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울금(Curcuma longa L.) 추출물의 산화억제 및 질소산화물 소거활성
Evaluation of Oxidation Inhibition and Nitrogen Oxide Scavenging Activity from Curcuma longa L. Extracts 원문보기

Journal of the Korean Applied Science and Technology = 한국응용과학기술학회지, v.36 no.1, 2019년, pp.13 - 22  

오다영 (부산대학교 식품공학과) ,  김한수 (부산대학교 식품공학과)

초록
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울금(Curcuma longa L.)의 산화억제 및 질소산화물 소거활성 등 기능성 소재로서 활용 가능성을 검토한 결과, 프로안토시아니딘(proanthocyanidin) 함량은 $69.000{\pm}2.737mg$ catechin equivalents (CE)/g dry weight으로 확인되었으며, 증류수(distilled water, DW), 70% 에탄올 및 노르말 부탄올(n-butanol)의 3가지 용매를 사용한 추출 수율은 DW (17.11%), 70% 에탄올(15.26%), 노르말 부탄올(4.12%) 순으로 관찰되었다. 총 플라보노이드(total flavonoid) 함량은 DW, 70% 에탄올 및 노르말 부탄올에서 각각 0.032, 0.512 및 2.221 mg quercetin equivalents (QE)/g의 함량으로 나타났고, 노르말 부탄올에서는 유의적인 차이를 보이며 높게 관찰되었다(p<0.05). Nitric oxide (NO) 라디칼 소거 활성은 농도 별(0.2~0.8 mg/mL) DW에서 15.64~26.20%, 70% 에탄올 10.52~20.76%, 노르말 부탄올에서 13.39~69.92%로 확인되었다. Nitrite ($NO_2$) 소거활성은 DW 및 70% 에탄올과 비교하였을 때 노르말 부탄올에서 강한 $NO_2$ 소거활성을 보였다. ${\beta}$-carotene 탈색 저해활성은 DW에서 8.81~25.93%, 70% 에탄올 1.20~20.20%, 노르말 부탄올 12.08~43.93%로 나타났다. 지질과산화 저해활성은 DW, 70% 에탄올 및 노르말 부탄올에서 각각 5.60~27.54%, 37.78~50.79% 및 41.79~46.39%로 동정되었다. 이에, 천연 항산화제 등 기능성 소재로서의 활용 가능성이 있을 것으로 사료된다.

Abstract AI-Helper 아이콘AI-Helper

The aim of the present investigation was to assess the oxidation inhibition by nitrogen oxide scavenging activity and physiological activities. Bioactive compound of proanthocyanidin $69.000{\pm}2.737mg$ catechin equivalents (CE)/g dry weight. Antioxidant effects (nitric oxide radical sca...

주제어

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AI 본문요약
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문제 정의

  • 이에 본 연구는 울금의 생리활성물질과 증류수(distilled water, DW), 70% 에탄올 및 노르말부탄올(n-butanol) 용매 추출물의 총 플라보노이드(total flavonoid) 함량과 산화억제 활성(β-carotene bleaching assay), 질소산화물 소거활성(nitric oxide scavenging activity 및 nitrite scavenging activity), 지질과산화 저해활성(lipid peroxidation inhibition)을 통하여 바이오헬스 기능성 식품소재 등 울금 활용의 기초자료를 제시하고자 실험을 행하였다.
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질의응답

핵심어 질문 논문에서 추출한 답변
울금이란 무엇인가? 울금(Curcuma longa L.)은 생강과에 속하는 다년생 숙근성 초본식물로 오랜 기간 동안 향신료로 이용되고, 질병 치료제로 알려져 있다[7,8]. 울금은 신장, 간장, 심장, 신경 및 비뇨기계 등의 보호작용[9]과 항염증, 항암, 산화억제 및 간 보호 기능 등의 효과가 있는 것으로 보고되어져 있다[10].
생체 내 산화억제 효소의 역할은 무엇인가? 활성산소종(reactive oxygen species, ROS)에 의한 산화적 스트레스(oxidative stress)가 암 발생은 물론 종양, 심장순환계질환(coronary heart disease, CHD) 및 퇴행성 질환인 류마티스 관절염 등과 관련되는 것으로 알려져 있어, 산화억제물질을 규명하는 것은 중요한 의미를 지닌다고 한다[1,2]. 생체 내 산화억제 효소로 superoxide dismutase (SOD), catalase (CAT), glutathione peroxidase (GOX)와 식품 또는 보충제로 섭취되는 비타민 E, 비타민 C, 카로티노이드(carotenoid), 미량금속(Se, Mn, Zn), 플라보노이드(flavonoid), 다불포화지방산(ω-3 및 ω-6 지방산) 등이 있으며, 라디칼(radical)의 연쇄 반응을 차단해주거나 파괴시켜 산화적 스트레스를 막아주는 기전으로 보고되어 있다[3,4]. 과일 및 야채에 많이 함유되어 있는 폴리페놀 화합물(polyphenolics)은 유리 라디칼(free radical) 소거 활성을 가지며[5], 항노화, 항고혈압 및 항당뇨 등의 작용이 있다고 한다[6].
울금의생리활성물질이 가져다 주는 이점은 무엇인가? 플라보노이드는 flavonols, flavones, flavan-3-ols,flavanones, 안토시아니딘(anthocyanidins), 프로안토시아니딘(proanthocyanidin) 및 isoflavones 등이 있으며 활성산소 제거능과 항염증, 항암, 심혈관계질환 및 신경계 보호 기능이 있다고 한다[13]. 메타분석(meta-analysis)에서[14] 항산화성 생리활성물질 섭취는 일중항산소 제거 등으로 암 발생 위험과 각종 질환의 예방과 개선에 도움을 주는 것으로 보고하였다. 이에 본 연구는 울금의 생리활성물질과 증류수(distilled water, DW), 70% 에탄올 및 노르말부탄올(n-butanol) 용매 추출물의 총 플라보노이드(total flavonoid) 함량과 산화억제 활성(β-carotene bleaching assay), 질소산화물 소거활성(nitric oxide scavenging activity 및 nitrite scavenging activity), 지질과산화 저해활성(lipid peroxidation inhibition)을 통하여 바이오헬스 기능성 식품소재 등 울금 활용의 기초자료를 제시하고자 실험을 행하였다.
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참고문헌 (35)

  1. K. Bagchi, S. Puri, "Free radicals and antioxidants in health and disease: a review", East. Mediterr. Health J., Vol.4, No.2 pp. 350-360, (1998). 

  2. L. Barros, M. J. Ferreira, B. Queiros, I. C. Ferreira, P. Baptista, "Total phenols, ascorbic acid, ${\beta}$ -carotene and lycopene in Portuguese wild edible mushrooms and their antioxidant activities", Food Chem., Vol.103, No.2 pp. 413-419, (2007). 

  3. R. K. Gupta, A. K. Patel, N. Shah, A. K. Chaudhary, U. K. Jha, U. C. Yadav, P. K. Gupta, U. Pakuwal, "Oxidative stress and antioxidants in disease and cancer", Asian Pac. Cancer Prev., Vol.15, No.11 pp. 4405-4409, (2014). 

  4. V. Pandhair, B. S. Sekhon, "Reactive oxygen species and antioxidants in plants: an overview", J. Plant Biochem. Biotechnol., Vol.15, No.2 pp. 71-78, (2006). 

  5. E. Herrera, R. Jimenez, O. I. Aruoma, S. Hercberg, I. Sanchez-Garcia, C. Fraga, "Aspects of antioxidant foods and supplements in health and disease", Nutr. Rev., Vol.67, No.1 pp. S140-S144, (2009). 

  6. Y. J. Lee, E. O. Kim, S. W. Choi, "Isolation and identification of antioxidant polyphenolic compounds in mulberry (Morus alba L.) seeds", J. Korean Soc. Food Sci. Nutr., Vol.40, No.4 pp. 517-524, (2011). 

  7. C. A. C. Araujo, L. L. Leon, "Biological activities of Curcuma longa L.", Mem. Inst. Oswaldo Cruz, Vol.96, No.5 pp. 723-728, (2001). 

  8. R. Mohebbati, A. Anaeigoudari, M. R. Khazdair, "The effects of Curcuma longa and curcumin on reproductive systems", Endocrine Regulations, Vol.51, No.4 pp. 220-228, (2017). 

  9. S. Senan, D. Kizhakayil, T. E. Sheeja, B. Sasikumar, A. I. Bhat, V. A. Parthasarathy, "Novel polymorphic microsatellite markers from turmeric, Curcuma longa L. (Zingiberaceae)", Acta Bot. Croat., Vol.72, No.2 pp. 407-412, (2013). 

  10. J. S. Yook, M. Kim, S. J. Lee, J. U. Choi, Y. S. Cha, "Improvement effect of artificial rice containing curcuma longa L. extract on lipid parameters in C57BL/6J mice", J. Korean Soc. Food Sci. Nutr., Vol.44, No.8 pp. 1114-1120, (2015). 

  11. E. Y. Sukandar, H. Permana, I. K. Adnyana, J. I. Sigit, R. A. Ilyas, P. Hasimun, D. Mardiyah, "Clinical study of turmeric (Curcuma longa L.) and garlic (Allium sativum L.) extracts as antihyperglycemic and antihyperlipidemic agent in type-2 diabetes-dyslipidemia patients", Intern. J. Pharmacol., Vol.6, No.4 pp. 456-463, (2010). 

  12. Y. Hu, J. Zhang, W. Kong, G. Zhao, M. Yang, "Mechanisms of antifungal and anti-aflatoxigenic properties of essential oil derived from turmeric (Curcuma longa L.) on Aspergillus flavus", Food Chem., Vol.220, pp. 1-8, (2017). 

  13. W. Bai, C. Wang, C. Ren, "Intakes of total and individual flavonoids by US adults", Int. J. Food Sci. Nutr., Vol.65, No.1 pp. 9-20, (2014). 

  14. H. D. Woo, J. Kim, "Dietary flavonoid intake and smoking-related cancer risk: a meta-analysis", PLos One, Vol.8, No.9 pp. e75604-e75616, (2013). 

  15. L. G. Butler, M. L. Price, J. E. Brotherton, "Vanillin assay for proanthocyanidins (condensed tannins): modification of the solvent for estimation of the degree of polymerization", J. Agric. Food Chem., Vol.30, No.6 pp. 1087-1089, (1982). 

  16. C. C. Chang, M. H. Yang, H. M. Wen, J. C. Chern, "Estimation of total flavonoid content in propolis by two complementary colorimetric methods", J. Food Drug Anal., Vol.10, No.3 pp. 178-182, (2002). 

  17. A. Kumaran, R. J. Karunakaran, "Nitric oxide radical scavenging active components from Phyllanthus emblica L.", Plant Foods Hum. Nutr., Vol.61, No.1 pp. 1-5, (2006). 

  18. D. Choi, K. A. Cho, M. S. Na, H. S. Choi, Y. O. Kim, D. H. Lim, S. J. Cho, H. Cho, "Effect of bamboo oil on antioxidative activity and nitrite scavenging activity", J. Ind. Eng. Chem., Vol.14, No.1 pp. 765-770, (2008). 

  19. H. Takada, K. Kokubo, K. Matsubayashi, T. Oshima, "Antioxidant activity of supramolecular water-soluble fullerenes evaluated by ${\beta}$ -carotene bleaching assay", Biosci. Biotechnol. Biochem., Vol.70, No.12 pp. 3088-3093, (2006). 

  20. N. Siriwardhana, K. W. Lee, Y. J. Jeon, S. H. Kim, J. W. Haw, "Antioxidant activity of Hizikia fusiformis on reactive oxygen species scavenging and lipid peroxidation inhibition", Food Sci. Technol. Int., Vol.9, No.5 pp. 339-346, (2003). 

  21. M. Abirami, U. Kanagavalli, "Cardioprotective effect of grapeseed proanthocyanidin on doxorubicin induced myocardial injury in rats", Int. J. Pharm. Life Sci., Vol.4, No.1 pp. 2288-2293, (2013). 

  22. X. Wu, L. Gu, R. L. Prior, S. McKay, "Characterization of anthocyanins and proanthocyanidins in some cultivars of Ribes, Aronia, and Sambucus and their antioxidant capacity", J. Agric. Food Chem., Vol.52, No.26 pp. 7846-7856, (2004). 

  23. B. O. Mbaebie, H. O. Edeoga, A. J. Afolayan, "Phytochemical analysis and antioxidants activities of aqueous stem bark extract of Schotia latifolia Jacq", Asian Pac. J. Trop. Biomed., Vol.2, No.2 pp. 118-124, (2012). 

  24. L. Bravo, "Polyphenols: chemistry, dietary sources, metabolism, and nutritional significance", Nutr. Rev., Vol.56, No.11 pp. 317-333, (1998). 

  25. R. A. Dixon, D. Y. Xie, S. B. Sharma, "Proanthocyanidins a final frontier in flavonoid research?", New Phytol., Vol.165, No.1 pp. 9-28, (2005). 

  26. J. A. Kennedy, G. P. Jones, "Analysis of proanthocyanidin cleavage products following acid-catalysis in the presence of excess phloroglucinol", J. Agric. Food Chem., Vol.49, No.4 pp. 1740-1746, (2001). 

  27. E. M. Tanvir, M. Hossen, M. Hossain, R. Afroz, S. H. Gan, M. Khalil, N. Karim, "Antioxidant properties of popular turmeric (Curcuma longa) varieties from Bangladesh", J. Food Qual., Vol.2017, pp. 1-8, (2017). 

  28. J. M. Geleijnse, P. C. Hollman, "Flavonoids and cardiovascular health: which compounds, what mechanisms?", Am. J. Cin. Nutr., Vol.88, No.1 pp. 12-13, (2008). 

  29. Y. Sueishi, M. Hori, M. Kita, Y. Kotake, "Nitric oxide (NO) scavenging capacity of natural antioxidants", Food Chem., Vol.129, No.3 pp. 866-870, (2011). 

  30. M. W. Byun, H. S. Yook, K. S. Kim, C. K. Chung, "Effects of gamma-irradiation on physiological effectiveness of Korean medicinal herbs", Rad. Physics Chem., Vol.54, No.3 pp. 291-300, (1999). 

  31. J. H. Han, H. K. Moon, S. K. Chung, W. W. Kang, "Comparison of physiological activities of radish bud (Raphanus sativus L.) according to extraction solvent and sprouting period", J. Korean Soc. Food Sci. Nutr., Vol.44, No.4 pp. 549-556, (2015). 

  32. J. S. Choi, S. H. Park, J. H. Choi, "Nitrite scavenging effect by flavonoids and its structure-effect relationship", Arch. pharm. Res., Vol.12, No.1 pp. 26-33, (1989). 

  33. D. Pastore, D. Trono, L. Padalino, S. Simone, D. Valenti, N. Di Fonzo, S. Passarella, "Inhibition by ${\alpha}$ -tocopherol and L-ascorbate of linoleate hydroperoxidation and ${\beta}$ -carotene bleaching activities in durum wheat semolina", J. Cereal Sci., Vol.31, No.1 pp. 41-54, (2000). 

  34. I. MikaMi, M. YaMaguChi, H. Shinmoto, T. Tsushida, "Development and validation of a microplate-based ${\beta}$ -carotene bleaching assay and comparison of antioxidant activity (AOA) in several crops measured by ${\beta}$ -carotene bleaching, DPPH and ORAC assays", Food Sci. Technol. Res., Vol.15, No.2 pp. 171-178, (2009). 

  35. P. Podloucka, K. Berka, G. Fabre, M. Paloncyova, J. L. Duroux, M. Otyepka, P. Trouillas, "Lipid bilayer membrane affinity rationalizes inhibition of lipid peroxidation by a natural lignan antioxidant", J. Phys. Chem. B., Vol.117, No.17 pp. 5043-5049, (2013). 

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