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삼내자 열수추출물의 항산화 및 항염 효과
Anti-inflammatory and Antioxidant Effects of Hot Water Extracts from Kaempferia Galanga L 원문보기

융합정보논문지 = Journal of Convergence for Information Technology, v.9 no.6, 2019년, pp.218 - 226  

진정원비너스 (서경대학교 일반대학원 미용예술학과) ,  이지안 (서경대학교 일반대학원 미용예술학과)

초록
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본 연구의 목적은 삼내자(Kaempferia Galanga) 열수추출물의 항산화, 세포독성, 항염 효능을 조사하여 화장품 성분으로서 활용 가능성을 알아보고자 하였다. 항산화 활성 평가를 위해 DPPH, ABTS 라디컬 소거능 활성, FRAP 환원력, 총폴리페놀 함량을 측정하였다. 쥐의 대식세포인 RAW264.7 세포를 대상으로 MTT assay를 수행하여 세포독성을 확인하였다. 항염 효능을 알아보기 위해 LPS로 유도된 RAW264.7 세포에서 nitric oxide(NO), $TNF-{\alpha}$ 분비 및 iNOS, $TNF-{\alpha}$ mRNA 발현 수준을 조사하였다. 그 결과 DPPH와 ABTS 라디칼 소거능은 농도 의존적으로 라디칼 소거 활성이 증가하였다. FRAP 값은 5 mg/mL에서 24.5 uM로 가장 높게 나타났으며, 총폴리페놀 함량은 $1.28{\pm}0.064mg\;GAE/g$로 나타났다. KG 추출물 농도 0.625~2.5 mg/mL에서 세포독성은 보이지 않았다. 또한 RAW264.7 세포에서 LPS 유도에 의한 NO, $TNF-{\alpha}$ 분비 그리고 iNOS, $TNF-{\alpha}$의 mRNA 발현이 KG 추출물에 의해 유의하게 감소하였다. 이러한 결과는 삼내자 열수추출물이 안전하고 효과적인 화장품 원료로서의 활용 가능성이 있음을 보여준다.

Abstract AI-Helper 아이콘AI-Helper

In this study, we investigated the possibility of Kaempferia Galanga(KG) hot water extract on the antioxidant, cytotoxic and anti-inflammatory efficacy as a cosmetic ingredient. Antioxidant effects were evaluated based on DPPH and ABTS radical scavenging activity, FRAP assay, and total polyphenol co...

주제어

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AI 본문요약
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문제 정의

  • 따라서 본 연구에서는 삼내자 열수추출물을 이용하여 항산화, 세포독성, 항염 효능을 조사하여 천연식물 원료의 화장품 소재로서의 활용가능성을 확인하고자 하였다.
  • 본 연구는 삼내자 열수추출물의 화장품 원료로서의 가능성을 조사하기 위해 삼내자 열수추출물을 이용하여 항산화 활성, 세포독성, 항염 활성을 평가하였다. DPPH 또는 ABTS 라디컬 소거능과 FRAP 환원력을 이용한 항산화 활성 연구 결과 추출물 농도 의존적으로 삼내자 열수추출물의 항산화 효능이 증가하는 것으로 나타났다.
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질의응답

핵심어 질문 논문에서 추출한 답변
삼내자 (Kaempferia Galanga L.)는 무엇인가? 삼내자 (Kaempferia Galanga L.)는 생강과(Plant Zingiberaceae)에 속하는 다년생 열대초본식물로 뿌리줄기인 근경(rhizome, 根莖)부위가 주로 열대아시아 요리에 첨가 되어 식용 또는 약용으로도 널리 사용되고 있다[11,12]. 삼내자는 헥산(Hexane), 에탄올 또는 메탄올 등의 다양한 추출법을 이용한 여러 가지 미생물에 대한 항균활성[13], 항암[14-16], 미백 효능[17-19]에 관한 연구가 활발히 이루어지고 있다.
삼내자 열수추출물이 화장품 천연 원료로서의 어떠한 기능을 포함하고 있는가? 7 세포에 삼내자 열수추출물을 처리한 결과 LPS에 의해 유도된 NO 생성, iNOS 단백질 및 TNF-α 분비가 감소하였으며, 이러한 결과는 추출물 처리에 따른 세포 내 iNOS 또는 TNF-α mRNA 발현억제 기전을 통해 나타나는 것을 확인하였다. 따라서 삼내자 열수추출물은 세포 안정성과 항산화 및 항염 기능의 유효성분을 포함하여 화장품 천연 원료로서의 활용 가능성이 높을 것으로 기대된다.
삼내자(Kaempferia Galanga)의 항산화 활성, 항염 효능을 입증할 수 있는 근거는 무엇인가? 7 세포에서 nitric oxide(NO), $TNF-{\alpha}$ 분비 및 iNOS, $TNF-{\alpha}$ mRNA 발현 수준을 조사하였다. 그 결과 DPPH와 ABTS 라디칼 소거능은 농도 의존적으로 라디칼 소거 활성이 증가하였다. FRAP 값은 5 mg/mL에서 24.
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참고문헌 (36)

  1. Y. M. Seo, L. Shuai & E. K. Kim. (2015). The Influence of National image, Brand Image and Countryof-Origin Image on Purchase attitude and Purchase Intention-Focus on the purchase of korean cosmetics which applied a high and/or convergene technology in chinese consumers. Journal of Digital Convergence, 13(6), 69-79. 

  2. M. R. Yeom, J. O. Park & D. Y. Jung. (2016). Analysis of Cosmetics App Smart UI convergence Design in Mobile Environments. Journal of the Korea Conergence Society, 7(2), 13-17. 

  3. L. Baumann. (2007). Skin ageing and its treatment. Journal of Pathology, 211, 241-251. 

  4. H. R. Park & K. Y. Kim. (2017). Inhibition Effect of $TNF-{\alpha}$ , $IL-1{\alpha}$ Production $TNF-{\alpha}$ , $IL-1{\alpha}$ mRNA Expression from Chenopodium album Ethanol Extract, Journal of the Korean Society of Cosmetology, 23(5), 971-977. 

  5. J. H. Seo, Y. J. Lee, Y. I. Jo, J. Y. Ko, M. J. Mun, K. H. Park & S. E. Choi. (2018). Anti-fungal, anti-oxidant, and anti-inflammatory effects of supercritical fluid extracts from Ulmus daidiana. Journal of the Korea Convergence Society, 9(8), 225-233. 

  6. H. J. Kim. (2016). Convergence study on the antioxidant effect of crude extracts of Nelumbo nucifera Gaertner. Journal of the Korea Convergence Society, 7(3), 53-58. 

  7. Y. R. Wang, E. S. Kim & J. A. Lee. (2018). The study of Antioxidant and Anti-inflammatory Effects of Notoginseng Root (NGR) Hot Water Extracts. Journal of the Korean Society of Cosmetology, 24(5), 1014-1020. 

  8. M. J. Kim, J. H. Kim, S. H. Lee, E. J. Cho & H. Y. Kim. (2018). Determination of Radical Scavenging Activity of Aster yomena (Kitam.) Honda. Journal of the Korea Academia-Industrial, 19(9), 402-407. 

  9. J. H. Kim & D. Y. Kim. (2017). Anti-inflammatory Effect of Ethanol Extracts from Dioscorea bulbifera. Journal of the Korean Society of Beauty And Art, 17(1), 91-102. 

  10. K. N. Min, G. H. lee, S. J. Park & T. B. Choe. (2019). Physiological activity and efficacy of cosmetic products in bio-converted soybean embryo extract. Journal of the Korea Convergence Society, 10(3), 211-220. 

  11. M. I. Umar, M. Z. B. Asmawi, A. Sadikun, R. Altaf & M. A. Iqbal. (2011). Phytochemistry and medical properties of Kaempferia galanga L. (Zingiberaceae) extracts. African journal of Pharmacology, 5(14), 1638-1647. 

  12. H. J. Shetu, K. T. Trisha, S. A. Sikta, R. Anwar, S. S. B. Rashed & R. R. Dash. (2018). Pharmacological importance of Kaempferia galanga (Zingiberaceae): A mini review. International Journal of Research in Pharmacy and Pharmaceutical Sciences, 3(3), 32-39. 

  13. C. Mekseepralard, N. Kamkaen, & J. M. Wilinson. (2010). Antimicrobial and Antioxidant Activities of Traditional Thai Herbal Remedies for Aphthous Ulcers. Phytotherapy Research, 24, 1514-1519. 

  14. A. Amuanuta, T. Plengsuriyakarn, & K. Na-Bangchang. (2017). Anticholangiocarcinoma activity and toxicity of the Kaemphferia galanga Linn. Rhizome ethanolic extract. BMC Complementary and Alternative Medicine, 17(1), 1-11. 

  15. P. C. Jagadish, K. P. latha, J. Mudgal, & G. K. Nampurath. (2016). Extraction, characterization and evaluation of Kaemphferia galanga L. (Zingiberaceae) rhizome extracts against acute and chronic inflammation in rats. Journal of Ethnopharmacology, 194, 434-439. 

  16. M. I. Umar, M. Z. Asmawi, A. Sadikun, A. M. S. A. Majid, F. S. R. Al-Suede, L. E. A. Hassan, R. Altaf & M. B. K. Ahamed. (2014). Ethyl-p-methoxycinnamte isolated from kaempferia galanga inhibits inflammation by suppressing interleukin-1, tumor necrosis factor- ${\alpha}$ , and angiogenesis by blocking endothelial functions. CLINICS, 69(2), 134-144. 

  17. M. H. In, B. K. Jeon, Y. J. Mun & W. H. Woo. (2016). Hexane extract of Kaempferia galanga L. suppresses melanogenesis. Journal of physiology & pathology in Korean Medicine, 30(1), 47-53. 

  18. H. J. Ko et al. (2014). Hypopigmentary effects of ethyl P-methoxycinnamate isolated from Kaempferia galanga. Phytotherapy Research, 28, 274-279. 

  19. J. W. Yoon, J. M. Han, H. J. Yoon & W. S. Ko. (2013). Inhibitory effects of methanol extract of Kaempferia galanga on melanogenesis in B16/F10 melanoma cells. The Journal of Korean Medical Ophthalmology & Otolaryngology & Dermatology, 26(1), 1-18. 

  20. A. M. Vittalrao, T. Shanbhag, M. Kumari K, K. L. Bairy & S. Shenoy. (2011). Evaluation of antiinflammatory and analgesic activities of alcoholic extract of Kaempferia galanga in rats. Indian Journal of Physiology and Pharmacology, 55(1), 13-24. 

  21. H. Riasari, R. Rachmaniar & Y. Febriani. (2016). Effectiveness of anti-inflammatory plaster from kencur(Kaempferia galanga L.) rhizome ethanol extract. International Journal Pharmaceutical Sciences and Research, 7(4), 1746-1749. 

  22. Y. Nie, L. K. Liana & E. Evacuasiany. (2012). The effect of kencur's rhizome ethanol extract(Kaempferia galanga L.) against gastric mucosal to swiss webster mice in induced by asetosal. Journal Medika Planta, 2(1), 77-84. 

  23. M. S. Blois. (1958). Antioxidant determinations by the use of a stale free radical. Nature, 181, 1199-1200. 

  24. R. Re, N. Pellegrini, A. Proteggente, A. Pannala, M. Yang & C. R. Evans. (1999). Antioxidant activity applying an improved ABTS radical cation decolorization assay. Free Radical Biology and Medicine, 26(9-10), 1231-1237. 

  25. I. F. Benzie & J. J. Strain. (1996). The ferric reducing ability of plasma(FRAP) as measurement of "antioxidant power" The FRAP assay. Analytical Biochemistry, 239, 70-6. 

  26. AOAC. (1980). Official Methods of Analysis. 13th ed., Association of Official Analytical Chemists, Washington D.C, USA 376-384. 

  27. A. Murakami et al. (2000). Modifying effects of carotenoids on superoxide and nitric oxide generation from stimulated leukocytes. Cancer Letters, 149, 115-123. 

  28. W. J. Hossen, W. W. Yang, D. W. Kim, A. Aravinthan, J. H. Kim & J. Y. Cho, (2017). Thymoquinone: An IRAK1 inhibitor with in vivo anti-inflammatory activities. Scientific reports, 7, 42995. 

  29. M. J. Kim, J. H. Kim, S. Lee, E. J. Cho & H. Y. Kim. (2018). Determination of Radical Scavenging Activity of Aster yomena(Kitam.) Honda. Journal of the Korea Academia-Industrial, 19(9), 402-407. 

  30. E. W. C. Chan et al. (2008). Antioxidant and tyrosinase inhibition properties of leaves and rhizomes of ginger species. Food chemistry, 109, 477-483. 

  31. H. Ali, R. Yesmin, M. A. Satter, R. Habib & T. Yeasmin. (2018). Antioxidant antineoplastic activities of methanolic extract of Kaempferia galanga Linn. Rhizome against Ehrlich ascites carcinoma cells. Journal of King Saud University-Science, 30(3), 386-392. 

  32. J. S. Moon, J. H. Lee & Y. B. Kim. (2017). Study of antioxidation activity and melanocyte effect of Pueraria Lobata Root Extract. Journal of Korean Oil Chmist's Society, 34(2), 418-425. 

  33. J. M. Awika, L. W. Fooney, K. Wu, R. L. Prior & L. Cisneros-Zevallos. (2003). Screening methods to measure antioxidant activity of sorghum (Sorghum bicolor) and sorghum products. Journal of agricultural and food chemistry, 51(23), 665-6662. 

  34. E. K. Lee & S. H. Jung. (2018). Anti-inflammatory and antioxidant effect of natural herbs mixture in RAW264.7 cell line. Journal of the Korean Society of Cosmetology, 24(1), 42-50. 

  35. D. S. Lee, C. S. Yoon, Y. T. Jung, J. H. Yoon, Y. C. Kim & H. C. Oh. (2016). Marine-Derived Secondary Metabolite, Griseusrazin A, Suppresses Inflammation through Heme Oxygenase-1 Induction in Activted RAW264.7 Macrophages. Journal of Natural Products, 79(4), 1105-111. 

  36. S. H. Kim et al. (2015). The dietary flavonoid kaempferol mediated anti-inflammatory response via the Src, Syk, IRAK1, and IRAK4 molecular targets. Mediators of Inflammation, 2015, Article ID 904142, 15 pages. 

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