[국내논문]Trametes velutina JS18 유래 멜라닌 탈색 효소의 생산, 정제 및 특성 Production, Purification and Characterization of a Melanin Bleaching Enzyme from Trametes velutina JS18원문보기
삼림지역의 고목에서 분리한 JS18 균주는 합성 멜라닌을 탈색하는 세포 외 분비효소를 생산했다. JS18 균주의 internal transcribed spacer (ITS) 염기서열을 분석하고 계통학적으로 확인한 결과 본 균주는 Trametes velutina로 동정되었다. JS18 균주는 laccase 활성을 나타냈지만 manganese peroxidase 및 lignin peroxidase 활성은 나타내지 않았다. 본 균주를 회분배양한 결과 멜라닌 탈색 활성은 laccase 활성으로부터 유래하는 것으로 확인되었다. Laccase 유도인자로써 Syringic acid 및 CuSO4를 첨가하고 25℃에서 7일간 배양한 결과 배양상등액에서 98 U/ml의 laccase 활성을 나타내었다. GYP 배지에서 배양한 T. velutina의 배양상등액에서 ammonium sulfate 침전, Hi-trap Q Sepharose 컬럼 및 gel filtration을 이용하여 효소를 정제하였고, SDS-PAGE에서 약 67 kDa의 분자량을 나타내었다. 정제된 효소의 멜라닌 탈색율은 효소 단독으로는 24 시간 만에 단지 4% 만을 나타내는 반면, HBT의 존재 하에서는 80%로 향상되었다. 또한 1.5 mM HBT의 농도에서는 최대 81%의 멜라닌 탈색율을 나타내었다. 본 효소의 멜라닌 탈색에 대한 최적 pH 및 온도는 각각 5.0와 37℃를 나타내었다. 본 연구에서는 T. velutina JS18 유래 laccase가 촉매하는 멜라닌 탈색 반응에서 redox mediator로써 HBT의 적용 가능성을 확인하였다.
삼림지역의 고목에서 분리한 JS18 균주는 합성 멜라닌을 탈색하는 세포 외 분비효소를 생산했다. JS18 균주의 internal transcribed spacer (ITS) 염기서열을 분석하고 계통학적으로 확인한 결과 본 균주는 Trametes velutina로 동정되었다. JS18 균주는 laccase 활성을 나타냈지만 manganese peroxidase 및 lignin peroxidase 활성은 나타내지 않았다. 본 균주를 회분배양한 결과 멜라닌 탈색 활성은 laccase 활성으로부터 유래하는 것으로 확인되었다. Laccase 유도인자로써 Syringic acid 및 CuSO4를 첨가하고 25℃에서 7일간 배양한 결과 배양상등액에서 98 U/ml의 laccase 활성을 나타내었다. GYP 배지에서 배양한 T. velutina의 배양상등액에서 ammonium sulfate 침전, Hi-trap Q Sepharose 컬럼 및 gel filtration을 이용하여 효소를 정제하였고, SDS-PAGE에서 약 67 kDa의 분자량을 나타내었다. 정제된 효소의 멜라닌 탈색율은 효소 단독으로는 24 시간 만에 단지 4% 만을 나타내는 반면, HBT의 존재 하에서는 80%로 향상되었다. 또한 1.5 mM HBT의 농도에서는 최대 81%의 멜라닌 탈색율을 나타내었다. 본 효소의 멜라닌 탈색에 대한 최적 pH 및 온도는 각각 5.0와 37℃를 나타내었다. 본 연구에서는 T. velutina JS18 유래 laccase가 촉매하는 멜라닌 탈색 반응에서 redox mediator로써 HBT의 적용 가능성을 확인하였다.
The JS18 strain was isolated from an old tree forest and produced extracellular enzymes that decolorize synthetic melanin. Phylogenetic analysis, based on the internal transcribed spacer (ITS) sequence, indicate that JS18 belongs to the Trametes velutina species. JS18 demonstrated laccase activity b...
The JS18 strain was isolated from an old tree forest and produced extracellular enzymes that decolorize synthetic melanin. Phylogenetic analysis, based on the internal transcribed spacer (ITS) sequence, indicate that JS18 belongs to the Trametes velutina species. JS18 demonstrated laccase activity but no manganese peroxidase or lignin peroxidase activity. Batch culture indicated that the melanin decolorization activity of JS18 strain originated from the laccase. Syringic acid and CuSO4 induced maximum laccase production, yielding 98 U/ml laccase activity after cultivation for 7 days at 25℃. T. velutina secretes an extracellular laccase in GYP medium, and this enzyme was purified using (NH4)2SO4 precipitation, Hi-trap Q Sepharose columns and gel filtration. The molecular weight of the purified enzyme was estimated to be 67 kDa using sodium dodecyl sulfate polyacrylamide gel electrophoresis. This enzyme produced 80% of its melanin decolorization activity within the first 24 h of evaluation in the presence of 1-hydroxybenzotriazole (HBT), while only about 4% of the melanin was decolorized in the absence of the mediator. The greatest decolorization was observed at 1.5 mM/l HBT, which decolorized 81% of the melanin within the first 24 h. The optimum pH and temperature for this decolorization were found to be 5.0 and 37℃, respectively. Our results suggest the possibility of applying HBT induced T. velutina JS18 laccase-catalyzed melanin decolorization.
The JS18 strain was isolated from an old tree forest and produced extracellular enzymes that decolorize synthetic melanin. Phylogenetic analysis, based on the internal transcribed spacer (ITS) sequence, indicate that JS18 belongs to the Trametes velutina species. JS18 demonstrated laccase activity but no manganese peroxidase or lignin peroxidase activity. Batch culture indicated that the melanin decolorization activity of JS18 strain originated from the laccase. Syringic acid and CuSO4 induced maximum laccase production, yielding 98 U/ml laccase activity after cultivation for 7 days at 25℃. T. velutina secretes an extracellular laccase in GYP medium, and this enzyme was purified using (NH4)2SO4 precipitation, Hi-trap Q Sepharose columns and gel filtration. The molecular weight of the purified enzyme was estimated to be 67 kDa using sodium dodecyl sulfate polyacrylamide gel electrophoresis. This enzyme produced 80% of its melanin decolorization activity within the first 24 h of evaluation in the presence of 1-hydroxybenzotriazole (HBT), while only about 4% of the melanin was decolorized in the absence of the mediator. The greatest decolorization was observed at 1.5 mM/l HBT, which decolorized 81% of the melanin within the first 24 h. The optimum pH and temperature for this decolorization were found to be 5.0 and 37℃, respectively. Our results suggest the possibility of applying HBT induced T. velutina JS18 laccase-catalyzed melanin decolorization.
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문제 정의
0와 37℃를 나타내었다. 본 연구에서는 T. velutina JS18 유래 laccase가 촉매하는 멜라닌 탈색 반응에서 redox mediator로써 HBT의 적용 가능성을 확인하였다.
본 연구에서는 사람 머리카락 유래의 천연 멜라닌 및 합 성 멜라닌에 대하여 탈색 효능을 나타내는 새로운 진균류를 선별하고, 진균류가 생산하는 멜라닌 탈색효소의 생산, 정제 및 특성에 대하여 검토하였다.
5 mM CuSO4를 동시에 첨가할 경우 laccase 생산량이 매우 증가하는 것으로 보고된 바 있다[25]. 본 연구의 T. velutina JS18의 경우에도 같은 laccase inducer가 laccase 생산 유도 효과를 갖는지 확인하기 위하여 GYP 배지에 1 mM syringic acid 및 0.5 mM CuSO4를 단독 또는 동시에 첨가하고 7일 동안 배양하면서 T. velutina JS18의 배양 상 등액을 대상으로 laccase 활성을 측정하였다. 그 결과 1 mM syringic acid 및 0.
제안 방법
Laccase 유도인자 로써 Syringic acid 및 CuSO4를 첨가하고 25℃에서 7일간 배양한 결과 배양상등액에서 98 U/ml의 laccase 활성을 나타내었다. GYP 배지에서 배양한 T. velutina의 배양상등액 에서 ammonium sulfate 침전, Hi-trap Q Sepharose 컬럼 및 gel filtration을 이용하여 효소를 정제하였고, SDS-PAGE 에서 약 67 kDa의 분자량을 나타내었다. 정제된 효소의 멜 라닌 탈색율은 효소 단독으로는 24시간 만에 단지 4% 만을 나타내는 반면, HBT의 존재 하에서는 80%로 향상되었다.
0 × 105 까지 순차적으로 희석하고, ampicillin (100 μg/ ml)이 첨가된 potato dextrose agar (PDA) 평판배지 상에 접 종하여 25℃에서 3−5일간 배양하였다. 총 132종의 분리된 진균류에서 멜라닌 탈색능을 가진 균주를 선별하기 위하여 배양된 PDA 평판배지 상의 균사를 직경 5 mm의 cork borer 로 agar plug를 만들어 human hair melanin (0.6 g/l)을 첨가한 malt extract dextrose broth (MDB) 배지(glucose 4 g/l, malt extract 10 g/l, peptone 4 g/l, agar 15 g/l)에 접 종하고 25℃에서 120 rpm으로 1−2주간 배양하였다. 투명환 을 형성한 균주는 동일한 배지에 계대 배양하여 4℃에 보관 하였고, 이후 분석시험에 이용하였다.
분리된 균주를 동정하기 위하여 Internal transcribed spacer (ITS) 염기서열을 분석하였다. 분리된 균주를 Potato dextrose broth (PDB) 배지에 접종하고 25℃에서 120 rpm 으로 7−10일 동안 배양한 후, 배양액을 membrane filter (pore size, 7 μm)을 이용하여 곰팡이 균사를 거른 뒤 멸균 증 류수로 3회 반복하여 씻어 내었다.
분리된 균주를 Potato dextrose broth (PDB) 배지에 접종하고 25℃에서 120 rpm 으로 7−10일 동안 배양한 후, 배양액을 membrane filter (pore size, 7 μm)을 이용하여 곰팡이 균사를 거른 뒤 멸균 증 류수로 3회 반복하여 씻어 내었다. Genomic DNA 추출은 GenEx Genomic DNA extraction kit (Gene All, Korea)를 이용하였으며, ITS 영역의 증폭은 ITS1 (5′-TCCGTAGGT GAACCTGCGG-3′)과 ITS4 (5′-TCCTCCGCTTATTGATATGC3′) 프라이머를 사용하였다. PCR 반응은 pre-denaturation (95℃, 5 min), denaturation (94℃, 1 min), annealing (58℃, 30 sec), extension (72℃, 1 min 30 sec) 과정을 35회 실시 하고, 최종적으로 72℃, 10 min 동안 반응하여 rDNA-ITS 영역을 증폭하였다.
Genomic DNA 추출은 GenEx Genomic DNA extraction kit (Gene All, Korea)를 이용하였으며, ITS 영역의 증폭은 ITS1 (5′-TCCGTAGGT GAACCTGCGG-3′)과 ITS4 (5′-TCCTCCGCTTATTGATATGC3′) 프라이머를 사용하였다. PCR 반응은 pre-denaturation (95℃, 5 min), denaturation (94℃, 1 min), annealing (58℃, 30 sec), extension (72℃, 1 min 30 sec) 과정을 35회 실시 하고, 최종적으로 72℃, 10 min 동안 반응하여 rDNA-ITS 영역을 증폭하였다. 증폭된 PCR 산물은 1.
PCR 반응은 pre-denaturation (95℃, 5 min), denaturation (94℃, 1 min), annealing (58℃, 30 sec), extension (72℃, 1 min 30 sec) 과정을 35회 실시 하고, 최종적으로 72℃, 10 min 동안 반응하여 rDNA-ITS 영역을 증폭하였다. 증폭된 PCR 산물은 1.0% agarose 상에서 전기영동하여 UV illuminator에서 확인하였으며, Gel SV Kit (Gene All)를 이용하여 정제한 후에 pGEM-T easy vector (Promega, USA)에 cloning하여 ABI3730XL DNA analyzer (Applied Biosystems, USA)를 이용하여 분석하였다.
5 mM CuSO4, 1 mM syringic acid)가 첨가된 1 l의 GYP 배지에 접종하고 25℃에서 130 rpm으로 7일 동안 본배양하였다. 또한, 균주를 접종하지 않은 GYP 배지에 1 mM syringic acid 및 0.5 mM CuSO4를 단독 또는 동시에 첨가하고 동일조건에서 7일간 배양한 후 laccase 활성을 측정하여 대조구 값으로 설정하였다.
1 mM CuSO4) 에 녹인 후 같은 buffer로 24시간 투석하였다. 투석한 단백 질은 ÄKTAprime (GE Healthcare)을 이용하여 HiTrap Q HP column에 loading한 후 0−1.0 M의 NaCl로 농도구배를 주어 결합된 단백질을 용출하였다. 용출된 획분은 멜라닌 탈 색 활성을 측정하여 활성이 있는 획분을 모아 Amicon centricon-10 filter (Milipore)로 농축한 다음 buffer B (50 mM sodium phosphate, pH 6.
0 M의 NaCl로 농도구배를 주어 결합된 단백질을 용출하였다. 용출된 획분은 멜라닌 탈 색 활성을 측정하여 활성이 있는 획분을 모아 Amicon centricon-10 filter (Milipore)로 농축한 다음 buffer B (50 mM sodium phosphate, pH 6.0, 150 mM NaCl)로 투 석하였다. 투석한 용액은 SuperdexTM 200 column (GE Healthcare)에 로딩한 후 buffer B로 용출하고 멜라닌 탈색 활성을 측정하여 활성이 있는 획분을 모아 Amicon centricon10 filter (Milipore)로 농축하였다.
0, 150 mM NaCl)로 투 석하였다. 투석한 용액은 SuperdexTM 200 column (GE Healthcare)에 로딩한 후 buffer B로 용출하고 멜라닌 탈색 활성을 측정하여 활성이 있는 획분을 모아 Amicon centricon10 filter (Milipore)로 농축하였다. 단백질의 정제도는 SDSPAGE (10% acrylamide gel)을 통하여 확인하였고, 전기영 동 밴드는 coomassie를 사용하여 염색하였다.
투석한 용액은 SuperdexTM 200 column (GE Healthcare)에 로딩한 후 buffer B로 용출하고 멜라닌 탈색 활성을 측정하여 활성이 있는 획분을 모아 Amicon centricon10 filter (Milipore)로 농축하였다. 단백질의 정제도는 SDSPAGE (10% acrylamide gel)을 통하여 확인하였고, 전기영 동 밴드는 coomassie를 사용하여 염색하였다.
멜라닌 탈색 반응은 곰팡이 유래의 laccase [18], manganese peroxidase [15], lignin peroxidase [17] 중 한가지 효소에 의해 촉매되는 것으로 알려져 있다. T. velutina JS18의 균 사체로부터 멜라닌 탈색에 관여하는 효소를 동정하기 위하여 JS18균주를 GYP 배지에 접종하고 25℃에서 7일간 배양 한 후 배양 상등액을 대상으로 laccase, manganese peroxidase, lignin peroxidase 활성을 조사하였다. 그 결과 T.
구리 이온은 laccase의 보결분 자단(prosthetic group)으로 알려져 있고, laccase 생산에 있어 방향족 화합물은 laccase isozyme의 분비율 향상, laccase 유전자의 전사 유도, 세포 외 단백질 분해활성의 감소에 기 여하는 것으로 보고된 바 있다[25]. JS18 균주를 GYP 배지 에 laccase inducer (0.5 mM CuSO4, 1 mM syringic acid) 를 첨가하고 7일동안 배양한 후, 배양 상등액의 효소를 ammonium sulfate 침전, 음이온 교환수지 및 gel filtration chromatography을 이용하여 정제하였다. 정제된 효소를 SDS-PAGE로 확인한 결과 약 67 kDa 부근에서 밴드가 확 인되었다(Fig.
따라서, laccase와 더불어 redox mediator가 함께 존재하면 hydroxyl radical이 생성되고 이것이 nonphenolic compound까 지 산화할 수 있기 때문에 난분해성 물질의 분해 효율이 상승할 수 있다. T. velutina JS18로부터 정제한 효소에 대하여 멜라닌 탈색 활성을 조사하기 위해 정제된 효소와 합성 멜라닌을 37℃에서 24시간 반응하였고, 여기에 다양한 redox mediator를 첨가하여 멜라닌 탈색율을 조사하였다. 그 결과 효소 단독으로 합성 멜라닌과 반응한 경우에는 단지 4%만 이 탈색되는 반면, 1 mM HBT를 mediator로 첨가한 경우에는 탈색율이 80%로 향상되었다(Fig.
정제된 멜라닌 탈색 효소의 pH 및 온도에 대한 영향을 알아보기 위하여 다양한 pH 및 온도 조건에서 1.5 mM HBT 및 합성 멜라닌과 함께 24시간 반응하고 멜라닌 탈색 활성을 조사하였다. 본 효소의 멜라닌 탈색에 대한 최적 pH는 5.
대상 데이터
경상남도 삼림 지역의 토양, 썩은 나무 등에서 채취한 100 여개의 샘플을 phosphate buffered saline (PBS)와 혼합한 후 1.0 × 105 까지 순차적으로 희석하고, ampicillin (100 μg/ ml)이 첨가된 potato dextrose agar (PDA) 평판배지 상에 접 종하여 25℃에서 3−5일간 배양하였다. 총 132종의 분리된 진균류에서 멜라닌 탈색능을 가진 균주를 선별하기 위하여 배양된 PDA 평판배지 상의 균사를 직경 5 mm의 cork borer 로 agar plug를 만들어 human hair melanin (0.
경상남도 삼림 지역의 토양, 고목 등에서 채취한 132종의 진균류에 대하여 사람 머리카락 유래 천연 멜라닌을 첨가한 MDB 고체 배지상에서 균사체를 배양하고, 투명환을 형성하는 균주를 선별하였다. 그 결과 고목에서 분리한 진균류 1종 에서 투명환이 확인되었다(Fig.
이론/모형
(B) Phylogenetic tree. The tree was constructed using the neighbor joining method. The bar represents 0.
성능/효과
삼림지역의 고목에서 분리한 JS18 균주는 합성 멜라닌을 탈색하는 세포 외 분비효소를 생산했다. JS18 균주의 internal transcribed spacer (ITS) 염기서열을 분석하고 계 통학적으로 확인한 결과 본 균주는 Trametes velutina로 동 정되었다. JS18 균주는 laccase 활성을 나타냈지만 manganese peroxidase 및 lignin peroxidase 활성은 나타내지 않았다.
JS18 균주는 laccase 활성을 나타냈지만 manganese peroxidase 및 lignin peroxidase 활성은 나타내지 않았다. 본 균주를 회분배양한 결과 멜라닌 탈색 활성은 laccase 활 성으로부터 유래하는 것으로 확인되었다. Laccase 유도인자 로써 Syringic acid 및 CuSO4를 첨가하고 25℃에서 7일간 배양한 결과 배양상등액에서 98 U/ml의 laccase 활성을 나타내었다.
velutina의 배양상등액 에서 ammonium sulfate 침전, Hi-trap Q Sepharose 컬럼 및 gel filtration을 이용하여 효소를 정제하였고, SDS-PAGE 에서 약 67 kDa의 분자량을 나타내었다. 정제된 효소의 멜 라닌 탈색율은 효소 단독으로는 24시간 만에 단지 4% 만을 나타내는 반면, HBT의 존재 하에서는 80%로 향상되었다. 또한 1.
5 mM HBT의 농도에서는 최대 81%의 멜라닌 탈색 율을 나타내었다. 본 효소의 멜라닌 탈색에 대한 최적 pH 및 온도는 각각 5.0와 37℃를 나타내었다. 본 연구에서는 T.
경상남도 삼림 지역의 토양, 고목 등에서 채취한 132종의 진균류에 대하여 사람 머리카락 유래 천연 멜라닌을 첨가한 MDB 고체 배지상에서 균사체를 배양하고, 투명환을 형성하는 균주를 선별하였다. 그 결과 고목에서 분리한 진균류 1종 에서 투명환이 확인되었다(Fig. 1). 투명환을 형성한 균주를 동정하기 위하여 Internal transcribed spacer (ITS) 염기서 열을 분석하고 BLAST program을 이용하여 상동성을 분석한 결과 100%의 신뢰도로 Trametes velutina로 동정되어 본 균주를 Trametes velutina JS18로 명명하였다(Fig.
1). 투명환을 형성한 균주를 동정하기 위하여 Internal transcribed spacer (ITS) 염기서 열을 분석하고 BLAST program을 이용하여 상동성을 분석한 결과 100%의 신뢰도로 Trametes velutina로 동정되어 본 균주를 Trametes velutina JS18로 명명하였다(Fig. 2).
velutina JS18의 균 사체로부터 멜라닌 탈색에 관여하는 효소를 동정하기 위하여 JS18균주를 GYP 배지에 접종하고 25℃에서 7일간 배양 한 후 배양 상등액을 대상으로 laccase, manganese peroxidase, lignin peroxidase 활성을 조사하였다. 그 결과 T. velutina JS18의 배양 상등액에서 manganese peroxidase 및 lignin peroxidase 활성은 나타나지 않았고, laccase의 기질에 대한 활성(8 unit/ml)만 확인되었다. 따라서, T.
velutina JS18의 배양 상등액에서 manganese peroxidase 및 lignin peroxidase 활성은 나타나지 않았고, laccase의 기질에 대한 활성(8 unit/ml)만 확인되었다. 따라서, T. velutina JS18의 경우 배양액 중에 생산된 laccase가 멜라닌 탈색 활성을 나타내는 것으로 예상되었다. Laccase는 종류별로 다양한 기 질 특이성을 가지고 있기 때문에 곰팡이에서만 약 100여종 이상의 종류가 보고 되었지만[22], 현재까지 멜라닌을 탈색 시키는 laccase는 Phlebia radiata BP-11-2 [13], Lentinus polychrous Lév [14], Trametes versicolor [23] 및 Pheniophora sp.
velutina JS18의 배양 상 등액을 대상으로 laccase 활성을 측정하였다. 그 결과 1 mM syringic acid 및 0.5 mM CuSO4를 단독으로 첨가한 경우에 는 대조구와 비교하여 laccase 활성이 각각 5배 및 4배씩 증 가하였고, 동시에 첨가한 경우에는 대조구와 비교하여 12배 활성이 증가하였다(Fig. 3). JS18 균주의 laccase 최대 활성 은 98 U/ml을 나타내었고, 기존 보고된 Trametes versicolor 유래 laccase의 활성(11.
3). JS18 균주의 laccase 최대 활성 은 98 U/ml을 나타내었고, 기존 보고된 Trametes versicolor 유래 laccase의 활성(11.4 U/ml) [26]과 Trametes hirsuta 유래 laccase의 활성(31.7 U/ml) [27]과 비교하여 매우 높은 것으로 확인되어 본 균주는 다른 Trametes 속 균주보다 laccase 생산량이 우수하였다. 구리 이온은 laccase의 보결분 자단(prosthetic group)으로 알려져 있고, laccase 생산에 있어 방향족 화합물은 laccase isozyme의 분비율 향상, laccase 유전자의 전사 유도, 세포 외 단백질 분해활성의 감소에 기 여하는 것으로 보고된 바 있다[25].
5 mM CuSO4, 1 mM syringic acid) 를 첨가하고 7일동안 배양한 후, 배양 상등액의 효소를 ammonium sulfate 침전, 음이온 교환수지 및 gel filtration chromatography을 이용하여 정제하였다. 정제된 효소를 SDS-PAGE로 확인한 결과 약 67 kDa 부근에서 밴드가 확 인되었다(Fig. 4). 또한, SuperdexTM 200 column을 이용한 gel filtration 분석 결과 약 69 kDa의 분자량을 나타내어 정 제된 효소는 monomeric enzyme을 형성하는 것으로 확인되 었다(data not shown).
4). 또한, SuperdexTM 200 column을 이용한 gel filtration 분석 결과 약 69 kDa의 분자량을 나타내어 정 제된 효소는 monomeric enzyme을 형성하는 것으로 확인되 었다(data not shown). 지금까지 보고된 Trametes 속 유래 의 laccase는 60−70 kDa 사이의 분자량을 나타냈고[22], T.
velutina JS18로부터 정제한 효소에 대하여 멜라닌 탈색 활성을 조사하기 위해 정제된 효소와 합성 멜라닌을 37℃에서 24시간 반응하였고, 여기에 다양한 redox mediator를 첨가하여 멜라닌 탈색율을 조사하였다. 그 결과 효소 단독으로 합성 멜라닌과 반응한 경우에는 단지 4%만 이 탈색되는 반면, 1 mM HBT를 mediator로 첨가한 경우에는 탈색율이 80%로 향상되었다(Fig. 5A). 그 외에 ABTS와 syringaldehyde를 첨가한 경우에는 멜라닌 탈색율이 8%로 소량 상승하였고, 다른 mediator에 대해서는 탈색율에 거의 변화가 없었다(Fig.
Xu 등은 Laccase가 촉매하는 paper pulp 탈색반응과 polycyclic hydrocarbon의 분해반응에서 NOH기를 가진 HBT 화합물은 laccase와의 산화환원전위 (redox potential) 차이가 크면 클수록 기질에 대한 산화율이 높기 때문에 촉매 활성이 향상된다고 보고하였다[28]. 따라서, T. velutina JS18 유래 laccase도 다른 redox mediator 보다 N-OH기를 가진 HBT와의 산화환원전위 차이가 커서 멜라닌 탈색율이 향상된 것으로 추측되었다.
본 효소의 HBT 농도에 따른 멜라닌 탈색율의 변화를 알아보기 위하여 다양한 농도의 HBT를 첨가하고 탈색율을 조 사한 결과, 1.5 mM HBT 농도에서 24시간 만에 81%의 탈색 율을 나타냈고, 2 mM HBT의 농도에서는 조금 더 낮은 73% 탈색율을 보여 본 효소의 멜라닌 탈색을 위한 HBT의 최적 농도는 1.5 mM로 확인되었다(Fig. 5B). 이와 같이 멜라닌 탈 색은 효소 단독으로는 효율이 낮기 때문에 mediator의 종류 및 농도에 따라 멜라닌 탈색율이 크게 달라질 수 있음을 확 인하였다.
5 mM HBT 및 합성 멜라닌과 함께 24시간 반응하고 멜라닌 탈색 활성을 조사하였다. 본 효소의 멜라닌 탈색에 대한 최적 pH는 5.0 으로 80%의 탈색율을 보였고, pH 4.0−6.0의 범위에서 70% 이상의 탈색율을 나타냈다(Fig. 6A). 그러나 pH 3.
본 연구 결과에서 T. velutina JS18의 배양액으로부터 정 제한 효소는 HBT와 함께 멜라닌을 효율적으로 탈색하는 것으로 확인되었고, 미백 화장품 원료로써의 적용 가능성을 시 사하였다. 그러나 HBT는 폭발 위험 물질로 분류되어 있어 화장품 원료로 적합하지 않기 때문에 현재, 인체에 적합한 mediator의 탐색 및 개발을 추가로 진행 중에 있다.
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