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미토콘드리아 기능을 통해 내인성 글루탐산이 신경세포 생존에 미치는 영향
Endogenous glutamate enhances survival rates of neurons via activating mitochondrial signalings in hippocampal neuron 원문보기

The Journal of Medicine and Life Science = 의생명과학, v.15 no.2, 2018년, pp.67 - 71  

노진우 (제주대학교 의학전문대학원 생리학교실) ,  김혜지 (제주대학교 의학전문대학원 생리학교실) ,  은수용 (제주대학교 의학전문대학원 생리학교실) ,  강문석 (보타메디) ,  정성철 (제주대학교 의학전문대학원 생리학교실) ,  양윤실 (한국 뇌연구원)

Abstract AI-Helper 아이콘AI-Helper

Neuronal excitotoxicity induces mitochondrial dysfunction and the release of proapoptotic proteins. Excitotoxicity, the process by which the overactivation of excitatory neurotransmitter receptors leads to neuronal cell death. Neuronal death by excitotoxicity was related to neuronal degenerative dis...

주제어

AI 본문요약
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문제 정의

  • 여러 연구에서 신경세포 외부에 고농도의 포타슘 이온을 처리하였을 때 전압 의존적 포타슘 이온통로의 포타슘이온 전도도가 떨어지고 신경세포내의 포타슘이온 농도 증가가 유발되어 신경세포의 탈분극을 유발하게 되고, 결국 내인성 글루탐산의 분비가 유도됨을 확인하였다7,8). 따라서 본 연구에서는 신경세포의 흥분독성을 유발한 후 신경세포의 생존율과 신경세포의 형태에 어떠한 영향을 미치는지를 확인하였다.
  • 여러 연구에서 신경세포의 세포사멸과 생존에 NMDA 수용체가 중요한 역할을 하는 것으로 밝혀졌다. 따라서 이러한 내인성 글루탐산에 의해 활성화되는 NMDA 수용체를 차단하여 신경세포의 생존율에 어떠한 영향을 주는지 확인하였다. Figure 1에서 NMDA 수용체(APV)를 차단하였을 때 내인성 글루탐산에 의한 생존율 증가 효과를 막지 못했다 (Fig.
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질의응답

핵심어 질문 논문에서 추출한 답변
해마란? 해마는 척추동물 뇌의 중요한 요소 중의 하나로 대뇌변연계에 속하여 있다. 해마는 대뇌 피질과 밀접하게 연결되어 있으며 학습과 장기·단기기억, 공간지각 능력 등 중요한 역할을 하며, CA1, CA3, 치아이랑세포 등으로 구성되어 있다.
해마는 어디에 속해있는가? 해마는 척추동물 뇌의 중요한 요소 중의 하나로 대뇌변연계에 속하여 있다. 해마는 대뇌 피질과 밀접하게 연결되어 있으며 학습과 장기·단기기억, 공간지각 능력 등 중요한 역할을 하며, CA1, CA3, 치아이랑세포 등으로 구성되어 있다.
신경세포의 세포사멸과 생존에 NMDA 수용체의 주요한 역할로 알 수 있는 사실은? 여러 연구에서 신경세포의 세포사멸과 생존에 NMDA 수용체가 중요한 역할을 하는 것으로 밝혀졌다. 따라서 이러한 내인성 글루탐산에 의해 활성화되는 NMDA 수용체를 차단하여 신경세포의 생존율에 어떠한 영향을 주는지 확인하였다. Figure 1에서 NMDA 수용체(APV)를 차단하였을 때 내인성 글루탐산에 의한 생존율 증가 효과를 막지 못했다 (Fig.
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참고문헌 (11)

  1. Zeng YS, Xu ZC. Co-existence of necrosis and apoptosis in rat hippocampus following transient forebrain ischemia. Neurosci Res 2000;37:113-25. 

  2. Gogvadze V, Robertson JD, Zhivotovsky B, Orrenius S. Cytochrome C release occurs via Ca2-dependent and Ca2-independent mechanisms that are regulated by Bax. J Biol Chem 2001;276:19066-71. 

  3. Alano CC, Beutner G, Dirksen RT, Gross RA, Sheu SS. Mitochondrial permeability transition and calcium dynamics in striatal neurons upon intense NMDA receptor activation. J Neurochem 2002;80:531-8. 

  4. Schinder AF, Olson EC, Spitzer NC, Montal M. Mitochondrial dysfunction is a primary event in glutamate neurotoxicity. J Neurosci 1996;16:6125-33. 

  5. Karbowski M, Youle RJ. Dynamics of mitochondrial morphology in healthy cells and during apoptosis. Cell Death Differ 2003;10:870-80. 

  6. Kroemer G, Reed JC. Mitochondrial control of cell death. Nat Med 2000;6:513-9. 

  7. Nicholls DG, Budd SL. Mitochondria and neuronal survival. Physiol Rev 2000;80:315-60. 

  8. Pivovarova NB, Hongpaisan J, Andrews SB, Friel DD. Depolarization-induced mitochondrial Ca accumulation in sympathetic neurons: spatial and temporal characteristics. J Neurosci 1999;19:6372-84. 

  9. Li Z, Okamoto KI, Hayashi Y, Sheng M. The importance of dendritic mitochondria in the morphogenesis and plasticity of spines and synapses. Cell 2004;119,:873-87. 

  10. Pozzo-Miller LD, Pivovarova NB, Leapman RD, Buchanan RA, Reese TS, Andrews SB. Activity-dependent calcium sequestration in dendrites of hippocampal neurons in brain slices. J Neurosci 1997;17:8729-38. 

  11. Mattson MP, Zhang Y, Bose S. Growth factors prevent mitochondrial dysfunction, loss of calcium homeostasis, and cell injury, but not ATP depletion in hippocampal neurons deprived of glucose. Exp Neurol 1993;121:1-13. 

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