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고염과 건조 스트레스 처리 조건 동안 양초 유식물체의 항산화효소 활성 분석
Analysis of Antioxidant Enzyme Activity During Seedling Growth of Leymus chinensis Trin Under Salt and Dehydration Stresses 원문보기

생명과학회지 = Journal of life science, v.28 no.7 = no.219, 2018년, pp.772 - 777  

심동환 (국립산림과학원 산림생명자원연구부) ,  남기정 (국립경상대학교 생물교육과(농업생명과학연구원)) ,  김윤희 (국립경상대학교 생물교육과(농업생명과학연구원))

초록
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본 연구에서는 화본과 다년생 식물인 양초의 환경 스트레스에 대한 적응 기작을 이해하기 위해, 과산화수소를 제거하는 주요 항산화효소인 peroxidase (POD), ascorbate peroxidase (APX) 및 catalase (CAT) 활성의 변화를 고염과 건조 스트레스 조건에서 조사하였다. 300 mM 이상의 NaCl과 40% PEG 처리에서 양초 유식물체의 지상부와 지하부의 생장이 크게 감소하였다. 항산화효소 수준은 양초 유식물체의 지상부에서 CAT 활성이 높았지만, APX와 POD는 지하부에서 높은 활성 수준을 보였다. 실제로 NaCl과 PEG 처리동안 APX 활성은 지상부와 지하부가 모두 증가하였으며, CAT 활성은 지상부만 증가하였다. 또한 고염 조건에서 양초식물체의 지상부와 지하부 모두에서 전체페놀 함량이 증가하였다. 본 연구의 결과로서, 양초의 유식물체의 지상부 및 지하부의 생장이 과산화수소를 제거하는 항산화효소활성에 의해 조절됨을 알 수 있었으며, 이는 뿌리에서 APX 활성의 증가 및 지상부에서 CAT 활성증가와 같은 효소활성의 조직 특이적 증가에 영향을 받음을 알 수 있다. 본 연구의 결과는 전형적인 사막지역을 포함하는 고염 지역에서 양초 유식물체의 생장을 위해 항산화 방어기작이 중요함을 의미하는 바이다.

Abstract AI-Helper 아이콘AI-Helper

To understand the adaptability of Leymus chinensis forage grass to environmental stresses, we analyzed the $H_2O_2$ scavenging activity based on several antioxidant enzymes and total phenolics content, including peroxidase (POD), ascorbate peroxidase (APX), and catalase (CAT), in shoots a...

주제어

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문제 정의

  • 식물은 고염 및 건조 스트레스를 포함한 환경스트레스 조건에 노출되면 과다한 활성산소종의 증가에의해 산화스트레스가 유발된다. 그러므로, NaCl 처리 조건에서 양초 유식물체의 과산화수소 제거 관련 항산화효소들의 활성을 조사 하였다. 양초 유식물체의 APX와 POD 활성수준은 지하부가 지상부보다 높았으며, CAT의 경우는 지상부가 지하부보다 높은 활성 수준을 나타내었다.
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질의응답

핵심어 질문 논문에서 추출한 답변
양초의 특징은 무엇인가? 5)에 널리 자생하고 있는 다년생의 화본과 식물이다. 특히, 양초는 척박한 토양에 비교적 잘 적응하며 사막화가 진행 중인 지역의 토양 유실 및 황사발생을 억제할 수 있는 특징을 갖는 주요한 식물이다. 양초는 또한 높은 단백질을 함유한 양질의 건초로서의 가치도 갖고 있는 사료작물이다[7].
양초란 무엇인가? 양초(Leymus Chinensis Trin.)는 중국, 시베리아, 몽골을 포함한 동북아시아의 건조 및 알칼리토양(pH8.5-11.5)에 널리 자생하고 있는 다년생의 화본과 식물이다. 특히, 양초는 척박한 토양에 비교적 잘 적응하며 사막화가 진행 중인 지역의 토양 유실 및 황사발생을 억제할 수 있는 특징을 갖는 주요한 식물이다.
식물이 과다한 활성산소종에 의해 유발되는 산화스트레스를 받게 되면 발생하는 현상은 무엇인가? 식물이 과도한 스트레스를 받게 되면 생체내 산소가 반응성이 높은 독성의 활성산소종(reactive oxygen species, ROS)으로 변하게 된다. 다양한 환경스트레스에 의해 유발되는 활성산소종의 과다발생은 식물의 생산성을 감소시키는 주요 요인이 되고 있다. 이러한 과다한 활성산소종에 의해 유발되는 산화스트레스는 식물의 대표적 방어기구인 superoxide dismutase (SOD), ascorbate peroxidase (APX), peroxidase (POD), catalase (CAT) 등의 항산화효소와 ascorbic acid (AsA)와 glutathione (GSH) 같은 저분자 항산화물질 등에 의해 효율적으로 제거된다[11].
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참고문헌 (16)

  1. Aebi, H. 1984. Catalase in vitro. Methods. Enzymol. 105, 121-126. 

  2. Allakhverdiev, S. I., Sakamoto, A., Nishiyama, Y., Inada, M. and Murata, N. 2000. Ionic and osmotic effects of NaCl-induced inactivation of photosystems I and II in Synechococcus sp. Plant Physiol. 123, 1047-1056. 

  3. Asada, K. 1999. The water-water cycle in chloroplasts: scavenging of active oxygen and dissipation of excess photons. Annu. Rev. Plant Physiol. Plant Mol. Biol. 50, 601-639 

  4. Bartels, D. and Sunkar, R. 2005. Drought and salt tolerance in plants. Crit. Rev. Plant Sci. 24, 23-58. 

  5. Bradford, M. M. 1976. A rapid and sensitive method for the quantitation of microgram quantities of protein utilizing the principle of protein-dye binding. Anal. Biochem. 72, 248-254. 

  6. Cheong, M. S. and Yun, D. J. 2007. Salt-stress signaling. J. Plant Biol. 50, 148-155. 

  7. Jia, S. X. 1987. Forage flora in people republic of sinica. Beijing. China Agriculture Press, pp 19-35 

  8. Jin, H., Plaha, P., Park, J. Y., Hong, C. P., Lee, I. S., Yang, Z. H., Jiang, G. B., Kwak, S. S., Liu, S. K., Lee, J. S., Kim, Y. A. and Lim, Y. P. 2006. Comparative EST profiles of leaf and root of Leymus chinensis, a xerophilous grass adapted to high pH sodic soil. Plant Sci. 170, 1081-1086. 

  9. Kwak, S. S., Kim, S. K., Lee, M. S., Jung, K. H., Park, I. H. and Liu, J. R. 1995. Acidic peroxidase from suspension-cultures of sweet potato. Phytochemistry 39, 981-984. 

  10. Nakano, Y. and Asada, K. 1981. Hydrogen peroxide is scavenged by ascorbate-specific peroxidase in spinach chlor-oplasts. Plant Cell Physiol. 22, 867-880. 

  11. Noctor, G. and Foyer, C. H. 1998. Ascorbate and glutathione: keeping active oxygen under control. Annu. Rev. Plant Physiol. Plant Mol. Biol. 49, 249-279. 

  12. Sgherri, C., Stevanovic, B. and Navari-Izzo, F.2004. Role of phenolics in the antioxidative status of the resirrection plant Ramonda serbica during dehydration and rehydration. Physiol. Plant 122, 478-485. 

  13. Singh, A. and Prasad, R. 2009. Salt stress effects growth and cell wall bound enzymes in Arachis hypogaea L. seedings. Int. J. Integr. Biol. 7, 117-123. 

  14. Stadnik, M. J. and Buchenauer, H. 2000. Inhibition of phe nylalanine ammonia -lyase suppresses the resistance in- duced by benzothiadiazole in wheat to Blumeria graminis f. sp. tritici. Physiol. Mol. Plant Pathol. 57, 25-34. 

  15. Sun, Y., Wang, F., Wang, N., Dong, Y., Liu, Q., Zhao, L., Chen, H., Liu, W., Yin, H., Zhang, X., Yuan, Y. and Li, H.2013. Transcriptome exploration in Leymus chinensis under saline-alkaline treatment using 454 pyrosequencing. PLoS One 8, e53632 

  16. Wang, W. B., Kim, Y. H., Lee, H. S., Kim, K. Y., Deng, X. P. and Kwak, S. S. 2009. Analysis of antioxidant enzyme activity during germination of alfalfa under salt and drought stresses. Plant Physiol. Biochem. 47, 570-577. 

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