$\require{mediawiki-texvc}$

연합인증

연합인증 가입 기관의 연구자들은 소속기관의 인증정보(ID와 암호)를 이용해 다른 대학, 연구기관, 서비스 공급자의 다양한 온라인 자원과 연구 데이터를 이용할 수 있습니다.

이는 여행자가 자국에서 발행 받은 여권으로 세계 각국을 자유롭게 여행할 수 있는 것과 같습니다.

연합인증으로 이용이 가능한 서비스는 NTIS, DataON, Edison, Kafe, Webinar 등이 있습니다.

한번의 인증절차만으로 연합인증 가입 서비스에 추가 로그인 없이 이용이 가능합니다.

다만, 연합인증을 위해서는 최초 1회만 인증 절차가 필요합니다. (회원이 아닐 경우 회원 가입이 필요합니다.)

연합인증 절차는 다음과 같습니다.

최초이용시에는
ScienceON에 로그인 → 연합인증 서비스 접속 → 로그인 (본인 확인 또는 회원가입) → 서비스 이용

그 이후에는
ScienceON 로그인 → 연합인증 서비스 접속 → 서비스 이용

연합인증을 활용하시면 KISTI가 제공하는 다양한 서비스를 편리하게 이용하실 수 있습니다.

[국내논문] 난소 내 황체조직에서 발정주기별 H-Ras, RLIP76, Angiogenic Receptors mRNA와 Protein의 발현
Expression of H-ras, RLIP76 mRNA and Protein, and Angiogenic Receptors in Corpus Luteum Tissues during Estrous Cycles 원문보기

Korean journal of clinical laboratory science : KJCLS = 대한임상검사과학회지, v.50 no.4, 2018년, pp.457 - 461  

김민성 (강원대학교 동물생명과학대학 동물산업융합학과) ,  이상희 (강원대학교 동물자원공동연구소) ,  이승형 (강원대학교 동물생명과학대학 동물산업융합학과)

초록
AI-Helper 아이콘AI-Helper

황체발정주기에 따라 형성과 퇴행이 반복되는 일시적인 내분비기관이다. 본 연구에서는 황체와 종양의 혈관신생과정이 기능적과 구조적 기전이 유사하다는 가정하에 실시하였다. 먼저, 우리는 혈관신생관련 수용체인 VEGFR2와 Tie 2 mRNA와 단백질 발현을 검토하였다. 또한, RLIP76와 H-ras의 발현도 측정하였다. 그 결과, 초기와 중기황체에서 VEGFR2와 Tie 2 mRNA와 단백질의 발현되었으나, 후기황체에서는 발현이 감소하였다. H-ras의 경우, mRMA와 단백질 모두 초기와 중기황체에서 발현되었으나, 후기황체에서는 발현되지 않았다. RLIP76 mRNA은 모든 황체주기에서 발현되었고, 단백질은 초기황체에서 강하게 발현되었다. 이상의 결과를 토대로, RLIP76와 H-ras는 황체의 기능에 관여하고, 황체의 혈관신생과정 메커니즘에 중요한 역할을 할 것이다.

Abstract AI-Helper 아이콘AI-Helper

Corpus luteum (CL) is a transient endocrinal tissue that undergoes repeated formation and regression during the estrous cycle. In this study, we hypothesized that the functional and structural mechanism of angiogenesis is similar between CL and tumor formation. First, we measured mRNA and protein ex...

Keyword

AI 본문요약
AI-Helper 아이콘 AI-Helper

* AI 자동 식별 결과로 적합하지 않은 문장이 있을 수 있으니, 이용에 유의하시기 바랍니다.

문제 정의

  • 본 연구는 황체와 종양의 형성과정에 중요한 역할을 하는 혈관신생의 유사성을 확인하고자, 인간과 유사한 생리구조 현상을 지닌 소 황체조직에서 혈관신생관련 receptor인 VEGFR2, Tie 2와 oncoprotein인 H-ras와 RLIP76의 mRNA와 단백질의 발현을 알아보고자 실시하였다.
  • 또한, 황체에서 혈관신생작용에 관한 연구가 수행되고 있으나 그 기전은 아직까지 명확하게 밝혀지지 않고 있다[19-21]. 본 연구에서는 혈관신생과정에 영향을 미치는 새로운 인자를 밝혀내고, 유사한 혈관신생과정에서의 새로운 모델을 구축하고자 실시하였다. 그 결과를 토대로 혈관신생기전의 새로운 방향을 제시하고, 이를 검증하여 새로운 세포신호기전의 기반을 마련하는데 있다.
  • 본 연구에서는 혈관신생과정에 영향을 미치는 새로운 인자를 밝혀내고, 유사한 혈관신생과정에서의 새로운 모델을 구축하고자 실시하였다. 그 결과를 토대로 혈관신생기전의 새로운 방향을 제시하고, 이를 검증하여 새로운 세포신호기전의 기반을 마련하는데 있다.
본문요약 정보가 도움이 되었나요?

질의응답

핵심어 질문 논문에서 추출한 답변
황체의 퇴행을 조절하는 것은? 뇌하수체에서 분비되는 여포자극호르몬(FSH)와 황체형성호르(LH)에 의해 배란된 난포 내의 과립막 세포와 난포막 세포가 각각 자극을 받아 LSCs의 종류인 큰 황체세포(LLCs)과 작은 황체세포(SLCs)로 분화 되는 것으로 알려져 있다[5]. 황체는 혈관내피성장인자 A (VEGFA), 종양괴사인자-α (TNF-α) 등 여러 인자와 LH, P4 등 호르몬에 의해 형성과 퇴행이 조절된다[6, 7]. 성장인자와 호르몬의 영향으로 세포의 증식이 일어나고, 혈관이 확장되면서 조직이 성장한다.
황체의 역할은? 황체는 배란 후 난소 내 발생되는 내분비 기관으로 발정주기에 따라 형성과 퇴행을 반복한다. 주된 역할은 임신의 유지와 확립에 필요한 프로게스테론 (P4)을 합성하는 것이다[1, 2]. P4를 합성하는 황체 스테로이드제닉 세포(LSCs)과 혈관을 구성하는 황체혈관세포(LECs)를 중심으로 섬유아세포와 평활근세포, 면역세포 등으로 구성되어 있다[3, 4].
황체란 무엇인가? 황체는 발정주기에 따라 형성과 퇴행이 반복되는 일시적인 내분비기관이다. 본 연구에서는 황체와 종양의 혈관신생과정이 기능적과 구조적 기전이 유사하다는 가정하에 실시하였다.
질의응답 정보가 도움이 되었나요?

참고문헌 (28)

  1. Chouhan V, Dangi S, Gupta M, Babitha V, Khan F, Panda R, et al. Stimulatory effect of vascular endothelial growth factor on progesterone production and survivability of cultured bubaline luteal cells. Anim Reprod Sci. 2014;148:251-259. 

  2. Tomac J, Cekinovic D, Arapovic J. Biology of the corpus luteum. Periodicum biologorum. 2011;113:43-49. 

  3. Schams D, Berisha B. Regulation of corpus luteum function in cattle-an overview. Reprod Domest Anim. 2004;39:241-251. 

  4. Berisha B, Schams D, Rodler D, Pfaffl MW. Angiogenesis in the ovary-the most important regulatory event for follicle and corpus luteum development and function in cow-An overview. Anat Histol Embryol. 2016;45:124-130. 

  5. Abulafia O, Sherer DM. Angiogenesis of the ovary. Am J Obstet Gynecol. 2000;182:240-246. 

  6. Benyo DF, Pate JL. Tumor necrosis factor-alpha alters bovine luteal cell synthetic capacity and viability. Endocrinology. 1992;130:854-860. 

  7. Tamanini C, De Ambrogi M. Angiogenesis in developing follicle and corpus luteum. Reprod Domest Anim. 2004;39:206-216. 

  8. Risau W. Mechanisms of angiogenesis. Nature. 1997;386:671. 

  9. Berisha B, Schams D. Ovarian function in ruminants. Domest Anim Endocrinol. 2005;29:305-317. 

  10. Lee S, Goldfinger LE. RLIP76 regulates HIF-1 activity, VEGF expression and secretion in tumor cells, and secretome transactivation of endothelial cells. FASEB J. 2014;28:4158-4168. 

  11. Awasthi YC, Singhal SS, Gupta S, Ahmad H, Zimniak P, Radominska A, et al. Purification and characterization of an ATPase from human liver which catalyzes ATP hydrolysis in the presence of the conjugates of bilirubin, bile acids and glutathione. Biochem Biophys Res Commun. 1991;175:1090-1096. 

  12. Lee S, Wurtzel JG, Singhal SS, Awasthi S, Goldfinger LE. RALBP1/RLIP76 depletion in mice suppresses tumor growth by inhibiting tumor neovascularization. Cancer Res. 2012;72:5165-5173. https://doi.org/ 10.1158/0008-5472.CAN-12-0468. 

  13. Singhal SS, Singhal J, Yadav S, Dwivedi S, Boor PJ, Awasthi YC, et al. Regression of lung and colon cancer xenografts by depleting or inhibiting RLIP76 (Ral-binding protein 1). Cancer Res. 2007;67:4382-4389. 

  14. Singhal SS, Awasthi YC, Awasthi S. Regression of melanoma in a murine model by RLIP76 depletion. Cancer Res. 2006;66:2354-2360. 

  15. Lee S, Lee SH, Yang BK, Park CK. The expression of VEGF, myoglobin and CRP2 proteins regulating endometrial remodeling in the porcine endometrial tissues during follicular and luteal phase. Animal Sci J. 2017;88:1291-1297. 

  16. Smith MW, Stevenson JS. Fate of the dominant follicle, embryonal survival, and pregnancy rates in dairy cattle treated with prostaglandin $F2{\alpha}$ and progestins in the absence or presence of a functional corpus luteum. J Anim Sci. 1995;73:3743-3751. 

  17. Farin C, Moeller C, Mayan H, Gamboni F, Sawyer H, Niswender G. Effect of luteinizing hormone and human chorionic gonadotropin on cell populations in the ovine corpus luteum. Biol Reprod. 1988;38:413-421. 

  18. Garcia MR. Leptin contributes to the development of the corpus luteum. Cell Dev Biol. 2017;6:190. https://doi.org/10.4172/2168-9296.1000190. 

  19. de Carvalho Sousa LMM, Mendes GP, Campos DB, Baruselli PS, de Carvalho Papa P. Equine chorionic gonadotropin modulates the expression of genes related to the structure and function of the bovine corpus luteum. PLoS One. 2016;11:e0164089. 

  20. Wiles JR, Katchko RA, Benavides EA, O'Gorman CW, Escudero JM, Keisler DH, et al. The effect of leptin on luteal angiogenic factors during the luteal phase of the estrous cycle in goats. Anim Reprod Sci. 2014;148:121-129. 

  21. Stirling D, Magness R, Stone R, Waterman M, Simpson E. Angiotensin II inhibits luteinizing hormone-stimulated cholesterol side chain cleavage expression and stimulates basic fibroblast growth factor expression in bovine luteal cells in primary culture. J Biol Chem. 1990;265:5-8. 

  22. Robinson RS, Woad KJ, Hammond AJ, Laird M, Hunter MG, Mann GE. Angiogenesis and vascular function in the ovary. Reproduction. 2009;138:869-881. 

  23. Chouhan V, Panda R, Yadav V, Babitha V, Khan F, Das G, et al. Expression and localization of vascular endothelial growth factor and its receptors in the corpus luteum during oestrous cycle in water buffaloes (Bubalus bubalis). Reprod Domest Anim. 2013;48:810-818. 

  24. Schams D, Berisha B. Angiogenic factors in the bovine corpus luteum. J Reprod Dev. 2002;48:233-242. 

  25. Maisonpierre PC, Suri C, Jones PF, Bartunkova S, Wiegand SJ, Radziejewski C, et al. Angiopoietin-2, a natural antagonist for Tie2 that disrupts in vivo angiogenesis. Science. 1997;277:55-60. 

  26. Mishra S, Parmar M, Yadav V, Reshma R, Bharati J, Bharti M, et al. Expression and localization of angiopoietin family in corpus luteum during different stages of oestrous cycle and modulatory role of angiopoietins on steroidogenesis, angiogenesis and survivability of cultured buffalo luteal cells. Reprod Domest Anim. 2016;51:855-869. 

  27. Buratta S, Urbanelli L, Sagini K, Giovagnoli S, Caponi S, Fioretto D, et al. Extracellular vesicles released by fibroblasts undergoing H-Ras induced senescence show changes in lipid profile. PLoS One. 2017;12:e0188840. 

  28. Arbiser JL, Moses MA, Fernandez CA, Ghiso N, Cao Y, Klauber N, et al. Oncogenic H-ras stimulates tumor angiogenesis by two distinct pathways. Proc Natl Acad Sci U S A. 1997;94:861-866. 

저자의 다른 논문 :

LOADING...

관련 콘텐츠

오픈액세스(OA) 유형

GOLD

오픈액세스 학술지에 출판된 논문

이 논문과 함께 이용한 콘텐츠

유발과제정보 저작권 관리 안내
섹션별 컨텐츠 바로가기

AI-Helper ※ AI-Helper는 오픈소스 모델을 사용합니다.

AI-Helper 아이콘
AI-Helper
안녕하세요, AI-Helper입니다. 좌측 "선택된 텍스트"에서 텍스트를 선택하여 요약, 번역, 용어설명을 실행하세요.
※ AI-Helper는 부적절한 답변을 할 수 있습니다.

선택된 텍스트

맨위로