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[국내논문] 낙동납자루(Tanakia latimarginata)의 초기생활사
Early Life History of Tanakia latimarginata 원문보기

Korean journal of Ichthyology = 한국어류학회지, v.30 no.2, 2018년, pp.75 - 83  

박재민 (경상북도 토속어류산업화센터) ,  전형배 (영남대학교 생명과학과) ,  조혜인 (경상북도 토속어류산업화센터) ,  조성장 (보령민물생태관) ,  석호영 (영남대학교 생명과학과) ,  한경호 (전남대학교 해양기술학부)

초록

이 연구는 우리나라 고유종인 낙동납자루의 초기생활사를 연구하여 분류학적 연구의 기초자료로 이용하고자 한다. 낙동납자루는 수컷의 뒷지느러미 가장자리 검은색 띠가 짙고, 암컷의 산란관이 오렌지색을 띠는 것으로 알려져 있다. 난의 형태는 방추형이었고, 난경은(장경${\times}$단경) $4.41{\times}1.44mm$였다. 부화에 소요되는 시간은 수온 $21.0^{\circ}C$일 때 126시간이 소요되었다. 부화 직후의 자어는 난황을 가지고 있으며, 평균 전장은 $5.91{\pm}0.18mm$ (n=5)였다. 부화 후 18일째에는 꼬리지느러미가 발달하였고, 평균 전장은 $8.02{\pm}0.08mm$ (n=5)였다. 부화 후 41일째 자어는 난황을 대부분 흡수하였고, 평균 전장은 $8.70{\pm}0.23mm$ (n=5)였다. 부화 후 80일째 자어는 지느러미 기조 수가 정수에 달하였고, 평균 전장 $12.6{\pm}0.28mm$ (n=5)였다. 지느러미 기조 수는 등지느러미 ⅲ.8개, 뒷지느러미 ⅲ. 9~10개, 꼬리지느러미 19개, 측선비늘 수 32~35개로 어미와 유사하였다.

Abstract AI-Helper 아이콘AI-Helper

This study is to observe species identification and early life history of Korean endemic species of Tanakia latimarginata and to use it as a basis for taxonomic studies. As a result of morphological identification, a dark band appeared at the margin of the anal fin, and the ovipositor color of the f...

주제어

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제안 방법

  • 총 1,000회의 bootstrap 반복을 실시하였으며, 90% 이상의 신뢰도를 갖는 노드만으로 통합 계통수(consensus tree)를 작성하여 제시하였다. COI 유전자를 이용해 BLAST를 통해 기존에 NCBI GenBank에 보고된 데이터베이스와 유사도 검사를 실시하였다.
  • (2017)의 방법을 따랐다. cytochrome b 유전자의 시퀀싱 결과 얻어진 염기서열을 통해 클러스터링 기반의 종 동정을 실시하였으며, 이를 위해 geneious(Kearse et al., 2012)를 이용하여 Neighbour-joining (NJ) 계통수를 작성하였다. 미토콘드리아 cytochrome b 유전자를 이용한 선행연구에서 유전적 거리에 근거한 역치 기반(threshold-based) 기법의 한계가 보고되었으므로, 본 연구에서는 cytochrome b 유전자를 통해 클러스터링 기반의 분석결과를 종 동정에 이용하였다.
  • 먹이는 Artemia sp. nauplius 유생을 mL당 2~3개체가 되도록 1일 1회 공급하였고, 수온은 수정란 사육과 동일한 조건을 유지해주었다. 자치어 형태발달 관찰은 1~5일마다 5마리를 무작위로 선택하여 MS-222 (Ethyl 3-aminobenzoate methanesulfonate, Sigma Aldrich Co.
  • 납자루속 (Tanakia)의 DNA 바코딩에서 이용된 COI과 cytochrome b 유전자를 이용하여 역치값 (threshold-based) 및 클러스터링 기반(clustering-based)의 종 동정과 계통분석을 각각 실시하였다. 총 4개체로부터 genomic DNA의 추출과 PCR 증폭 및 시퀀싱을 실시하였으며, 실험과정은 Jeon et al.
  • , 2012)를 이용하여 Neighbour-joining (NJ) 계통수를 작성하였다. 미토콘드리아 cytochrome b 유전자를 이용한 선행연구에서 유전적 거리에 근거한 역치 기반(threshold-based) 기법의 한계가 보고되었으므로, 본 연구에서는 cytochrome b 유전자를 통해 클러스터링 기반의 분석결과를 종 동정에 이용하였다. 클러스터링 기반의 분석을 위해서 기존에 납자루속에서 보고된 하플로 타입이 이용되었으며(Jeon et al.
  • 01 mm까지 측정하였고, 난 발생은 실체현미경 (Nikon SMZ18, Japan)으로 형태 및 발생과정을 관찰 및 사진촬영 하였다. 사육수온은 실내 냉난방 조절 시스템을 이용하여 어미사육과 동일한 조건을 유지해주었고, 수질관리를 위해 3일에 1회씩 90% 환수시켜 주었다. 자치어 사육은 부화 직후부터 난황흡수가 완료되기까지 페트리디쉬(Ø 15 cm)에서 지속적으로 사육하였고, 수직이동과 유영이 관찰되는 시기부터 수조로 이동 후 사육하였다.
  • 수정란은 10개를 임의로 선택하여 만능투영기 (Nikon JP V-12B, Japan)를 이용, 난의 크기를 0.01 mm까지 측정하였고, 난 발생은 실체현미경 (Nikon SMZ18, Japan)으로 형태 및 발생과정을 관찰 및 사진촬영 하였다. 사육수온은 실내 냉난방 조절 시스템을 이용하여 어미사육과 동일한 조건을 유지해주었고, 수질관리를 위해 3일에 1회씩 90% 환수시켜 주었다.
  • 수정은 멸균 처리된 생리식염수(0.9% NaCl)가 담긴 페트리디쉬(Ø 15 cm)에 채란하여 미리 채정된 수컷의 정액을 혼합하여 습식법으로 인공수정하였다.
  • 수질관리는 1주일에 1회씩 사육수의 50% 가량을 환수시켜 주었고, 수온은 19.0~23.0°C(평균 21.0±2.0℃)를 유지시켜 주었다.
  • 수컷의 크기는 전장 4.60~8.50 cm (평균 7.08±1.05 cm, n=10), 암컷 전장 3.70~8.30 cm (평균 6.02±1.51 cm, n=14)였고, 유리 사각 수조 (50×45×35 cm)에서 스펀지필터를 이용하여 순환여과식으로 사육하였으며, 먹이는 1일 2회씩 배합사료(Tetra Bits, Germany)를 공급하였다.
  • 자치어 사육은 부화 직후부터 난황흡수가 완료되기까지 페트리디쉬(Ø 15 cm)에서 지속적으로 사육하였고, 수직이동과 유영이 관찰되는 시기부터 수조로 이동 후 사육하였다.
  • nauplius 유생을 mL당 2~3개체가 되도록 1일 1회 공급하였고, 수온은 수정란 사육과 동일한 조건을 유지해주었다. 자치어 형태발달 관찰은 1~5일마다 5마리를 무작위로 선택하여 MS-222 (Ethyl 3-aminobenzoate methanesulfonate, Sigma Aldrich Co., St. Louis, USA)를 이용, 마취 후 만능투영기로 크기를 0.01 mm까지 측정하였고, 실체 현미경으로 형태변화 관찰 및 사진촬영을 하였다.
  • 계통분석을 위한 염기치환모델로는 TamuraNei의 모델이 이용되었다. 총 1,000회의 bootstrap 반복을 실시하였으며, 90% 이상의 신뢰도를 갖는 노드만으로 통합 계통수(consensus tree)를 작성하여 제시하였다. COI 유전자를 이용해 BLAST를 통해 기존에 NCBI GenBank에 보고된 데이터베이스와 유사도 검사를 실시하였다.
  • 현재까지 유사종과의 초기생활사 비교 연구는 이루어지지 않았기 때문에 이 연구에서는 신종으로 보고된 낙동납자루의 초기생활사 관찰을 통해 유사종 사이에 초기생활사 수준의 차이를 규명하고, 낙동강에서 유래한 개체의 분자적 동정을 실시하여 종의 위치를 규명하였다. 이는 종 보존을 위한 인공증식 및 분류학적 기초자료로 활용될 것으로 기대된다.

대상 데이터

  • 46) 4마리를 모래가 채워진 사각용기에 수용하여 산란유도를 실시하였다. 수컷은 입 주변에 추성이 형성되고, 혼인색이 뚜렷하며 정액이 육안으로 관찰되는 것을 선별하였고, 암컷은 산란관이 뒷지느러미 중반부까지 신장한 개체로부터 복부를 압박 후 채란하였다. 수정은 멸균 처리된 생리식염수(0.
  • 연구에 사용된 친어는 경북 문경시에 위치한 영강 지류하천에서 족대를 이용하여 포획하였고, 산소비닐포장 후 연구실로 운반하여 분류를 위해 형태적 특징을 관찰하였다. 수컷의 크기는 전장 4.
  • 미토콘드리아 cytochrome b 유전자를 이용한 선행연구에서 유전적 거리에 근거한 역치 기반(threshold-based) 기법의 한계가 보고되었으므로, 본 연구에서는 cytochrome b 유전자를 통해 클러스터링 기반의 분석결과를 종 동정에 이용하였다. 클러스터링 기반의 분석을 위해서 기존에 납자루속에서 보고된 하플로 타입이 이용되었으며(Jeon et al., 2017), 아웃그룹으로 총 4종의 납줄개속(Rhodeus pseudosericeus, KF425517; R. sericeus, KM052222; R. shitaiensis, KF176560; R. sinensis, KF533721) 종이 이용되었다. 계통분석을 위한 염기치환모델로는 TamuraNei의 모델이 이용되었다.

이론/모형

  • sinensis, KF533721) 종이 이용되었다. 계통분석을 위한 염기치환모델로는 TamuraNei의 모델이 이용되었다. 총 1,000회의 bootstrap 반복을 실시하였으며, 90% 이상의 신뢰도를 갖는 노드만으로 통합 계통수(consensus tree)를 작성하여 제시하였다.
  • 납자루속 (Tanakia)의 DNA 바코딩에서 이용된 COI과 cytochrome b 유전자를 이용하여 역치값 (threshold-based) 및 클러스터링 기반(clustering-based)의 종 동정과 계통분석을 각각 실시하였다. 총 4개체로부터 genomic DNA의 추출과 PCR 증폭 및 시퀀싱을 실시하였으며, 실험과정은 Jeon et al. (2017)의 방법을 따랐다. cytochrome b 유전자의 시퀀싱 결과 얻어진 염기서열을 통해 클러스터링 기반의 종 동정을 실시하였으며, 이를 위해 geneious(Kearse et al.
  • 한국에서는 그동안 큰납지리속(Acanthorhodeus), 납자루속(Acheilognathus), 납줄개속(Rhodeus) 등 3속 15종이 기록되어왔으나(Kim et al., 2005; NIBR, 2011), 본 연구에서는 납자루 아과 어류의 분류체계를 Chang et al. (2014)에 따라 Tanakia, Achilognathus, Rhodeus속으로 구분하였다.
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질의응답

핵심어 질문 논문에서 추출한 답변
납자루아과 어류의 산란습성은 어떠한가? 한편, 납자루아과는 석패과 (Unionidae)에 속하는 담수산 이매패류를 숙주로 이용하는 독특한 산란습성을 가지고 있어 난내 발생과 전기자어 시기를 조개 안에서 보냄으로써 높은 생존율을 유지하도록 진화하였지만 최근 하천 정비공사와 수질오염 등의 영향으로 민물조개가 감소하여 오히려 산란숙주에 의존하는 납자루아과 어류의 생존전략이 불리하게 작용하고 있다 (Baek and Song, 2005a; Kim et al.,2011).
납자루아과 어류란 무엇인가? 납자루아과 (Acheilognathinae) 어류는 잉어과 (Cyprinidae)에 속하는 소형 담수어류로서 세계적으로 70여 종이 분포하는 것으로 알려져 있다(Arai, 1988; Banarescu, 1990; Chang etal., 2014).
납자루아과 어류 중 낙동납자루와 칼납자루의 난 부화 소요시간은 어떻게 다른가? 난의 크기와 형태를 다른 납자루아과 어류와 비교한 결과 Table 2와 같았다. 부화에 소요되는 시간은 낙동납자루가 수온 21.0°C일 때 수정 후 124시간이 소요되었고, 유사종인 칼납자루(Kim et al., 2011)는 수온 21.0°C일 때 수정 후 49시간이 소요되어 낙동납자루와 차이를 보여 동일한 수온임에도 부화시간에 차이가 있는 것이 확인되었다.
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참고문헌 (26)

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  5. Chang, C.H., L. Fan, K.T. Shao, Y.S. Lin, T. Morosawa, S.M. Kim, H.Y. Koo, W. Kim, J.S. Lee, S. He, C. Smith, M. Reichard, M. Miya, T. Sado, K. Uehara, S. Lavoue, W.J. Chen and R.L. Mayden. 2014. Phylogenetic relationships of Acheilognathidae (Cypriniformes: Cyprinoidea) as revealed from evidence of both nuclear and mitochondrial gene sequence variation: Evidence for necessary taxonomic revision in the family and the identification of cryptic species. Mol. Phylogenet. Evol., 81: 182-194. 

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  26. Suzuki, N. and S.R. Jeon. 1990b. Development of bitterling, Acanthorhodeus (Acheilognathus) gracilis (Cyprinidae), with a note on minute tubercles on the skin surface. Korean J. Ichthyol., 2: 169-181. (in Korean) 

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