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[국내논문] 한국에 자생하는 녹청균류의 기초 배양 특성
Fundamental Cultural Characteristics of Chlorociboria spp. Native to Korea 원문보기

한국균학회지 = The Korean journal of mycology, v.46 no.2, 2018년, pp.145 - 160  

전성민 ,  가강현 (국립산림과학원 산림소득자원연구과) ,  왕은진 (록원바이오융합연구재단) ,  유림 (국립산림과학원 산림소득자원연구과) ,  장영선 (국립산림과학원 산림소득자원연구과)

초록
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녹청균류(Chlorociboria spp.)는 청록색 색소를 생산할 수 있는 연부후성 자낭균류로, 한국에 자생하는 녹청균류를 분리하여 다양한 배양 조건에서 균의 생장 특성과 세포외효소 활성을 조사하였다. 비록 균사 생장 속도는 느렸지만, 시험 균주들은 malt extract agar (MEA) 배지를 제외한 potato dextrose agar (PDA)와 Sabouraud dextrose agar (SDA) 배지에서 비교적 잘 생장하였다. PDA와 SDA 배지 상에서 C. poutoensis의 청록색 색소 발현도는 C. aeruginascens 보다 높았다. 최적 생장 온도는 $20{\sim}25^{\circ}C$이며, $10^{\circ}C$보다 $30^{\circ}C$에서 생장력이 약했다. $10{\sim}20^{\circ}C$에서 모든 균주는 배양 온도가 증가함에 따라 균사 생장력도 증가하는 경향을 보였다. 정치배양 시 potato dextrose broth (PDB) 배지의 최적 생장 pH는 균주에 따라 다르게 나타났다. 60일 배양체의 균체량이 가장 높게 나타난 균주는 NIFoS 579 ($114.3{\pm}5.1mg$)로, 비교적 넓은 pH 범위에서도 청록색 색소 발현을 안정적으로 유지하였다. 녹청균류의 모든 시험 균주은 cellulase와 laccase 활성을 나타냈으며, 다른 균주들보다 NIFoS 579의 효소 활성이 확연히 높았다. 이러한 결과들로부터 NIFoS 579는 청록색 천연 염료제로 이용 가능한 후보 균주라 생각한다.

Abstract AI-Helper 아이콘AI-Helper

Members of Chlorociboria are soft-rot ascomycetes that produce blue-green pigment. We investigated the growth characteristics of two Korean species of Chlorociboria, eight strains of Chlorociboria aeruginascens and Chlorociboria poutoensis, under various culture conditions (solid media, temperature,...

Keyword

AI 본문요약
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문제 정의

  • 본 연구는 국내 산림버섯 자원의 수집 및 보존 연구를 수행하는 과정에서 천연 염료자원으로 활용 가능할 것으로 판단되는 녹청균속 균주들의 기초 배양 특성을 조사한 것으로 그 결과를 본 논문에 소개하고자 한다.
  • 녹청균류는 근연종간 형태적 특성이 매우 유사하기 때문에 본 연구에서는 분자적 동정을 통해 C. aeruginascens 또는 C. poutoensis로 확정된 8개의 시험균을 대상으로 배양 특성을 조사하였다(Table 1, Fig. 1). 실험실 내 녹청균류의 배양 조건(배지의 성분, 배양 기간, 배지의 pH 등)은 녹청균류의 균사 생장과 청록색 색소 발현에 영향을 끼치는 것으로 알려져 있다[1, 2, 22].
  • 실험실 내 녹청균류의 배양 조건(배지의 성분, 배양 기간, 배지의 pH 등)은 녹청균류의 균사 생장과 청록색 색소 발현에 영향을 끼치는 것으로 알려져 있다[1, 2, 22]. 본 연구에서는 우리나라에서 수집한 녹청균류들의 균사 생장이나 색소 생산에 가장 적합한 배양 조건을 찾고, 청록색 색소 발현도가 우수한 균주를 선발하기 위해 배지의 종류, 배양 온도의 변화, 배지의 pH 변화에 따른 배양 특성을 조사하였다.
  • 백색부후균 중 특히, 구름송편버섯은 목재부후성을 탐지하거나 목재 방부제의 유효성을 시험하는 데에 사용되며[24], 구름송편버섯이 생산하는 cellulase와 laccase는 상업적인 활용이 고려될 만큼 주목 받고 있는 이차대사산물이기도 하다[25, 26]. 따라서 본 연구에서는 우리나라에서 수집한 녹청균류의 세포외효소(cellulase와 laccase) 생산 여부, cellulase와 laccase 활성을 모두 나타내는 백색부후균(T. versicolor KCCM 11502)에 대한 녹청균류의 상대적 효소 활성도(REA), 효소 활성 검색용 배지(CMC와 ABTS agar plate)에서 균사 생장과 효소 활성 발현과의 상관성 등을 조사하였다.
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질의응답

핵심어 질문 논문에서 추출한 답변
녹청균속의 분류학적 위치는? 현재 녹청균속(Chlrociboria)의 분류학적 위치는 녹청균과(Chlorociboriaceae) 고무버섯목(Helotiales) 두건버섯강(Leotiomycetes) 자낭균문(Ascomycota) [6]이며, 북미 지역에 2종류(C. aeruginosa, C.
녹청균류란 무엇인가? 녹청균류(Chlorociboria spp.)는 청록색 색소를 생산할 수 있는 연부후성 자낭균류로, 한국에 자생하는 녹청균류를 분리하여 다양한 배양 조건에서 균의 생장 특성과 세포외효소 활성을 조사하였다. 비록 균사 생장 속도는 느렸지만, 시험 균주들은 malt extract agar (MEA) 배지를 제외한 potato dextrose agar (PDA)와 Sabouraud dextrose agar (SDA) 배지에서 비교적 잘 생장하였다.
pH 변화에 따라서 균류의 색소 생산성은 어떻게 변화하는가? 배지의 pH 변화는 균류의 생장뿐만 아니라 색소 생산성에 영향을 끼칠 수 있다. 홍국균(Monascus ruber)은 pH 2인 고체배지에서는 노란색, pH 8인 배지에서는 붉은색의 색소를 생산하며, 변형술잔녹청균(C. aeruginascens)은 배지의 pH 변화에 따라 균사체의 색상이 다르게 나타나는데, 황녹색~갈녹색 범위의 색소 생산에 적합한 고체배지의 pH 범위는 2.5~7.5로 제한되어 있다[2]. 녹청균류의 색소 생산성에 영향을 끼칠 수 있는 또 하나의 요인은 균사 생장력이다.
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참고문헌 (26)

  1. Robinson SC, Laks PE. Wood species affects laboratory colonization rates of Chlorociboria sp. Int Biodeterior Biodegradation 2010;64:305-8. 

  2. Tudor D. Fungal pigment formation in wood substrate [dissertation]. Toronto (ON): University of Toronto; 2013. 

  3. Gutierrez SM, Robinson SC. Microscopic analysis of pigments extracted from spalting fungi. J Fungi (Basel) 2017;3:15. 

  4. Ka KH, Jeon SM, Ryoo R, Ryu SH, Kim MG, Bak WC, Park JH, Koo CD, Eom AH. Management of genetic resources of forest microorganisms. Seoul: Korea Forest Research Institute; 2011. 

  5. Buczacki S, Shields C, Ovenden D. Collins fungi guide: the most complete field guide to the mushrooms and toadstools of Britain & Ireland. London: Collins; 2012. 

  6. Royal Botanic Gardens, Kew. Species fungorum [Internet]. London: Royal Botanic Gardens, Kew; 2018 [cited 2018 May 11]. Available from: http://www.speciesfungorum.org/Names/Names.asp. 

  7. Tudor D, Margaritescu S, Sanchez-Ramirez S, Robinson SC, Cooper PA, Moncalvo JM. Morphological and molecular characterization of the two known North American Chlorociboria species and their anamorphs. Fungal Biol 2014;118:732-42. 

  8. Liu D, Wang H, Park JS, Hur JS. The genus Chlorociboria, blue-green micromycetes in South Korea. Mycobiology 2017;45:57-63. 

  9. Robinson SC, Hinsch E, Weber G, Leipus K, Cerney D. Wood colorization through pressure treating: the potential of extracted colorants from spalting fungi as a replacement for woodworkers' aniline dyes. Materials (Basel) 2014;7:5427-37. 

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  11. Hinsch EM. A comparative analysis of extracted fungal pigments and commercially available dyes for colorizing textiles [dissertation]. Corvallis (OR): Oregon State University; 2015. 

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  17. Hinsch EM, Weber G, Chen HL, Robinson SC. Colorfastness of extracted wood-staining fungal pigments on fabrics. J Text Apparel Technol Manag 2015;9:1-11. 

  18. White TJ, Bruns T, Lee S, Taylor J. Amplification and direct sequencing of fungal ribosomal RNA genes for phylogenetics. In: Innis MA, Gelfand DH, Sminsky JJ, White TJ, editors. PCR protocols: a guide to methods and applications. San Diego: Academic Press; 1990. p. 315-22. 

  19. Jeon SM, Ka KH. Mycelial growth and extracellular enzyme activities of wood- decaying mushroom strains on solid media. Kor J Mycol 2014;42:40-9. 

  20. Kasana RC, Salwan R, Dhar H, Dutt S, Gulati A. A rapid and easy method for the detection of microbial cellulases on agar plates using gram's iodine. Curr Microbiol 2008;57:503-7. 

  21. Crowe JD, Olsson S. Induction of laccase activity in Rhizoctonia solani by antagonistic Pseudomonas fluorecens strains and a range of chemical treatments. Appl Environ Microbiol 2001;67:2088-94. 

  22. Robinson SC, Tudor D, Snider H, Cooper PA. Stimulating growth and xylindein production of Chlorociboria aeruginascens in agar-based systems. AMB Express 2012;2:15. 

  23. Jeon SM, Kim MS, Ka KH. Effects of medium, temperature and pH on mycelial growth and cellulase activity of ectomycorrhizal fungi from Korean forests. Kor J Mycol 2012;40:191-203. 

  24. Korean Culture Center of Microorganisms. Search and service applications [Internet]. Seoul: Korean Culture Center of Microorganisms; 2018 [cited 2018 May 24]. Available from: http://www.kccm.or.kr/sub12_view.php3?f_kccm11502. 

  25. Kuhad RC, Gupta R, Singh A. Microbial cellulases and their industrial applications. Enzyme Res 2011;2011: Article ID 280696. 

  26. Rameshaiah GN, Reddy ML. Applications of ligninolytic enzymes from a white-rot fungus Trametes versicolor. Univers J Environ Res Technol 2015;5:1-7. 

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