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동결-융해 정자의 운동학적 특성에 대한 MitoTEMPO의 영향
Effects of Mitochondria-targeted Antioxidant MitoTEMPO on the Kinetic Characteristics of Frozen-Thawed Boar Sperm 원문보기

한국산학기술학회논문지 = Journal of the Korea Academia-Industrial cooperation Society, v.21 no.3, 2020년, pp.199 - 205  

조은석 (농촌진흥청 국립축산과학원 양돈과) ,  김정아 (농촌진흥청 국립축산과학원 양돈과) ,  정용대 (농촌진흥청 국립축산과학원 양돈과) ,  최요한 (농촌진흥청 국립축산과학원 양돈과) ,  홍준기 (농촌진흥청 국립축산과학원 양돈과) ,  김영신 (농촌진흥청 국립축산과학원 양돈과) ,  정학재 (농촌진흥청 국립축산과학원 양돈과) ,  백선영 (농촌진흥청 국립축산과학원 양돈과) ,  사수진 (농촌진흥청 국립축산과학원 양돈과)

초록
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정액의 동결보존은 인공수정을 통한 동물 번식에 유용한 것으로 알려져 있지만 동결-융해된 돼지 정액의 사용은 저온손상 때문에 제한된다. 최근에는 이를 보완하기 위해 다양한 첨가제 연구가 진행 되고 있다. 그 중 항산화제는 정자의 동결 융해과정에서 정자 세포막의 지질과산화를 억제시켜 정자의 생존성과 운동성을 개선시킨 다고 알려져 있다. 본 연구의 목적은 동결보존액에 대한 MitoTEMPO(미토콘드리아 표적 항산화제) 첨가가 돼지 동결-융해 정자의 운동학적 특성에 미치는 영향을 평가하는 것이다. 성숙한 Duroc종 수퇘지로부터 정액샘플을 채취하였으며, 다양한 농도의 MitoTEMPO (0, 0.5, 5, 50 및 500 μM)를 lactose-egg yolk 동결보존액에 첨가하여 정액을 동결하였다. 동결-융해 후 정자의 운동학적 특성들은 정자자동분석기 (CASA; computer-assisted sperm analysis)를 이용하여 분석하였다. 그 결과, 동결용 보존액에 5 및 50 μM (50.46±2.71%, 46.96±2.66%) MitoTEMPO 첨가 시 500 μM 처리구(35.40±2.95%)에 비해 유의적으로 높은 정자 운동성을 나타냈다(P<0.05). 그렇지만, 운동성을 제외한 다른 운동학적 특성에서는 유의적인 차이를 보이지 않았다. 결론적으로 동결용 보존액에 대한 MitoTEMPO 첨가는 동결-융해 돼지 정자의 운동성에 긍정적인 영향을 미치는 것으로 사료된다.

Abstract AI-Helper 아이콘AI-Helper

Cryopreservation of semen is useful for animal breeding via artificial insemination (AI). However, the use of frozen-thawed boar semen is limited due to cryodamage. The aim of this study was to investigate the effects of different concentrations of MitoTEMPO (a mitochondria-targeted antioxidant) in ...

주제어

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AI 본문요약
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문제 정의

  • 비록 MitoTEMPO가 사람에서 융해 후 정자의 품질에 관한 효과가 보고된 바 있지만[18], 돼지를 포함한 다른 동물들에서 연구는 매우 미흡한 실정이다. 따라서 우리는 본 연구에서 돼지 동결정액의 수정능력 향상을 위해 동결용 보존액에 대한 미토콘드리아 표적 항산화제인 MitoTEMPO 첨가가 동결-융해 후 정자의 운동학적 특성에 미치는 영향을 평가하였다.
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질의응답

핵심어 질문 논문에서 추출한 답변
미토콘드리아는 어떻게 알려져 있는가? 미토콘드리아는 ATP 생성, 지방산 산화, 세포사멸 및 괴사 조절, 세포질 칼슘 이온 및 ROS 항상성 조절을 포함한 많은 세포 과정에서 중요한 역할을 하는 세포소기관으로 알려져 있다[12]. 돼지의 난모세포 및 배아의 세포질에서 높은 수준의 ATP 생성은 생체 및 시험관 내 난모세포 성숙, 수정 및 초기 배아 발달에 필요하다[13].
정자 동결보존은 어디에 사용되는가? 정자 동결보존은 가축의 인공수정에 사용하여 동물 번식 프로그램 및 사람의 난임을 치료하기 위해 널리 사용되고 있다. 동결정액 활용의 장점은 우량 유전자원 장기 보존, 장거리 수송, 병원체 확산방지 보증 등을 포함한다[1].
정자 동결보존의 장점은 무엇인가? 정자 동결보존은 가축의 인공수정에 사용하여 동물 번식 프로그램 및 사람의 난임을 치료하기 위해 널리 사용되고 있다. 동결정액 활용의 장점은 우량 유전자원 장기 보존, 장거리 수송, 병원체 확산방지 보증 등을 포함한다[1]. 하지만 돼지의 경우, 다른 축종들과 비교하여 정자 세포막 불포화지방산의 비율이 높아 세포막의 지질과산화가 발생하기 쉬우며, 이는 정자의 운동성과 생존성을 급격히 저하 시키는 요인으로 보고되고 있다[2, 3].
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참고문헌 (24)

  1. K. Buranaamnuay, P. Tummaruk, J. Singlor, H. Rodriguez­Martinez, M. Techakumphu, "Effects of Straw Volume and Equex­STM(R) on Boar Sperm Quality after Cryopreservation", Reproduction in Domestic Animals, vol. 44, no. 1, pp. 69-73, Jan. 2009. DOI: https://doi.org/10.1111/j.1439-0531.2007.00996.x 

  2. D. Rath, R. Bathgate, H. Rodriguez­Martinez, J. Roca, J. Strzezek, D. Waberski, "Recent advances in boar semen cryopreservation", Control of Pig Reproduction VIII, vol. 66, pp. 51-66, Jan. 2009. DOI: http://dx.doi:10.4061/2011/396181 

  3. M. Techakumphu, K. Buranaamnuay, W. Tantasuparuk, N. Am-In, "Improvement of semen quality by feed supplement and semen cryopreservation in swine", Success in Artificial Insemination-Quality of Semen And Diagnostics Employed, LEMMA, Alemayehu, pp. 17-37, Jan. 2013. OI: http://dx.doi.org/10.5772/51737 

  4. A. M. Petrumkina, G. Volker, K. F. Weitze, M. Beyerbach, E. Topfer-Petersen, D. Waberski, "Detection of cooling-induced membrane changes in the response of boar sperm to capacitating conditions", Theriogenology, vol. 63, no. 8, pp. 2278-2299, May. 2005. DOI: https://doi.org/10.1016/j.theriogenology.2004.10.008 

  5. J. L. Bailey, J. F. Bilodeau, N. Cormier, "Semen cryopreservation in domestic animals: A damaging and capacitating phenomenon minireview", Journal of Andrology, vol. 21, no. 1, pp. 1-7, Jan. 2000. DOI: https://doi/pdf/10.1002/j.1939-4640.2000.tb03268.x 

  6. S. Chatterjee, C. Gagnon, "Production of reactive oxygen species by spermatozoa undergoing cooling, freezing, and thawing", Molecular Reproduction and Development: Incorporating Gamete Research, vol. 59, no. 4, pp. 451-458, Aug. 2001. DOI: https://doi.org/10.1002/mrd.1052 

  7. M. Yeste, J. E. Rodriguez­Gil, S. Bonet, "Artificial insemination with frozen­thawed boar sperm", Molecular reproduction and development, vol. 84, no. 9, pp. 802-813, Sept. 2017. DOI: https://doi.org/10.1002/mrd.22840 

  8. E. Estrada, J. E. Rodriguez-Gil, L. G. Rocha, S. Balasch, M. Yeste, "Supplementing cryopreservation media with reduced glutathione increases fertility and prolificacy of sows inseminated with frozen­thawed boar semen", Andrology, vol. 2, no. 1, pp. 88-99, Jan. 2014 DOI: https://doi.org/10.1111/j.2047-2927.2013.00144.x 

  9. L. A. Johnson, J. G. Aalbers, C. M. T. Willems, W. Sybesma, "Use of boar spermatozoa for artificial insemination. I. Fertilizing capacity of fresh and frozen spermatozoa in sows on 36 farms", Journal of Animal Science, vol. 52, no. 5, pp. 1130-1136, May. 1981. DOI: https://doi.org/10.2527/jas1981.5251130x 

  10. F. Amidi, A. Pazhohan, M. Shabani Nashtaei, M. Khodarahmian, S. Nekoonam, "The role of antioxidants in sperm freezing: a review", Cell Tissue Bank, vol. 17, pp. 745-756, 2016. 

  11. M. Mortazavi, I. Salehi, Z. Alizadeh, M. Vahabian, A. M. Roushandeh, "Protective effects of antioxidants on sperm parameters and seminiferous tubules epithelium in high fat-fed rats", Journal of Reproduction and Infertility, vol. 15, pp. 22-28, 2014. 

  12. S. G. Yang, H. J. Park, J. W. Kim, J. M. Jung, M. J. Kim, H. G. Jegal, "Mito-TEMPO improves development competence by reducing superoxide in preimplantation porcine embryos", Scientific Reports, vol. 8, no. 1, 10130, July. 2018. DOI: https://doi.org/10.1038/s41598-018-28497-5 

  13. H. Ge, T. L. Tollner, Z. Hu, M. Dai, X, Li, "The importance of mitochondrial metabolic activity and mitochondrial DNA replication during oocyte maturation in vitro on oocyte quality and subsequent embryo developmental competence", Molecular reproduction and development, vol. 79, no. 6, pp. 392-401, Mar. 2012. DOI: https://doi.org/10.1002/mrd.22042 

  14. A. P. Goud, P. T. Goud, M. P. Diamond, B. Gonik, H. M. Abu-Soud, "Reactive oxygen species and oocyte aging: role of superoxide, hydrogen peroxide, and hypochlorous acid", Free Radical Biology and Medicine, vol. 44, no. 7, pp. 1295-1304, Apr. 2008. DOI: https://doi.org/10.1016/j.freeradbiomed.2007.11.014 

  15. R. J. Aitken, K. T. Jones, S. A. Robertson, "Reactive oxygen species and sperm function-in sickness and in health", Journal of andrology, vol. 33, no. 6, pp. 1096-1106, Jan. 2012. DOI: https://doi.org/10.2164/jandrol.112.016535 

  16. L. Lu, L. Guo, E. Gauba, J. Tian, L. Wang, "Transient cerebral ischemia promotes brain mitochondrial dysfunction and exacerbates cognitive impairments in young 5xFAD mice", PloS one, vol. 10, no. 12, Dec. 2015. DOI: https://doi.org/10.1371/journal.pone.0144068 

  17. J. Trnka, F. H. Blaikie, A. Logan, R. A. Smith, M. P. Murphy, "Antioxidant properties of MitoTEMPOL and its hydroxylamine", Free radical research, vol. 43, no. 1, pp. 4-12, Aug. 2009. DOI: https://doi.org/10.1080/10715760802582183 

  18. X. Lu, Y. Zhang, H. Bai. J. Liu, J. Li, B. Wu, "Mitochondria-targeted antioxidant MitoTEMPO improves the post-thaw sperm quality", Cryobiology, vol. 80, pp. 26-29, Feb. 2018. DOI: https://doi.org/10.1016/j.cryobiol.2017.12.009 

  19. H. Hu, M. Li, "Mitochondria-targeted antioxidant mitotempo protects mitochondrial function against amyloid beta toxicity in primary cultured mouse neurons", Biochemical and biophysical research communications, vol. 478, no. 1, pp. 174-180, Sept. 2016. DOI: https://doi.org/10.1016/j.bbrc.2016.07.071 

  20. M. Yeste, "Recent adcances in boar sperm cryopreservation: State of the art and current perspectives", Reproduction in Domestic Animals, vol. 50, no. 52, pp. 71-79, Aug. 2015. DOI: https://doi.org/10.1111/rda.12569 

  21. W. Zhang, K, Yi, C. Chen, X, Hou, X, Zhou, "Application of antioxidants and centrifugation for cryopreservation of boar spermatozoa", Animal Reproduction Science, vol. 132, no. 3-4, pp. 123-128, Jun. 2012. DOI: https://doi.org/10.1016/j.anireprosci.2012.05.009 

  22. L. Fang, C. Bai, Y. Chen, J. Dai, Y. Xiang, "Inhibition of ROS production through mitochondria-targeted antioxidant and mitochondrial uncoupling iuncrease post-thaw sperm viability in yellow catfish", vol. 69, no. 3, pp. 386-393, Dec. 2014 DOI: https://doi.org/10.1016/j.cryobiol.2014.09.005 

  23. F. Mazzilli, T. Rossi, L. Sabatini, F. M. Pulcinelli, S. Rapone, F. Dondero, P. P. Gazzaniga, "Human sperm cryopreservation and reactive oxygen (ROS) production", Acra Europaea Fertilitatis, vol. 24, no. 4, pp. 145-148, Jul. 1995. 

  24. J. S. Len, W. S. Darius Koh, S. X. Tan, "The roles of reactive oxygen species and antioxidants in cryopreservation", Bioscience Reports, vol. 39, no. 8, Aug. 2019. DOI: https://doi.org/10.1042/BSR20191601 

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