$\require{mediawiki-texvc}$

연합인증

연합인증 가입 기관의 연구자들은 소속기관의 인증정보(ID와 암호)를 이용해 다른 대학, 연구기관, 서비스 공급자의 다양한 온라인 자원과 연구 데이터를 이용할 수 있습니다.

이는 여행자가 자국에서 발행 받은 여권으로 세계 각국을 자유롭게 여행할 수 있는 것과 같습니다.

연합인증으로 이용이 가능한 서비스는 NTIS, DataON, Edison, Kafe, Webinar 등이 있습니다.

한번의 인증절차만으로 연합인증 가입 서비스에 추가 로그인 없이 이용이 가능합니다.

다만, 연합인증을 위해서는 최초 1회만 인증 절차가 필요합니다. (회원이 아닐 경우 회원 가입이 필요합니다.)

연합인증 절차는 다음과 같습니다.

최초이용시에는
ScienceON에 로그인 → 연합인증 서비스 접속 → 로그인 (본인 확인 또는 회원가입) → 서비스 이용

그 이후에는
ScienceON 로그인 → 연합인증 서비스 접속 → 서비스 이용

연합인증을 활용하시면 KISTI가 제공하는 다양한 서비스를 편리하게 이용하실 수 있습니다.

해수 저염분 순치과정에서 먹이섭취가 흰다리새우, Litopenaeus vannamei 유생에 미치는 영향
Effect of Feeding on Postlarvae of Pacific White Shrimp, Litopenaeus vannamei during the Acclimation Process to Low Salinities in Seawater 원문보기

환경생물 = Korean journal of environmental biology, v.36 no.3, 2018년, pp.377 - 384  

김수경 (국립수산과학원 서해수산연구소) ,  심나영 (국립수산과학원 서해수산연구소) ,  조지현 (국립수산과학원 서해수산연구소) ,  김종현 (국립수산과학원 서해수산연구소) ,  김수경 (국립수산과학원 서해수산연구소)

초록
AI-Helper 아이콘AI-Helper

저염분 순치기간에 먹이를 섭취함으로서 얻을 수 있는 초기 유생의 생리적 변화는 다음과 같이 요약할 수 있다. 하루 동안의 순치기간에 염분농도에 따른 유생의 생존율은 차이를 보였지만 각 염분구간별 먹이섭취 유무에 따른 생존효과는 유사하였다. 그러나 먹이섭취 시 유생이 에너지원으로 활용할 수 있는 cholesterol, triglyceride의 증가가 있었으며 삼투압에 영향을 미칠 수 있는 glucose 농도가 유의적으로 증가하였다. 또한 저염분 순치기간 동안에 스트레스, 조직손상 및 대사작용의 지표가 되는 BUN과 creatine의 감소가 있었다. 먹이섭취로 인한 소화효소의 활성이 먹이를 섭취한 실험구 모두에서 증가하였다. 그러므로 유생발달과 함께 중요한 소화, 순환, 생식기관이 형성되며 탈피 성장을 위한 신진대사가 빠르게 진행되는 유생시기에 저염분 순치가 효율적으로 이루어져 향후 지속적인 성장을 유도하기 위해서는 먹이를 섭취하는 것이 더 효과적인 것으로 판단되었다.

Abstract AI-Helper 아이콘AI-Helper

This study focused on the effects of feeding on postlarvae of shrimp, Litopenaeus vannamei, during the identified acclimation time to low salinity. A total of 5 different salinity groups with or without feeding (32, 24, 16, 8, and 2 psu, 1 liter, triplicates) were prepared, and 30 shrimp were settle...

주제어

AI 본문요약
AI-Helper 아이콘 AI-Helper

문제 정의

  • 2009). 본 연구에서는 순치기간동안 먹이를 섭취한 경우와 섭취하지 않았을 때에 유생의 생리특성의 변화를 조사하여 적응과정에서의 스트레스를 감소시키고 향후 저염분에서도 최적의 성장과 생존율을 유도할 수 있는 방법을 모색하고자 하였다.
본문요약 정보가 도움이 되었나요?

질의응답

핵심어 질문 논문에서 추출한 답변
흰다리 새우의 저염분 양식에서 가장 중요한 요인은 무엇인가? 2014). 저염분 양식에서 가장 중요한 요인은 삼투압 조절 능력으로서 흰다리새우의 경우 이온 농도보다 각 이온 간 비율이 중요한 요인으로 작용하고 있으며 부족한 이온을 첨가하여 비율을 조절하면 최적의 성장과 생산량을 유도할 수 있기 때문에 적정 비율을 찾는 것이 중요하다(Boyd2003; Saoud et al. 2003; McNevin et al.
흰다리새우란 어떤 품종인가? 흰다리새우(Litopenaeus vannamei)는 아열대종으로 남아메리카가 주산지로 알려져 있지만 현재는 전 세계에서 가장 많은 양식이 이루어지고 있는 품종이다. 특히 광염성으로 낮은 염분인 1 psu에서 40 psu에서도 서식이 가능하다.
흰다리새우가 서식할 수 있는 염분농도 범위는? 흰다리새우(Litopenaeus vannamei)는 아열대종으로 남아메리카가 주산지로 알려져 있지만 현재는 전 세계에서 가장 많은 양식이 이루어지고 있는 품종이다. 특히 광염성으로 낮은 염분인 1 psu에서 40 psu에서도 서식이 가능하다. 일부 국가에서는 무병어미관리 및 종묘생산 기술이 확립되어 어미와 종묘의 국가 간 이동이 활발하고 국제 새우 양식산업의 주요품종이 되었다(Samocha et al.
질의응답 정보가 도움이 되었나요?

참고문헌 (42)

  1. 10.1590/S1519-69842008000100032 AbrunhosaF and M Melo. 2008. Development and functional morphology of the foreguts of larvae and postlarvae of three crustacean decapods . Braz. J. Biol.68:221-228. 

  2. BernfeldP. 1955. Amylases: alpha and beta. In: Methods in enzymology (ColowickSP and NO Kaplan eds.). Academic Press, New York. pp. 149-158. 

  3. BoydCE . 2003. Mineral salts correct imbalances in culture water . Global Aquaculture Advocate6:56-57. 

  4. 10.1016/0022-0981(94)90038-8 CharmantierG and C Soyez. 1994. Effect of molt stage and hypoxia on osmoregulatory capacity in the penaeid shrimp Penaeus vannamei . J. Exp. Mar. Biol. Ecol.178:233-246. 

  5. 10.1016/j.aquaculture.2005.06.022 ChengKM , CQ Hu, YN Liu, SX Zheng and XJ Qi. 2006. Effects of dietary calcium, phosphorus and calcium/phosphorus ratio on the growth and tissue mineralization of Litopenaeus vannamei reared in low-salinity water . Aquaculture251:472-483. 

  6. 10.1007/BF00034986 DabrowskiK and J Glogowski. 1977. Studies on the role of exogenous proteolytic enzymes in digestion processes in fish . Hydrobiologia54:129-134. 

  7. DavisDA , TM Samocha and CE Boyd. 2004. Acclimation Pacific white shrimp Litopenaeus vannamei to inland, low salinity waters. SRAC publication No. 2601. 

  8. 10.1016/0003-9861(61)90145-X ErlangerBF , N Kokowsky and W Cohen. 1961. The preparation and properties of two new chromogenic substrates of trypsin . Arch. Biochem. Biophys.95:271-278. 

  9. 10.1159/000401759 EvansE and R Witty. 1978. An assessment of methods used to determine protein quality . World Rev. Nutr. Diet.32:1-4. 

  10. FeganDF . 1992. Recent developments and issues in the Penaeid shrimp hatchery industry. In: Proceeding of the Special Session on Shrimp Farming (WybanJ ed.). The World Aquaculture Society. Baton Rouge, pp. 55-70. 

  11. FryFEJ . 1971. The effect of environmental factors on the physiology of fish. vol. 7. In: Fish Physiology, Environmental Relations and Behavior (HoarWS and DJ Randall eds.), Academic Press. New York. pp. 1-98. 

  12. 10.1016/j.aquaculture.2009.08.012 Garza-TorresR , R Campos-Ramos and AM Maeda-Martinez. 2009. Organogenesis and subsequent development of the genital organis in female and male Pacific white shrimp Penaeus ( Litopenaeus ) vannamei . Aquaculture296:136-142. 

  13. 10.1016/0014-5793(94)00470-6 HainesTH . 1994. Water transport across biological membranes . FEBS Lett.346:115-122. 

  14. 10.1111/j.1749-7345.1998.tb00649.x HallMR and EH van Ham. 1998. The effects of different types of stress on blood glucose in the giant tiger Prawn, Penaeus monodon . J. World Aquacult. Soc.29:290-299. 

  15. 10.1016/0163-7827(90)90002-3 HazelJR and EE Williams. 1990. The role of alterations in membrane lipid composition in enabling physiological adaptation of organisms to their physical environment . Prog. Lipid Res.29:167-227. 

  16. 10.1016/S1381-1177(03)00167-X HungTC , R Giridgar, SG Chiou and WT Wu. 2003. Binary immobilization of Candida rugosa lipase on chitosan . J.Mol. Catal. B-Enzym.26:69-78. 

  17. 10.6090/jarq.43.345 JayasankarV , S Jasmani, T Momura, S Nohara, DTT Huong and MN Wilder. 2009. Low salinity rearing of the Pacific white shrimp Litopenaeus vannamei : Acclimation, survival and growth of postlarvae and juveniles. Jarq- Jpn. Agric. Res. Q.43:345-350. 

  18. 10.11626/KJEB.2017.35.1.006 KimSK , NY Shim, JW Jang, JC Jun, SK Kim and YK Shin. 2017. Effect of acclimation methods on physiological status of White shrimp, L. vannamei larvae to low salinities . Korean J. Environ. Biol.35:6-12. 

  19. KinneO. 1971. Salinity: Animal invertebrates. vol. 1. In: Marine Ecology, Environmental Factors (KinneO ed.). Wiley Interscience. London. pp. 821-995. 

  20. 10.1016/j.aquaculture.2007.11.001 LiEC , LQ Chen, C Zeng, N Yu, ZQ Xiong, XF Chen and JG Qin. 2008. Comparison of digestive and antioxidant enzymes activities, haemolymph oxyhemocyanin contents and hepatopancreas histology of white shrimp, Litopenaeus vannamei , at various salinities . Aquaculture274:80-86. 

  21. 10.1016/S0044-8486(00)00429-4 LignotJH , C Spanings-Pierro and G Charmantier. 2000. Osmoregulatory capacity as a tool in monitoring the physiological condition and the effect of stress in crustaceans . Aquaculture191:209-245. 

  22. 10.1007/s00343-014-3345-6 LiuHY , BP Tan, JF Yang, YB Lin, SY Chi, XH Dong and QH Yang. 2014. Effect of various Na/K ratios in low-salinity well water on growth performance and physiological response of Pacific white shrimp Litopenaeus vannamei . Chin. J. Oceanol. Limnol.32:991-999. 

  23. 10.1111/j.1749-7345.2002.tb00481.x McGrawWJ , DA Davis, D Teichert-Coddington and DB Rouse. 2002. Acclimation of Litopenaeus vannamei Postlarvae to low salinity: Influence of age, salinity endpoint, and rate of salinity reduction . J. World Aquacult. Soc.33:78-82. 

  24. 10.1111/j.1749-7345.2004.tb00111.x McNevinAA , CE Boyd, O Silapajarn and K Silapajarn. 2004. Ionic supplementation of pond waters for inland culture of marine shrimp . J. World Aquacult. Soc.35:460-467. 

  25. 10.1016/j.cbpa.2006.06.007 MeloJFB , LM Lundsted, I Met n, IV Baanante and G Moraes. 2006. Effects of dietary levels of protein on nitrogenousmetabolism of Rhamdia quelen (Teleostei: Pimelodidae) . Comp. Biochem. Physiol. A-Mol. Integr. Physiol.145:181-187. 

  26. 10.1016/0300-9629(82)90114-1 MorrisRJ , PM Lockwood and ME Dawson. 1982. An effect of acclimation salinity on the fatty acid composition of the gill phospholipids and water flux of the amphipod crustacean Gamarus duebeni . Comp. Biochem. Physiol . A-Physiol.72:497-503. 

  27. 10.1016/j.jembe.2004.03.008 MugnierC and C Justou. 2004. Combined effect of external ammonia and molt stage on the blue shrimp Litopenaeus stylirostris physiological response . J. Exp. Mar. Biol. Ecol.309:35-46. 

  28. 10.1016/0044-8486(87)90323-1 Parado-Estepa, FE D , RP Ferraris, JM Lardja and EG de Jesus. tuations in environmental salinity. Aquaculture64:175-184. 

  29. 10.1016/j.aquaculture.2003.12.001 PalaciosE , A Bonilla, D Luna and IS Racotta. 2004. Survival, Na+/K+-ATPase and lipid responses to salinity challenge in fed and starved white pacific shrimp ( Litopenaeus vannamei ) postlarvae . Aquaculture234:497-511. 

  30. 10.1067/mem.2001.119455 PurssellRA , M Pudek, J Brubacher and RB Abu-Laban. 2001. Derivation and validation of a formula to calculate the contribution of ethanol to the osmolar gap . Ann. Emerg. Med.38:653-659. 

  31. 10.1111/j.1749-7345.1998.tb00658.x RacottaIS and E Palacios. 1998. Hemolymph metabolic variables in response to experimental manipulation stress and serotonin injection in Penaeus vannamei . J. World Aquacult. Soc.29:351-356. 

  32. 10.1016/S1095-6433(00)00171-9 RacottaIS and R Hern ndez-Herrera. 2000. Metabolic responses of the white shrimp, Penaeus vannamei , to ambient ammonia . Comp. Biochem. Physiol. A-Mol. Integr. Physiol.125:437-443. 

  33. 10.1163/20021975-99990183 RosasC , N L pez, P Mercado and E Mart nez. 2001. Effect of salinity acclimation on oxygen consumption of juveniles of the white shrimp Litopenaeus vannamei . J. Crustac. Biol.21:912-922. 

  34. 10.1016/j.aquaculture.2006.10.011 RoyLA , DA Davis, IP Saoud and RP Henry. 2007. Effects of varying levels of aqueous potassium and magnesium on survival, growth, and respiration of the Pacific whit shrimp, Litopenaeus vannamei, reared in low salinity waters. Aquculture262:461-469. 

  35. 10.1111/j.1753-5131.2010.01036.x RoyLA , DA Davis, P Saoud, CA Boyd, HJ Pine and CE Boyd. 2010. Shrimp culture in inland low salinity waters . Aquaculture2:191-208. 

  36. SamochaTM , AL Lawrence and D Pooser. 1998. Growth and survival of juvenile Penaeus vannamei in low salinity water in a semi-closed recirculating system. Isr. J. Aquac.-Bamidgeh50:55-59. 

  37. 10.1300/J028v12n01_01 SamochaTM , L Hamper, CR Emberson, DA Davis, D McIntosh, AL Lawrence and P Van Wyk. 2002. Review of some recent developments in sustainable shrimp farming practicesin Texas, Arizona, and Florida . J. Appl. Aquaculture12:1-30. 

  38. 10.1016/S0044-8486(02)00418-0 SaoudIP , DA Davis and DB Rouse. 2003. Suitability studies of inland well waters for Litopenaeus vannamei culture . Aquaculture217:373-383. 

  39. TeshimaS. 1982. Sterol metabolism. In: Proceedings of the Second International Conference on Aquaculture Nutrition: Biochemical and physiological approaches to shellfish nutrition (GD Pruder, GA Lang, DE Conklin eds.), Baton Rouge, Louisiana. pp. 205-215. 

  40. 10.1046/j.1365-2095.1997.00097.x TeshimaS , M Ishikawa, S Kosio and A Kanazawa. 1997. Assessment of cholesterol requirements in the prawn, Penaeus japonicus . Aquac. Nutr.3:247-253. 

  41. 10.1111/j.1749-7345.1998.tb00659.x van HamEH and MR Hall. 1998. The effects of prophylactic formalin bath treatment on blood glucose in the giant tiger prawn Penaeus monodon . J. World Aquacult. Soc.29:357-364. 

  42. 10.1016/0300-9629(74)90559-3 WhitneyJO . 1974. The effect of external salinity upon lipid synthesis in the blue crab Callinectes sapidus and in the spider crab Libinia emerginata . Comp. Biochem. Physiol . A-Physiol.49:433-440. 

저자의 다른 논문 :

LOADING...

관련 콘텐츠

오픈액세스(OA) 유형

BRONZE

출판사/학술단체 등이 한시적으로 특별한 프로모션 또는 일정기간 경과 후 접근을 허용하여, 출판사/학술단체 등의 사이트에서 이용 가능한 논문

저작권 관리 안내
섹션별 컨텐츠 바로가기

AI-Helper ※ AI-Helper는 오픈소스 모델을 사용합니다.

AI-Helper 아이콘
AI-Helper
안녕하세요, AI-Helper입니다. 좌측 "선택된 텍스트"에서 텍스트를 선택하여 요약, 번역, 용어설명을 실행하세요.
※ AI-Helper는 부적절한 답변을 할 수 있습니다.

선택된 텍스트

맨위로