[논문]양식 붉바리(Epinephelus akaara) 종자의 개발과 사양관리

부문수; 이치훈; 문영건; 김병훈; 김민석; 김대근; 백혜자; 김형배; 이영돈

doi:10.5657/kfas.2020.0506

양식 붉바리(Epinephelus akaara) 종자의 개발과 사양관리
Management and Development of Seed Rearing in Red Spotted Grouper Epinephelus akaara 원문보기

한국수산과학회지 = Korean journal of fisheries and aquatic sciences, v.53 no.4, 2020년, pp.506 - 514

부문수 (어업회사법인 씨알 주식회사) , 이치훈 (어업회사법인 씨알 주식회사) , 문영건 (어업회사법인 씨알 주식회사) , 김병훈 (제주대학교 해양과학연구소) , 김민석 (어업회사법인 씨알 주식회사) , 김대근 (어업회사법인 씨알 주식회사) , 백혜자 (부경대학교) , 김형배 (강원도립대학교) , 이영돈 (제주대학교 해양과학연구소)

Abstract ▼ AI-Helper

We investigated seed management and feeding regime of larval red spotted grouper Epinephelus akaara using live food organisms. Fertilized eggs were produced in March 2020 by manipulating photoperiod and water temperature. Broodstock (F0) produced approximately 0.30×106 eggs, of which 0.25×106 were fertilized; first-generation broodstock (F1) produced 2.00×106 eggs, of which 1.90×106 were fertilized. Larvae were reared at temperatures of 21.0-24.5℃. The feeding regime consisted of rotifers Artemia, and commercial pellet feed. From 5-8 days after hatching (dah), rotifers collected from high-density incubation tanks were fed to grouper larvae at a density of 10-20 individuals/mL. From 9-30 dah, rotifers collected from low-density incubation tanks were fed to larvae at a density of 10-20 individuals/mL. Newly hatched Artemia were provided from 20-24 dah and enriched Artemia from 25-50 dah. Commercial pellet feed was given starting at 13 dah. The average mouth size in hatchlings was 263.4±3.7 ㎛ at 5 dah, 406.7±21.0 ㎛ at 11 dah, and 856.9±136.6 ㎛ at 21 dah. At 1 dah, larvae had a mean total length of 1.95±0.06 mm. At 66 dah, the mean TL was 4.0 cm. The final number of surviving red spotted grouper larvae was 218,380 fishes.

주제어

표/그림 (14)

그림 Fig. 1. Changes in upper jaw length of red spotted grouper Epinephelus akaara larva.
그림 Fig. 2. Comparison of rotifer size with different culture methods.
표 Table 1. Induced ovulation and artificial fertilization of red spotted grouper Epinephelus akaara13 6010 20 40 500 5 7 2430
그림 Fig. 3. Freshly-hatched Artemia (A) and enriched Artemia after hatching 30 h (B). Commercial pellet feed
표 Table 2. Changes in total amount and egg-carried rotifers during high density culture time
표 Table 3. Size frequency of rotifer with different culture methods
그림 Fig. 4. Photomicrographs showing the presence of rotifer in larval guts on 5 DAH.
그림 Fig. 5. Histological observation of rotifer mastix in larval intes-tine 8 DAH.
표 Table 4. Changes in mouth size of red spotted grouper Epinephelus akaara larva with growth
표 Table 5. Production of seed red spotted grouper Epinephelus akaara according to total length at 66 day after hatching
그림 Fig. 6. Feeding scheme during larval rearing of red spotted grouper Epinephelus akaara.
그림 Fig. 7. Changes in total length of red spotted grouper Epinephelus akaara during culture period.
그림 Fig. 8. Larval and seed development of red spotted grouper Epinephelus akaara.
그림 Fig. 9. Seed red spotted grouper Epinephelus akaara according to total length at 66 days after hatching.

AI 본문요약
AI-Helper

* AI 자동 식별 결과로 적합하지 않은 문장이 있을 수 있으니, 이용에 유의하시기 바랍니다.

문제 정의

이 연구는 붉바리 종자생산을 위한 수정란 생산과 성장단계별 먹이생물 공급 그리고 사양관리 정보를 탐색하여 붉바리 종자 대량생산에 적용하고자 한다.

제안 방법

42시간 경과 후 rotifer 밀도가 높아짐에 따라 63.4억개체(6.34×104 inds/mL)에서 34.5억(5.45×104 inds/mL)으로 rotifer 개체수를 조절하였다.
42×10¹³ cell/mL을 정량 펌프로 일정하게 공급하였다. Rotifer 계수는 배양시작부터 3시간 간격으로 6일동안 1회 3반복으로 광학현미경하에서 측정하였고, 포란한 rotifer는 포란된 알의 수에 따라 2개 포란, 3개 포란, 4개 포란 rotifer를 구분하여 계수하였다. 부화자어에게 첫 공급되는 rotifer 20 mL 채집하여 rotifer의 크기를 광학현미경을 이용하여 0.
5 ton)에 Artemia 부화 밀도는 최대 200 cell/mL 이하로 하였다. 갓 부화한 Artemia의 크기는 배양수조에서 무작위로 10마리를 채집하여 체장을 측정하였다.
그리고 부화자어 사육수조에 공급 된 rotifer의 영양강화를 위하여 영양강화용 농축 chlorella (1.5×1010 cell/cc)를 하루에 2회 부화자어 사육수조에 공급하였다.
0을 유지하였다. 먹이는 상업용 시판 EP사료와 전갱이, 고등어, 오징어를 하루 2회 교차 공급하였다. 붉바리 알과 정자는 2020년 3월에 cannulation을 방식을 이용해 성숙한 암컷과 수컷 개체를 선발한 후, 체중 kg당 500 IU의 HCG (Human Chorionic Gonadotropin)를 주사하여 48시간 뒤에 복부 압박법을 통해 배란 및 배정을 유도하여 얻었고, 수정은 습식법을 통해 인공수정란을 생산하였다.
먹이생물의 적합한 공급 시기를 탐색하기 위해 초기 먹이생물을 섭이하는 부화 후 5일(고밀도 배양 rotifer 공급), 부화 후 11일(저밀도 배양 rotifer 공급), 부화 후 21일(Artemia 공급)에 5-10마리 내외의 종자를 채집하여 구경을 조사하였다. 구경(d)은 어체의 상악장 크기(upper jaw length, UJL)를 기준으로 설정한 Shirota (1970)의 방법을 이용해 d=√2×UJL 식으로 구하였다(Fig.
배합사료는 시판중인 초기 미립자 사료(Love Larva pellet, Fukuoka, Japan)를 이용하여 부화 후 13일부터 공급하였고, 사료 붙임이 시작되는 시점에서는 20분 간격으로 공급하였다.
부화 후 5일에 전체 종자의 개구가 완료되었고, 활발한 섭이활동이 관찰되었다. 부화 후 5일부터 8일까지 rotifer를 공급하였다. 부화 후 9일부터 30일까지는 영양강화 된 고밀도 rotifer를 공급하였다.
부화 후 5일부터 8일까지 rotifer를 공급하였다. 부화 후 9일부터 30일까지는 영양강화 된 고밀도 rotifer를 공급하였다. 종자 사육수조의 rotifer 개체수는 10-20개체/mL를 유지시켜 주었다.
부화자어에게 첫 공급되는 rotifer 20 mL 채집하여 rotifer의 크기를 광학현미경을 이용하여 0.1 μm까지 크기를 계측하였다.
붉바리 종자의 성장을 조사하기 위해 부화 후 1일부터 부화 후 60일까지 무작위로 10마리의 내외의 종자를 채집하고 광학현미경과 실체현미경을 이용해 전장을 0.1 μm까지 측정하였다.
6). 사육과정 중 공식 방지를 위해 변태가 완료되는 시기부터 1주일 간격으로 선별을 하였다.
1°C로 유지하였다. 수질관리를 위해 광주기 조건은 부화 후 13일까지 24 L로 유지하고 부화 후 14일부터는 12 L로 조절하였다. 부화자어 사육수조의 수질 안정화를 위해 생균제 Rhodobacter capsulata, Bacillus subtilis, B.
Artemia 영양강화용제제는 영양강화용 농축 chlorella과 Artemia 전용 영양강화제제, 비타민 제제, 미네랄 제제, Vit B12 제제를 사용하였다. 영양강화 후 Artemia의 크기는 부화 후 24시간이 지난 Artemia를 수거하여 무작위로 10개체의 전장을 측정하였다.
채집한 종자는 슬라이드 글라스에 올려놓고 커버글라스로 압착시킨 후 광학현미경을 이용해 rotifer 치설 유무로 확인하였고, paraffin 절편법에 의해 조직표본을 제작하여 Hansen’s hematoxylin과 0.5% eosin으로 비교 염색한 후 소화관내 먹이생물 섭이를 관찰하였다.

대상 데이터

2, 염분 25 psu를 유지하였다. Artemia 영양강화용제제는 영양강화용 농축 chlorella과 Artemia 전용 영양강화제제, 비타민 제제, 미네랄 제제, Vit B12 제제를 사용하였다. 영양강화 후 Artemia의 크기는 부화 후 24시간이 지난 Artemia를 수거하여 무작위로 10개체의 전장을 측정하였다.
Artemia는 시판 중인 미국산 제품(2.5×105 cell/g; INVE Aquaculture INC, Salt Lake City, UT, USA)을 사용하였다.
남해안에서 주낙으로 어획한 자연산 붉바리(F0, 암컷 6마리, 전장 41.0-46.3 cm, 체중 1163-2152 g과 수컷 10마리, 전장 45.4-53.0 cm, 체중 1530-2415 g)와 양식1세대(F1) 붉바리(암컷 39마리, 전장 31.0-40.0 cm, 체중 567-976 g, 수컷 10마리, 32.0-42.4 cm, 체중 578-1032 g)를 어미 사육관리동에서 순환여과시스템으로 2019년 11월부터 2020년 3월까지 광주기 및 사육수온을 조절하여 사육관리 하였다. 사육관리는 콘크리트 사각수조(5.
수질관리를 위해 광주기 조건은 부화 후 13일까지 24 L로 유지하고 부화 후 14일부터는 12 L로 조절하였다. 부화자어 사육수조의 수질 안정화를 위해 생균제 Rhodobacter capsulata, Bacillus subtilis, B. licheniformis, B. pumilus를 공급 하였다. 그리고 부화자어 사육수조에 공급 된 rotifer의 영양강화를 위하여 영양강화용 농축 chlorella (1.
수정 후 부상란을 분리 수거하여 종자배양동원형수조(Ø 4.0×1.2 m, 유효 수량 12.0 ton) 7개에 2.29×106개 입식 하였다.
종자의 먹이생물 섭이율을 조사하기 위하여 고밀도로 배양한 rotifer가 공급되는 시기인 부화 후 5일, 6일에 각각 20마리의 종자를 채집하였다. 채집한 종자는 슬라이드 글라스에 올려놓고 커버글라스로 압착시킨 후 광학현미경을 이용해 rotifer 치설 유무로 확인하였고, paraffin 절편법에 의해 조직표본을 제작하여 Hansen’s hematoxylin과 0.

이론/모형

Rotifer는 고밀도 배양방법(Yoshimura et al., 1996)을 응용하여 배양하였다. 배양 조건은 아크릴 원형수조(Ø 0.
구경(d)은 어체의 상악장 크기(upper jaw length, UJL)를 기준으로 설정한 Shirota (1970)의 방법을 이용해 d=√2×UJL 식으로 구하였다(Fig. 1).

성능/효과

0.5D와 0.75D는 각각 131.7±1.8 μm와 197.6±2.8 μm이었다.
45×10⁴ inds/mL)으로 rotifer 개체수를 조절하였다. 84시간 경과 후 2개의 알을 포란한 rotifer, 3개의 알을 포란한 rotifer, 4개 이상의 알을 포란한 rotifer 개체수가 각각 382개체/0.1 mL, 101개체/0.1 mL, 10개체/0.1 mL로 가장 높은 수치를 보였다(Table 2).
Artemia 부화 유생의 크기 변화를 측정하기 위해 부화 직후 Artemia와 부화 후 30시간이 지난 영양강화 된 Artemia를 약 10마리 채집하여 조사한 결과 부화 직후 Artemia 부화유생의 전장은 평균 488.17±22.01 μm, 부화 후 30시간 전·후 Arte mia 부화유생 전장은 평균 785.53±58.37 μm로 조사되었다(Fig. 3).
그리고 고밀도 배양방법에서 피갑장 120-150 μm 크기의 rotifer의 비율이 전체 43.15% 가장 높은 비율을 보였고, 저밀도 배양방법에서는 150-180 μm 크기의 rotifer가 전제의 57.89%였다(Table 3).
또한 부화 후 11일째 붉바리 구경(D)은 406.7±21.3 μm이고, 0.75D는 305.0±16.0 μm, 0.5D는 203.3±10.6 μm이므로, 저밀도 배양방법으로 생산한 rotifer 개체의 대부분(87.36%) 크기가 150-200 μm 범위를 차지하여 자어의 먹이 섭취로 가능하다고 생각된다.
배양방법에 따른 rotifer 피갑장의 크기 분포 비율을 조사한 결과, 고밀도 배양방법에서 피갑장 100 μm 이하의 rotifer는 전체에 3.15%, 피갑장 100-120 μm는 16.84%를 차지했으나 저밀도 배양방법에서는 한 개체도 보이지 않았다.
부화 11일째 부화자어의 구경(D)은 406.7±21.3 μm, 0.5D와 0.75D는 각각 203.3±10.6 μm, 305.0±16.0 μm로 커졌고, 부화 21일 부화자어의 구경(D)은 856.9±136.3 μm, 0.5D와 0.75D는 각각 428.4±68.3 μm, 642.7±102.4 μm 크기로 발달하였다(Table 4).
부화 후 5일에 전체 종자의 개구가 완료되었고, 활발한 섭이활동이 관찰되었다. 부화 후 5일부터 8일까지 rotifer를 공급하였다.
7 and 8). 부화 후 66일차 총 218,380마리를 생산하였고, 전장 분포는 전장 3.0 cm 이하 62,800마리(28.75%), 3.0-4.0 cm 88,940마리(40.73%), 4.0 cm이상 66,640마리(30.52%)를 보였다(Table 5, Fig. 9).
이 연구에서 안정적인 붉바리 종자생산을 위한 rotifer 배양조건과 부화자어 구경에 따른 적정 먹이생물 공급 시기를 탐색한결과, 첫 먹이 섭이율 증가를 위해서는 고밀도 배양을 통해 생산된 120 μm 이하 rotifer (3개 이상의 알을 포란한 rotifer)를 공급하는 것이 적합하다고 본다.
2019년 11월부터 광주기 및 수온 조절을 통해 성숙을 유도한 후 2020년 3월에 인공수정란을 생산하였다. 자연산 어미(F0)에서 암컷 6마리 중 4마리, 수컷 10마리중 5마리에서 배란 및 배정되었고, 양식1세대(F1)어미에서는 암컷 39마리 중 32마리에서 배란되었고, 수컷 10마리 중 10마리에서 배정이 유도되었다. 자연산 어미(F0)에서 총 배란된 양은 0.
자연산 어미(F0)에서 총 배란된 양은 0.3×106개었고 수정률 83.3%, 부화율 87.0%이었고, 양식1세대(F1)어미에서 총 배란된 양은 2.00×106개었고, 수정률 95.0%, 부화율 90.0%이었다(Table 1).
첫 먹이를 공급 후 부화 5일과 6일째 종자의 rotifer 섭이율을 조사한 결과, rotifer 섭이율은 모두 95%로, 20마리 종자 중 1마리를 제외한 19마리의 소화관에서 rotifer 치설이 관찰되었다(Fig. 4 and 5).
한편, 고밀도 배양방법을 통해 rotifer를 생산한 결과, 120μm 이하의 rotifer가 19.99% 관찰되었고, 부화 후 5일경 초기 부화자어에게 공급한 결과 95%의 섭이율을 보였다.

후속연구

자어가 성장하면서 구경이 커지는 부화 10일 전후에는 저밀도 배양을 통해 생산된 rotifer (150-200 μm)를 공급하고, 부화 후 20일경에는 시판하는 artemia를 공급하는 것이 붉바리 종자 생산의 생존율 향상에 기여한다고 사려된다. 향후 안정적인 붉바리의 종자양식 산업화를 위해 초기 부화자어에 적합한 먹이생물 배양시스템 개발을 통한 안정적인 대량생산 기술개발과 종자생산 효율성 제고를 위한 지속적인 사양관리 기술개발이 요구된다.

질의응답

핵심어	질문	논문에서 추출한 답변
	어류 완전양식 상용황에 중요한 기본요소는 무엇인가?	어류의 종자생산은 어류 완전양식 상용화에 중요한 기본요소이다. 종자생산에 필요한 요소들은 건강한 배우자의 안정적 확보, 수정란 생산, 부화자어 사육환경관리, 자어의 성장 발달에 따라 자어의 구경에 적합한 먹이생물 공급 등 인위적인 환경조건에서 종자가 안정적으로 성장하고 생존하는 요소를 갖추어야 한다(Watanabe et al.
	바리과 어류가 가지는 성 특성은?	, 2005). 바리과 어류는 자성선숙형 자웅동체의 성 특성을 가진다. 바리류 종자생산에서 바리류 어미의 번식특성과 성 성숙유도, 안정적인 수정란 생산 그리고 종자생산 과정에 애로사항이 많다(Tsuchihashi et al.
	어류의 종자생산에서 필요한 요소는?	어류의 종자생산은 어류 완전양식 상용화에 중요한 기본요소이다. 종자생산에 필요한 요소들은 건강한 배우자의 안정적 확보, 수정란 생산, 부화자어 사육환경관리, 자어의 성장 발달에 따라 자어의 구경에 적합한 먹이생물 공급 등 인위적인 환경조건에서 종자가 안정적으로 성장하고 생존하는 요소를 갖추어야 한다(Watanabe et al., 1996; Bisht et al.

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저자의 다른 논문 :

표제어: PCR

동의어: Packet Collision Rate

용어 설명 출처 목록 (6)

용어 설명: PCR은 세균 특이성이 있는 primer를 이용하여 적은 수의 세균이 있을지라도 쉽게 검출할 수 있는 유용한 방법이며, 이를 이용하여 구강 내 치면세균막이나 타액에서 직접 세균을 검출할 수 있게 되었다[8].

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