 위해, ASW-YP 배지의 탄소원을 조정하는 시험을 실시하였다. ASW-YP 본래 조성에 5종류의 탄소원(아가, 설탕, 포도당, 맥아당)을 최종 0.
GNUM08123 균주의 탄소 이용, 효소 생산능력 등의 생리 화학적 분석은 API 20NE, 50CH, API ZYM strip(bioMérieux, France)을 사용하여 분석하였으며, 제조자의 실험지침에 따라 분석을 수행하였다.
균주의 생리적 특성 분석에는 ASW-YP 액체배지를 사용하였다. GNUM08123 균주 생장에 미치는 배양온도의 영향은 배양온도 4℃, 15℃, 25℃, 37℃, 40℃, 45℃에서 분석하였고, 배지 pH의 영향은 pH 4에서 pH 11까지 pH 1의 간격으로 분석하였으며, NaCl 요구도는 0−20% NaCl (w/v) 범위에서 조사하였다.
도말한 평판고체배지는 28℃에서 1일간 배양한 후, Lugol's Iodine 용액(0.05 M Iodine in 0.12 M KI)으로 염색하여 colony 주변에 아가분해활성을 나타내 투명하게 보이는 colony 만을 선별하였다.
또한 샘플을 16,000×g에서 10분간 원심분리하여 얻은 상등액을 이용하여 DNS 방법으로 아가레이즈 활성을 측정하였다.
5 g, Glycerol 45 ml를 녹여 최종 1 L 제조)을 넣고 100℃에서 5분간 가열하였고, 상온에서 충분히 식힌 후 분광광도계(Genesys 8, Spectronic Unicam Inc, France)로 아가레이즈에 의해 방출된 환원당의 양을 540 nm에서 측정하였다. 배양액 자체도 540 nm에서 흡광도(OD; optical density)를 나타냄으로, 반응 후 흡광도(OD540)에서 열처리로 불활성화 한 효소 반응액의 흡광도(OD540)를 뺀 값을 순수한 효소활성도로 계산하였다.
상등액 만을 취하여 멸균수에 10-1−10-5으로 희석한 후, 200 μl를 ASW-YP 평판고체배지(6.1 g Tris base, 12.3 g MgSO4, 0.74 g KCl, 0.13 g (NH4)2HPO4, 17.5 g NaCl, 0.14 g CaCl2, 1% yeast extract, 0.3% bacto peptone; per liter; pH 7.2)에 도말 하였다.
형태적 분석을 위해 GNUM08123 균주를 ASW-YP 평판고체배지에 도말하고 37℃에서 24시간 배양하였다. 세포 형태, 크기 및 운동성은 위상차 현미경(BX51 microscope, Olympus, USA)으로 관찰하였다. 그램 염색은 gram stain kit (BD Diagnostics, USA)를 사용하여 제조자의 사용 지침에 따라 실시하였다.
모든 실험은 특별한 언급이 없는 한 4℃에서 실시하였다. 아가레이즈 활성은 dinitrosalicylic acid (DNS) 방법을 사용하여[21], 아가레이즈 활성에 의해 증가하는 환원당의 양을 측정하였다. 효소액 샘플 100 μl를 0.
유전체 DNA를 주형 DNA로 사용하여 16S rRNA 유전자를 PCR 방법으로 증폭하였으며, 프라이머는 bacterial universal primers (27F; 5′-AGAGTTTGATCCTGGCTCAG-3′, 1492R; 5′-TACCTTGTTACGACTT-3′)를 사용하였다[11].
GNUM08123 균주를 ASW-YP 액체배지에 접종하여 28℃에서 48시간 진탕배양하였다. 이로부터 회수한 균체로부터 유전체 DNA를 Genomic DNA extraction kit (Promega Co., USA)를 사용하여 추출하였다. 유전체 DNA를 주형 DNA로 사용하여 16S rRNA 유전자를 PCR 방법으로 증폭하였으며, 프라이머는 bacterial universal primers (27F; 5′-AGAGTTTGATCCTGGCTCAG-3′, 1492R; 5′-TACCTTGTTACGACTT-3′)를 사용하였다[11].
chagasii R-3712^T와 다르게 나타났다. 이에 두 균주 사이의 유전학적 분석을 수행하였다.
GNUM08123의 발효 및 아가레이즈 생산 연구는 기본적으로 ASW-YP 액체 배지에 균주를 접종하여 28℃에서 72시간 동안 진탕 배양하여 수행하였다. 일정한 시간 간격으로 배양액 1 ml씩을 채취하여 600 nm에서의 흡광도(OD₆₀₀)를 측정하여 균체의 생장곡선을 작성하였다. 또한 샘플을 16,000×g에서 10분간 원심분리하여 얻은 상등액을 이용하여 DNS 방법으로 아가레이즈 활성을 측정하였다.
GNUM08123 균주를 ASW-YP 평판고체배지에 도말 한 후 28℃에서 48시간 배양하여 사용하였다. 주요 respiratory quinones은 역상 High Perfomance Liquid Chromatograpgy(HPLC)를 사용하여 분석하였다[17]. 균체의 지방산은 에틸 에스터화[18]시킨 fatty acid methyl esters (FAME) 혼합물을 Microbial Identification system (MIDI)의 지침에 따라 가스크로마토그래피(GC) 분석법으로 분석하였다[19].
유전체 DNA를 주형 DNA로 사용하여 16S rRNA 유전자를 PCR 방법으로 증폭하였으며, 프라이머는 bacterial universal primers (27F; 5′-AGAGTTTGATCCTGGCTCAG-3′, 1492R; 5′-TACCTTGTTACGACTT-3′)를 사용하였다[11]. 증폭한 DNA 단편을 pGEM-T easy 벡터(Promega Co.)에 클로닝하고, Applied Biosystems 3730xl DNA Analyzer (Thermo Fisher Scientific Inc., USA)로 염기서열을 분석하였다. 계통수(phylogenetic tree) 제작을 위해 필요한 GNUM08123과 유사한 type 균주들의 16S rRNA 유전자 정보는 EzTaxon server (http://www.
형태적 분석을 위해 GNUM08123 균주를 ASW-YP 평판고체배지에 도말하고 37℃에서 24시간 배양하였다. 세포 형태, 크기 및 운동성은 위상차 현미경(BX51 microscope, Olympus, USA)으로 관찰하였다.

대상 데이터

GNUM08123 균주를 ASW-YP 액체배지에 접종하여 28℃에서 48시간 진탕배양하였다. 이로부터 회수한 균체로부터 유전체 DNA를 Genomic DNA extraction kit (Promega Co.
GNUM08123 균주를 ASW-YP 평판고체배지에 도말 한 후 28℃에서 48시간 배양하여 사용하였다. 주요 respiratory quinones은 역상 High Perfomance Liquid Chromatograpgy(HPLC)를 사용하여 분석하였다[17].
GNUM08123 균주의 16S rRNA 유전자 서열에 근거하여 이와 유전학적으로 가장 유사할 것으로 판단되는 V. chagasiiR-3712T 표준 균주를 양성대조군으로 선정하였다. 두 균주를 Marine Agar 2216 (Becton, Dickinson and Company, USA) 평판고체배지에 배양하고, 각 균체로부터 Genomic DNA Extraction Kit (Promega Co.
, USA)로 염기서열을 분석하였다. 계통수(phylogenetic tree) 제작을 위해 필요한 GNUM08123과 유사한 type 균주들의 16S rRNA 유전자 정보는 EzTaxon server (http://www.eztaxon.org)로부터 확보하였다[12]. 확보된 염기서열들 간의 Multiple alignment는 ClustalW program [13]을 사용하였고, 5'-과 3'-말단의 gap은 BioEdit program [14]으로 편집하였다.
GNUM08123 균주의 탄소 이용, 효소 생산능력 등의 생리 화학적 분석은 API 20NE, 50CH, API ZYM strip(bioMérieux, France)을 사용하여 분석하였으며, 제조자의 실험지침에 따라 분석을 수행하였다. 단 미생물 현탁액은 2% NaCl (w/v) 용액을 사용하여 제조하였다.
chagasiiR-3712T 표준 균주를 양성대조군으로 선정하였다. 두 균주를 Marine Agar 2216 (Becton, Dickinson and Company, USA) 평판고체배지에 배양하고, 각 균체로부터 Genomic DNA Extraction Kit (Promega Co.)를 이용하여 유전체 DNA를 준비하였다. 음성 대조군은 Staphylococcus aureus KCCM41331를 사용하였으며, Nutrient Agar (NA) 평판고체 배지에 배양하여 동일한 방법으로 유전체 DNA를 준비하였다.
이 중 최종적으로 활성이 우수한 균주 GNUM08123을 선택하여 본 연구에 사용하였다. 비교에 사용한 대조 균주 Vibrio chagasii R-3712^T와 Vibrio fortis LMG21557^T는 The Leibniz Institute DSMZ (German)에서 구입하였다.
)를 이용하여 유전체 DNA를 준비하였다. 음성 대조군은 Staphylococcus aureus KCCM41331를 사용하였으며, Nutrient Agar (NA) 평판고체 배지에 배양하여 동일한 방법으로 유전체 DNA를 준비하였다. Probe DNA의 준비 및 hybridization 반응은 DIG High Prime DNA Labeling and Detection Starter Kit II(Roche Applied Science, Germany)를 이용하였고, 실험은 제조사의 지침에 따라 수행하였다.
12 M KI)으로 염색하여 colony 주변에 아가분해활성을 나타내 투명하게 보이는 colony 만을 선별하였다. 이 중 최종적으로 활성이 우수한 균주 GNUM08123을 선택하여 본 연구에 사용하였다. 비교에 사용한 대조 균주 Vibrio chagasii R-3712^T와 Vibrio fortis LMG21557^T는 The Leibniz Institute DSMZ (German)에서 구입하였다.
홍조류 Callophyllis crispate 표본을 대한민국 동해 영일만 근처에서 채취하였다. 채취한 샘플은 원심분리용 튜브(50 ml)에 넣어 멸균수로 씻은 후, 멸균 한 2.

데이터처리

염기서열 사이의 진화적 거리(evolutionary distance matrix)는 Kimura’s two-parameter evolutionary model [15]에 의해 계산하였고, 계통수는 MEGA6 프로그램[16]의 Neighbor-joining (NJ) 알고리즘을 이용하여 제작 하였다. 신뢰도(bootstrap value)는 1,000회의 재구성된 자료로부터 계산하였다.
Probe DNA의 준비 및 hybridization 반응은 DIG High Prime DNA Labeling and Detection Starter Kit II(Roche Applied Science, Germany)를 이용하였고, 실험은 제조사의 지침에 따라 수행하였다. 실험 결과 얻은 hybridization 시그널은 Quantity One 프로그램 (Bio-rad, USA)을 사용하여 정량 하였고, GNUM08123 균주 사이의 hybridization 시그널을 100%로 간주하여 계산하였다.
확보된 염기서열들 간의 Multiple alignment는 ClustalW program [13]을 사용하였고, 5'-과 3'-말단의 gap은 BioEdit program [14]으로 편집하였다.

이론/모형

) was measured at 600 nm to plot the growth curve. Agarase activity was measured using the colorimetric method (OD₅₄₀) employing 3, 5-dinitrosalicylic acid (DNS) solution. All data shown are mean values from at least three replicate experiments.
GNUM08123의 항생제에 대한 감수성 시험은 GNUM08123 균주를 도말한 ASW-YP 평판고체배지위에서 paper discs assay 방법으로 수행하였다. 이때 사용한 항생제는 thiostrepton(50 μg/ml), kanamycin (50 μg/ml), neomycin (30 μg/ml), ampicillin (50 μg/ml), apramycin (50 μg/ml), nalidixic acid(25 μg/ml), chloramphenicol (25 μg/ml) 등이다.
음성 대조군은 Staphylococcus aureus KCCM41331를 사용하였으며, Nutrient Agar (NA) 평판고체 배지에 배양하여 동일한 방법으로 유전체 DNA를 준비하였다. Probe DNA의 준비 및 hybridization 반응은 DIG High Prime DNA Labeling and Detection Starter Kit II(Roche Applied Science, Germany)를 이용하였고, 실험은 제조사의 지침에 따라 수행하였다. 실험 결과 얻은 hybridization 시그널은 Quantity One 프로그램 (Bio-rad, USA)을 사용하여 정량 하였고, GNUM08123 균주 사이의 hybridization 시그널을 100%로 간주하여 계산하였다.
주요 respiratory quinones은 역상 High Perfomance Liquid Chromatograpgy(HPLC)를 사용하여 분석하였다[17]. 균체의 지방산은 에틸 에스터화[18]시킨 fatty acid methyl esters (FAME) 혼합물을 Microbial Identification system (MIDI)의 지침에 따라 가스크로마토그래피(GC) 분석법으로 분석하였다[19]. 유전체 DNA의 G+C 농도는 역상-HPLC를 이용하였다[20].
세포 형태, 크기 및 운동성은 위상차 현미경(BX51 microscope, Olympus, USA)으로 관찰하였다. 그램 염색은 gram stain kit (BD Diagnostics, USA)를 사용하여 제조자의 사용 지침에 따라 실시하였다. Flagella는 세포를 1% (w/v) phosphotungstic acid로 염색(negative staining)한 후 투과전자현미경(JEM1010, JEOL, Japan)으로 분석하였다.
염기서열 사이의 진화적 거리(evolutionary distance matrix)는 Kimura’s two-parameter evolutionary model [15]에 의해 계산하였고, 계통수는 MEGA6 프로그램[16]의 Neighbor-joining (NJ) 알고리즘을 이용하여 제작 하였다.
균체의 지방산은 에틸 에스터화[18]시킨 fatty acid methyl esters (FAME) 혼합물을 Microbial Identification system (MIDI)의 지침에 따라 가스크로마토그래피(GC) 분석법으로 분석하였다[19]. 유전체 DNA의 G+C 농도는 역상-HPLC를 이용하였다[20].

성능/효과

3%)와 가장 높은 유사성을 보였다. 16S rRNA 유전자 서열에 기초하여 작성한 NJ 계통수 해석 결과, GNUM08123은 유전적으로 가장 가까운 V. chagasii R-3712^T를 비롯한 다른 종과 구분되는 라인을 형성하였다(Fig. 2). 이러한 결과는 GNUM08123가 Vibrio 속에서 보고되었던 표준 균주와는 다른 새로운 종일 것임을 시사하였다.
GNUM-3의 유전체 G+C 함량은 46.9 mol%로 일반적으로 보고되는 Vibrio속의 G+C 함량 범위(38–51 mol%)에 속하며, 계통발생적 유연관계가 가장 높은 V. chagasii R-3712T [22] 보다는 2.3%, V. fortis LMG21557T[23] 보다는 1.3%가 높았다.
3A). GNUM08123 균주가 세포외부로 생산하는 아가레이즈는 한천만 제공된 배지에서 가장 높은 활성(대조군의 1.4배)이 관찰되었는데, 균주 생장곡선의 대수증식기에 진입하는 시기에 생산되어 정체기까지 안정적으로 생산되었다(Fig. 4B).
GNUM08123 균주와 V. chagasii R-3712^T 균주사이의 DNA hybridization을 통한 DNA 연관성은 58.6%였다. 일반적으로 두 균주 사이의 DNA hybridization을 통한 DNA 연관성이 70% 이하 또는 16S rRNA 유전자 서열 유사성이 97% 이하이면 두 개체는 서로 다른 종(species)으로 인정한다[24,25].
GNUM08123 균주의 16S rRNA 유전자 서열은 V. chagasii R-3712^T (97.7%), V. fortis LMG21557^T (96.6%), Vibrio jasicida TCFB 0772^T (96.6%), Vibrio sagamiensis LC2-047T (96.6%), Vibrio hyugaensis 090810a^T (96.6%), Vibrio diabolicus HE800T (96.5%), Vibrio splendidus ATCC33125^T(96.3%)와 가장 높은 유사성을 보였다. 16S rRNA 유전자 서열에 기초하여 작성한 NJ 계통수 해석 결과, GNUM08123은 유전적으로 가장 가까운 V.
GNUM08123 균주의 생장은 탄소원으로 포도당 또는 맥아당이 제공되었을 때 대조군(ASW-YP 배지)의 생장에 비해 약 2.6배 생장이 증가되었고, 아가 또는 설탕이 제공되었을 때에는 약 2배의 세포 생장 증가가 관찰되었다(Fig. 3A). GNUM08123 균주가 세포외부로 생산하는 아가레이즈는 한천만 제공된 배지에서 가장 높은 활성(대조군의 1.
일반적으로 알고 있는 한천의 주요 성분은 아가로오스(agarose)로 불리며, 이는 L이 무수갈락토오스인 3,6-anhydro-α-Lgalactopyranose (LA)로 치환된 헤테로폴리머이며, 주로 우뭇가사리, 꼬시래기 등 해조류의 주요성분이다. 결과적으로, 아가로오스는 agarobiose (G-LA) 단위체가 반복되는 구조이며, 포피란은 porphyrobiose (G-L6S) 단위체의 반복 구조이다[3, 4]. 그러나, 한천은 한가지의 단위체만으로 구성된 것이 아니고 agarobiose와 porphybiose의 혼성 구조물이며 그 비율은 홍조류에 따라 매우 다르게 분포하고, 때로는 단위체의 L6S가 sulfoxyl, methoxyl, pyruvate 등의 잔기로 수식되기도 한다[3].
chagasii R-3712T와는 구별되는 새로운 종으로 판단된다. 결론적으로, 16S rRNA 유전자 서열의 유사성과 염색체 DNA의 연관성, 많은 생리화학적 특징에서의 차이점들을 고려할 때, GNUM08123 균주는 계통학적으로 가장 가까운 V. chagasii R-3712^T와는 구별되는 신종으로 결론하였다.
2배 증가하였다. 그러나, 포도당 및 맥아당이 탄소원으로 제공된 배지에서는 대조군에 비해 아가레이즈 활성이 현저히 낮게 관찰되었다. 이는 포도당 및 맥아당이 다른 당에 비해 빨리 대사됨으로써 균주의 빠른 생장을 유도하였지만, 아가레이즈 생산에는 carbon catabolite repression(CCR)을 유도했을 것으로 판단된다.
chagasii R3712^T와 비교했을 때, 생장 온도, melibiose 또는 mannitol 발효 능력 등에서 차이를 보였다(Table 1). 또한, GNUM08123는 indole, esterase (C4), lipase (C14), leucine arylamidase, glucosaminidase, nitrate reductase, urease 등의 대사 및 효소 활성에서도 V. chagasii R-3712^T와 다르게 나타났다. 이에 두 균주 사이의 유전학적 분석을 수행하였다.
0% NaCl (w/v) 범위이다. 또한, 이 균주는 chloramphenicol에는 감수성을 보이지만 kanamycin, neomycin, ampicillin, apramycin,nalidixic acid, thiostrepton에는 저항성을 나타냈다.
S4가 생산하는 내열성 아가레이즈에 대해 보고한 바 있다[28]. 이 균주는 한천을 첨가하지 않은 배양액에서의 아가레이즈 생산은 미약했으나, 0.1% 한천을 첨가한 액체배지에서는 72시간에 세포농도와 아가레이즈 활성이 최대치를 보였으며, 아가레이즈 활성은 한천을 첨가하지 않은 대조군의 25배나 증가하였다. 이러한 사실은 두 Vibrio 균주(GNUM08123과 S4균주)에서의 아가레이즈 유전자 발현이 한천에 의해 공통적으로 유도되며, 유도되는 정도는 균주 마다 차이가 크다는 사실을 시사하고 있다.
2). 이러한 결과는 GNUM08123가 Vibrio 속에서 보고되었던 표준 균주와는 다른 새로운 종일 것임을 시사하였다.

질의응답

핵심어	질문	논문에서 추출한 답변
	Vibrio 속이란?	Vibrio 속은 지표수에 가장 흔하게 존재하는 미생물 중 하나이며 다양한 생태계에서 활동하고 있다. 잘 알려진 바와 같이 Vibrio fischeri 등은 생체발광(bioluminescence)을 하며 해파리나 오징어 등과 유익한 공생관계를 유지하기도 하지만, Vibrio cholerae, Vibrio parahaemolyticus, Vibrio vulnificus 등은 사람을 포함한 숙주에 심각한 질병을 일으키기도 한다.
	한천의 산업적 이용을 가속화하기 위해 필요한 것은 무엇인가?	또한 한천을 분해하여 제조한 한천올리고당은 항산화 효과, 항염증 효과,항암 효과, 항비만 및 항당뇨 효과 등이 있는 것으로 보고되어 한천의 산업적 이용이 가속화 되고 있다[7−10]. 한천 바이오매스의 산업적 이용을 위해서는 한천을 효율적으로 분해하여 저분자화 할 수 있는 기술이 필수적이며, 이를 위해서는 탁월한 한천분해 능력을 갖고 있는 미생물의 탐색이 중요하다. 본 논문에서는, 아가레이즈(agarase) 활성을 갖고 한천을 유일 탄소원으로 이용하여 생장이 가능한 Vibrio 속에 속하는 신균주(GNUM08123)의 동정 및 이 균주가 생산하는 아가레이즈 생산 특성에 관하여 기술하였다.
	Vibrio 속 미생물의 특성은 무엇인가?	잘 알려진 바와 같이 Vibrio fischeri 등은 생체발광(bioluminescence)을 하며 해파리나 오징어 등과 유익한 공생관계를 유지하기도 하지만, Vibrio cholerae, Vibrio parahaemolyticus, Vibrio vulnificus 등은 사람을 포함한 숙주에 심각한 질병을 일으키기도 한다. 또한 Vibrio 속 미생물은 다양한 환경에 적응하여 주위에 존재하는 셀룰로오스, 한천 등과 같은 난분해성 고분자물질을 분해하여 이용할 수 있는 능력을 갖고 있다.

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표제어: PCR

동의어: Packet Collision Rate

용어 설명 출처 목록 (6)

용어 설명: PCR은 세균 특이성이 있는 primer를 이용하여 적은 수의 세균이 있을지라도 쉽게 검출할 수 있는 유용한 방법이며, 이를 이용하여 구강 내 치면세균막이나 타액에서 직접 세균을 검출할 수 있게 되었다[8].

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