$\require{mediawiki-texvc}$

연합인증

연합인증 가입 기관의 연구자들은 소속기관의 인증정보(ID와 암호)를 이용해 다른 대학, 연구기관, 서비스 공급자의 다양한 온라인 자원과 연구 데이터를 이용할 수 있습니다.

이는 여행자가 자국에서 발행 받은 여권으로 세계 각국을 자유롭게 여행할 수 있는 것과 같습니다.

연합인증으로 이용이 가능한 서비스는 NTIS, DataON, Edison, Kafe, Webinar 등이 있습니다.

한번의 인증절차만으로 연합인증 가입 서비스에 추가 로그인 없이 이용이 가능합니다.

다만, 연합인증을 위해서는 최초 1회만 인증 절차가 필요합니다. (회원이 아닐 경우 회원 가입이 필요합니다.)

연합인증 절차는 다음과 같습니다.

최초이용시에는
ScienceON에 로그인 → 연합인증 서비스 접속 → 로그인 (본인 확인 또는 회원가입) → 서비스 이용

그 이후에는
ScienceON 로그인 → 연합인증 서비스 접속 → 서비스 이용

연합인증을 활용하시면 KISTI가 제공하는 다양한 서비스를 편리하게 이용하실 수 있습니다.

한우 태아기 6, 9개월령 등심 조직의 전사체 분석을 통한 근생성 및 지방생성 관여 유전자 발굴
Transcriptome Analysis of Longissimus Tissue in Fetal Growth Stages of Hanwoo (Korean Native Cattle) with Focus on Muscle Growth and Development 원문보기

생명과학회지 = Journal of life science, v.30 no.1, 2020년, pp.45 - 57  

정태준 (국립축산과학원 동물유전체과) ,  정기용 (국립한국농수산대학 한우학과) ,  박원철 (국립축산과학원 동물유전체과) ,  손주환 (국립축산과학원 동물유전체과) ,  박종은 (국립축산과학원 동물유전체과) ,  채한화 (국립축산과학원 동물유전체과) ,  권응기 (국립축산과학원 동물유전체과) ,  안준상 (국립축산과학원 동물유전체과) ,  (국립축산과학원 동물유전체과) ,  이지웅 (전남대학 동물공학과) ,  임다정 (국립축산과학원 동물유전체과)

초록
AI-Helper 아이콘AI-Helper

동물의 근섬유는 배아기와 태아기를 거치며 형성하게 되며 출생 후에는 상처 치유를 위한 것 외에 근섬유 수를 늘리는 순수한 근섬유 형성은 없으며, 이미 존재하고 있는 근섬유의 비대로 근육의 성장이 이뤄진다. 따라서 태아기의 근육의 성장과 발달이 성체의 근육량 및 조성에 미치는 영향이 매우 크며 이 시기에 발현되는 유전자 및 기능을 구명하는 것은 최종적으로 육질, 육량에 개선시키기 위한기초 자료로 활용될 수 있을 것이다. 하지만 한우에서의 연구는 전무한 실정이다. 본 연구는한우 태아기 성장 단계별 근육의 성장과 발달에 관여하는 유전자를 찾기 위한 전사체 분석을 수행하였다. 한우 태아기 6, 9개월령 등심 조직 시료에서 생산한 전사체 자료를 대상으로 DESeq2와 edgeR을 활용하여 성장단계별 유전자의 발현량을 분석하여 차등발현유전자군을 추출했으며, 2개 소프트웨어서 공통적으로 추출된 유전자군(6개월령 특이 발현 유전자 913개, 9개월령 특이 발현 유전자 233개)을 차등발현유전자로 구명 하였다. 차등발현유전자군으로 분류하였다. 차등발현유전자군을 활용하여공발현 유전자 네트워크 분석을 구성하였으며, 유사한 발현 양상을 보이는 유전자들을 그룹화하여 6개월령 특이 발현 유전자군 5개, 9개월령 특이 발현 유전자군 2개의 모듈로 분류했다. 각 모듈은 Gene Ontology (GO) 및 KEGG pathway 분석으로 유의한 기능을 확인하였다. 그 결과, 한우 태아기 6, 9개월령 특이 발현 유전자 네트워크 중, 근육과 지방생성 대사회로와 관련된 2개의 모듈에 대해 네트워크 내에 허브 유전자를 선정할 수 있었다. STRING을 활용하여 단백질 상호작용 네트워크를 구성하고, MCC (maximal clique centrality) 점수를 활용하여 상위 10%의 유전자들을 공발현 분석의 모듈내 허브 유전자로 선정하였다. 그 결과 6개월령 특이 발현 유전자군의 모듈에서는 axin1(AXIN1) 유전자, 9개월령 특이 발현 유전자군 모듈에서는 succinate-CoA ligase ADP-forming beta subunit(SUCLA2) 유전자가 허브 유전자로 확인되었다. AXIN1 유전자는 선행 연구를 통해 6개월령에서 9개월령으로 넘어가면서 근섬유 수의 증식이 억제되고 지방생성이 활발히 이뤄지는 것에 핵심적인 역할을 하는 것으로 추정할 수 있었다. 또한, 시트르산 회로의 중요 요소인 SUCLA2 유전자는 소의 태아기 지방 조직 성장단계에 따라 유전자의 발현이 증가된다는 보고에 따라, 지방 대사와 관련된 유전자임을 알 수 있었다. 추후 한우 태아기 6, 9개월령에 특이적으로 발현된 유전자들을 대상으로 근육 및 지방 형성 관련 기능을 검증하는 후속 연구가 필요할 것이다.

Abstract AI-Helper 아이콘AI-Helper

The prenatal period in livestock animals is crucial for meat production because net increase in the number of muscle fibers is finished before birth. However, there is no study on the growth and development mechanism of muscles in Hanwoo during this period. Therefore, to find candidate genes involve...

주제어

표/그림 (12)

AI 본문요약
AI-Helper 아이콘 AI-Helper

* AI 자동 식별 결과로 적합하지 않은 문장이 있을 수 있으니, 이용에 유의하시기 바랍니다.

문제 정의

  • 특히, Lehnert 등[29]에 따르면 소는 태아기 3분의 2 지점(약 6개월령)에서 근섬유 수의 고정이 이뤄지고, 출생 준비를 위해 골격근의 극적인 적응을 보인다고 하였다. 따라서 본 연구에서는 한우 태아기 6개월령 및 9개월령의 유전자 발현 양상을 살펴 보고, 근육의 성장과 발달에 관여할 것으로 여겨지는 유전자들을 규명하고자 하였다.
  • 이처럼 여러 가축에서 태아기 근육의 성장과 발달에 관여하는 유전자들에 관한 연구들이 진행되었지만 한우에 관한 연구는 전무한 실정이다. 본 연구를 통하여 한우 태아기 등심 조직의 유전자 발현 양상을 살펴보고, 근육의 성장과 발달에 관여할 것으로 여겨지는 유전자들을 알아보고자 하였다.

가설 설정

  • (A) PCA distinguishes the gene expression pattern of samples. (B) Heatmap shows differentially expressed genes expression pattern.
본문요약 정보가 도움이 되었나요?

질의응답

핵심어 질문 논문에서 추출한 답변
소의 근생성은 어떤 세포 때문에 일어나는가? 따라서 소의 성장에 따른 근육의 성장 및 발달과정을 살펴보는 것은 개량과 사양 연구 분야에 매우 중요하다. 소의 근생성(myogenesis)은 정자와 난자의 수정 후 약 2개월 간의 배아기를 거치면서 중간엽 줄기세포(mesenchymal stem cells, MSCs)가 증식, 분화, 발달하여 1차 근섬유(Primary myofibers)를 형성하게 되고, 이후 약 7~8개월까지 2차 근섬유(Secondary myofibers)가 형성되어 최종적으로 근육을 이루게 된다[5, 44]. 이 과정에서 다양한 유전자들(WNT, PAX3, PAX7, GLI, MRFs, MYF5, MYOD 등)이 발현 및 조절되면서 근육 형성에 직 간접적인 영향을 미친다[13].
특이 발현 유전자군을 분류할 때 사용한 도구는? 차등발현유전자군을 활용하여공발현 유전자 네트워크 분석을 구성하였으며, 유사한 발현 양상을 보이는 유전자들을 그룹화하여 6개월령 특이 발현 유전자군 5개, 9개월령 특이 발현 유전자군 2개의 모듈로 분류했다. 각 모듈은 Gene Ontology (GO) 및 KEGG pathway 분석으로 유의한 기능을 확인하였다. 그 결과, 한우 태아기 6, 9개월령 특이 발현 유전자 네트워크 중, 근육과 지방생성 대사회로와 관련된 2개의 모듈에 대해 네트워크 내에 허브 유전자를 선정할 수 있었다.
콜라겐이란? Peptidyl-lysine hydroxylation과 peptidyl-proline modification 중, peptidyl-proline hydroxylation는 콜라겐(collagen) 생합성 과정과 관련되어 있다고 알려져 있다[36]. 콜라겐은 근육과 뼈를 이어주는 연결 조직인 건(tendon)의 핵심적인 구성원이며, 근육의 발달 과정에 영향을 미치는 것으로 알려져 있다[4, 21]. 이 대사회로의 모듈내 참여 유전자는 matrix metallopeptidase 14 (MMP14), prolyl 3-hydroxylase 3 (P3H3), prolyl 3-hydroxylase family member 4 (inactive)(P3H4), procollagen-lysine,2-oxoglutarate 5-dioxygenase 3(PLOD3), FKBP prolyl isomerase 10 (FKBP10)이었으며, 이 모듈내 연결 정도가 가장 높은 유전자는 BAF chromatin remodeling complex subunit BCL7C (BCL7C)로(Supplementary 2), 염색질 재구성에 관여하는 복합체의 구성원에 해당된다.
질의응답 정보가 도움이 되었나요?

참고문헌 (57)

  1. Anders, S. and Huber, W. 2010. Differential expression analysis for sequence count data. Genome Biol. 11, R106. 

  2. Ashburner, M., Ball, C. A., Blake, J. A., Botstein, D., Butler, H., Cherry, J. M., Davis, A. P., Dolinski, K., Dwight, S. S. and Eppig, J. T. 2000. Gene ontology: Tool for the unification of biology. Nat. Genet. 25, 25. 

  3. Bai, C., Sen, P., Hofmann, K., Ma, L., Goebl, M., Harper, J. W. and Elledge, S. J. 1996. Skp1 connects cell cycle regulators to the ubiquitin proteolysis machinery through a novel motif, the f-box. Cell 86, 263-274. 

  4. Bailey, A., Shellswell, G. and Duance, V. 1979. Identification and change of collagen types in differentiating myoblasts and developing chick muscle. Nature 278, 67. 

  5. Beermann, D., Cassens, R. and Hausman, G. 1978. A second look at fiber type differentiation in porcine skeletal muscle. J. Anim. Sci. 46, 125-132. 

  6. Behrens, J., Jerchow, B. A., Wurtele, M., Grimm, J., Asbrand, C., Wirtz, R., Kuhl, M., Wedlich, D. and Birchmeier, W. 1998. Functional interaction of an axin homolog, conductin, with ${\beta}$ -catenin, apc, and $gsk3{\beta}$ . Science 280, 596-599. 

  7. Bindea, G., Mlecnik, B., Hackl, H., Charoentong, P., Tosolini, M., Kirilovsky, A., Fridman, W. H., Pages, F., Trajanoski, Z. and Galon, J. 2009. Cluego: A cytoscape plug-in to decipher functionally grouped gene ontology and pathway annotation networks. Bioinformatics 25, 1091-1093. 

  8. Bolger, A. M., Lohse, M. and Usadel, B. 2014. Trimmomatic: A flexible trimmer for illumina sequence data. Bioinformatics 30, 2114-2120. 

  9. Borycki, A., Brown, A. and Emerson, C. 2000. Shh and wnt signaling pathways converge to control gli gene activation in avian somites. Development 127, 2075-2087. 

  10. Capdevila, J., Tabin, C. and Johnson, R. L. 1998. Control of dorsoventral somite patterning by wnt-1 and ${\beta}$ -catenin. Dev. Biol. 193, 182-194. 

  11. Cheng, E. H. Y., Sheiko, T. V., Fisher, J. K., Craigen, W. J. and Korsmeyer, S. J. 2003. Vdac2 inhibits bak activation and mitochondrial apoptosis. Science 301, 513-517. 

  12. Chin, C. H., Chen, S. H., Wu, H. H., Ho, C. W., Ko, M. T. and Lin, C. Y. 2014. Cytohubba: Identifying hub objects and sub-networks from complex interactome. BMC Syst. Biol. 8, S11. 

  13. Du, M., Tong, J., Zhao, J., Underwood, K., Zhu, M., Ford, S. and Nathanielsz, P. 2010. Fetal programming of skeletal muscle development in ruminant animals. J. Anim. Sci. 88, E51-E60. 

  14. Du, M., Wang, B., Fu, X., Yang, Q. and Zhu, M. J. 2015. Fetal programming in meat production. Meat Sci. 109, 40-47. 

  15. Du, M., Yan, X., Tong, J. F., Zhao, J. and Zhu, M. J. 2010. Maternal obesity, inflammation, and fetal skeletal muscle development. Biol. Reprod. 82, 4-12. 

  16. Figeac, N. and Zammit, P. S. 2015. Coordinated action of axin1 and axin2 suppresses ${\beta}$ -catenin to regulate muscle stem cell function. Cell. Signal. 27, 1652-1665. 

  17. Galic, S., Oakhill, J. S. and Steinberg, G. R. 2010. Adipose tissue as an endocrine organ. Mol. Cell. Endocrinol. 316, 129-139. 

  18. Gillies, T. E. and Cabernard, C. 2011. Cell division orientation in animals. Curr. Biol. 21, R599-R609. 

  19. Greenwood, P., Hunt, A., Hermanson, J. and Bell, A. 2000. Effects of birth weight and postnatal nutrition on neonatal sheep: Ii. Skeletal muscle growth and development. J. Anim. Sci. 78, 50-61. 

  20. Gustafsson, M. K., Pan, H., Pinney, D. F., Liu, Y., Lewandowski, A., Epstein, D. J. and Emerson, C. P. 2002. Myf5 is a direct target of long-range shh signaling and gli regulation for muscle specification. Genes Dev. 16, 114-126. 

  21. Hauschka, S. D. and Konigsberg, I. R. 1966. The influence of collagen on the development of muscle clones. Proc. Natl. Acad. Sci. USA. 55, 119. 

  22. Ho, L., Ronan, J. L., Wu, J., Staahl, B. T., Chen, L., Kuo, A., Lessard, J., Nesvizhskii, A. I., Ranish, J. and Crabtree, G. R. 2009. An embryonic stem cell chromatin remodeling complex, esbaf, is essential for embryonic stem cell self-renewal and pluripotency. Proc. Natl. Acad. Sci. USA. 106, 5181-5186. 

  23. Hofer, T., Tangkeangsirisin, W., Kennedy, M. G., Mage, R. G., Raiker, S. J., Venkatesh, K., Lee, H., Giger, R. J. and Rader, C. 2007. Chimeric rabbit/human fab and igg specific for members of the nogo-66 receptor family selected for species cross-reactivity with an improved phage display vector. J. Immunol. Methods 318, 75-87. 

  24. Johnson, M., Zaretskaya, I., Raytselis, Y., Merezhuk, Y., McGinnis, S. and Madden, T. L. 2008. Ncbi blast: A better web interface. Nucleic Acids Res. 36, W5-W9. 

  25. Kaminski, E., Drobnik, W., Honer, C., Schumacher, C. and Schmitz, G. 2001. The zinc finger protein 202 (znf202) is a transcriptional repressor of atp binding cassette transporter a1 (abca1) and abcg1 gene expression and a modulator of cellular lipid efflux. J. Biol. Chem. 276, 12427-12433. 

  26. Kanehisa, M. and Goto, S. 2000. Kegg: Kyoto encyclopedia of genes and genomes. Nucleic Acids Res. 28, 27-30. 

  27. Karunaratne, J., Ashton, C. and Stickland, N. 2005. Fetal programming of fat and collagen in porcine skeletal muscles. J. Anat. 207, 763-768. 

  28. Langfelder, P. and Horvath, S. 2008. Wgcna: An r package for weighted correlation network analysis. BMC Bioinformatics 9, 559. 

  29. Lehnert, S. A., Reverter, A., Byrne, K. A., Wang, Y., Nattrass, G. S., Hudson, N. J. and Greenwood, P. L. 2007. Gene expression studies of developing bovine longissimus muscle from two different beef cattle breeds. BMC Dev. Biol. 7, 95. 

  30. Love, M. I., Huber, W. and Anders, S. 2014. Moderated estimation of fold change and dispersion for rna-seq data with deseq2. Genome Biol. 15, 550. 

  31. Luo, W. and Lin, S. C. 2004. Axin: A master scaffold for multiple signaling pathways. Neurosignals 13, 99-113. 

  32. Messina, A., Oliva, M., Rosato, C., Huizing, M., Ruitenbeek, W., Van Den Heuvel, L. P., Forte, M., Rocchi, M. and De Pinto, V. 1999. Mapping of the human voltage-dependent anion channel isoforms 1 and 2 reconsidered. Biochem. Biophys. Res. Commun. 255, 707-710. 

  33. Millay, D. P., O'Rourke, J. R., Sutherland, L. B., Bezprozvannaya, S., Shelton, J. M., Bassel-Duby, R. and Olson, E. N. 2013. Myomaker is a membrane activator of myoblast fusion and muscle formation. Nature 499, 301. 

  34. Moldes, M., Ying, Z., Morrison, R. F., Silva, D., Bae-Hang, P., Jiajian, L. and Farmer, S. R. 2003. Peroxisome-proliferator-activated receptor ${\gamma}$ suppresses wnt/ ${\beta}$ -catenin signalling during adipogenesis. Biochem. J. 376, 607-613. 

  35. Murani, E., Muraniova, M., Ponsuksili, S., Schellander, K. and Wimmers, K. 2007. Identification of genes differentially expressed during prenatal development of skeletal muscle in two pig breeds differing in muscularity. BMC Dev. Biol. 7, 109. 

  36. O'brien, M. 1997. Structure and metabolism of tendons. Scand. J. Med. Sci. Sports 7, 55-61. 

  37. Okamura, M., Kudo, H., Wakabayashi, K. I., Tanaka, T., Nonaka, A., Uchida, A., Tsutsumi, S., Sakakibara, I., Naito, M. and Osborne, T. F. 2009. Coup-tfii acts downstream of wnt/ ${\beta}$ -catenin signal to silence $ppar{\gamma}$ gene expression and repress adipogenesis. Proc. Natl. Acad. Sci. 106, 5819-5824. 

  38. Park, H. R., Eum, S. H., Park, J. H., Seo, J. G., Cho, S. K., Shin, T., Cho, B. W., Park, H. C., Lee, E. J., Seon, D., Im, H., Lee, J. G. and Kim, B. W. 2015. Contribution analysis of carcass traits on auction price in gyeongsangnam-do hanwoo. J. Agric. Life Sci. 49, 187-195. 

  39. Patro, R., Duggal, G., Love, M. I., Irizarry, R. A. and Kingsford, C. 2017. Salmon provides fast and bias-aware quantification of transcript expression. Nat. Methods 14, 417. 

  40. Platter, W., Tatum, J., Belk, K., Koontz, S., Chapman, P. and Smith, G. 2005. Effects of marbling and shear force on consumers' willingness to pay for beef strip loin steaks. J. Anim. Sci. 83, 890-899. 

  41. Remels, A., Langen, R., Schrauwen, P., Schaart, G., Schols, A. and Gosker, H. 2010. Regulation of mitochondrial biogenesis during myogenesis. Mol. Cell. Endocrinol. 315, 113-120. 

  42. Robinson, M. D., McCarthy, D. J. and Smyth, G. K. 2010. Edger: A bioconductor package for differential expression analysis of digital gene expression data. Bioinformatics 26, 139-140. 

  43. Robinson, M. D. and Oshlack, A. 2010. A scaling normalization method for differential expression analysis of rnaseq data. Genome Biol. 11, R25. 

  44. Russell, R. G. and Oteruelo, F. 1981. An ultrastructural study of the dufferentiation of skeletal muscle in the bovine fetus. Anat. Embryol. 162, 403-417. 

  45. Schiaffino, S., Rossi, A. C., Smerdu, V., Leinwand, L. A. and Reggiani, C. 2015. Developmental myosins: Expression patterns and functional significance. Skelet Muscle 5, 22. 

  46. Shannon, P., Markiel, A., Ozier, O., Baliga, N. S., Wang, J. T., Ramage, D., Amin, N., Schwikowski, B. and Ideker, T. 2003. Cytoscape: A software environment for integrated models of biomolecular interaction networks. Genome Res. 13, 2498-2504. 

  47. Shi, W., Gong, P., Fan, J., Yan, Y. H., Ni, L., Wu, X., Cui, G., Wu, X., Gu, X. and Chen, J. 2012. The expression pattern of adp-ribosyltransferase 3 in rat traumatic brain injury. J. Mol. Histol. 43, 37-47. 

  48. Stickland, N. 1978. A quantitative study of muscle development in the bovine foetus (bos indicus). Anat. Histol. Embryol. 7, 193-205. 

  49. Szklarczyk, D., Gable, A. L., Lyon, D., Junge, A., Wyder, S., Huerta-Cepas, J., Simonovic, M., Doncheva, N. T., Morris, J. H. and Bork, P. 2018. String v11: Protein-protein association networks with increased coverage, supporting functional discovery in genome-wide experimental datasets. Nucleic Acids Res. 47, D607-D613. 

  50. Taga, H., Chilliard, Y., Meunier, B., Chambon, C., Picard, B., Zingaretti, M. C., Cinti, S. and Bonnet, M. 2012. Cellular and molecular large-scale features of fetal adipose tissue: Is bovine perirenal adipose tissue brown1685. J. Cell. Physiol. 227, 1688-1700. 

  51. Tierney, M. T. and Sacco, A. 2016. Satellite cell heterogeneity in skeletal muscle homeostasis. Trends Cell Biol. 26, 434-444. 

  52. Yan, X., Zhu, M. J., Dodson, M. V. and Du, M. 2013. Developmental programming of fetal skeletal muscle and adipose tissue development. J. Genomics 1, 29. 

  53. Yang, H. Y., Kim, S. H., Kim, S. H., Kim, D. J., Kim, S. U., Yu, D. Y., Yeom, Y. I., Lee, D. S., Kim, Y. J. and Park, B. J. 2007. The suppression of zfpm-1 accelerates the erythropoietic differentiation of human cd34+ cells. Biochem. Biophys. Res. Commun. 353, 978-984. 

  54. Yin, C., Xiao, Y., Zhang, W., Xu, E., Liu, W., Yi, X. and Chang, M. 2014. DNA microarray analysis of genes differentially expressed in adipocyte differentiation. J. Biosci. 39, 415-423. 

  55. Yu, G., Wang, L. G., Han, Y. and He, Q. Y. 2012. Clusterprofiler: An r package for comparing biological themes among gene clusters. OMICS 16, 284-287. 

  56. Zhan, S., Zhao, W., Song, T., Dong, Y., Guo, J., Cao, J., Zhong, T., Wang, L., Li, L. and Zhang, H. 2018. Dynamic transcriptomic analysis in hircine longissimus dorsi muscle from fetal to neonatal development stages. Funct. Integr. Genomics 18, 43-54. 

  57. Zhou, S., Li, M., Li, Q., Guan, J. and Li, X. 2012. Differential expression analysis of porcine mdh1, mdh2 and me1 genes in adipose tissues. Genet. Mol. Res. 11, 1254-1259. 

저자의 다른 논문 :

섹션별 컨텐츠 바로가기

AI-Helper ※ AI-Helper는 오픈소스 모델을 사용합니다.

AI-Helper 아이콘
AI-Helper
안녕하세요, AI-Helper입니다. 좌측 "선택된 텍스트"에서 텍스트를 선택하여 요약, 번역, 용어설명을 실행하세요.
※ AI-Helper는 부적절한 답변을 할 수 있습니다.

선택된 텍스트

맨위로