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'매향' 딸기의 조직배양 시 coconut water 처리에 따른 기내 증식효율 향상
Improvement of proliferation efficiency of strawberry 'Maehyang' treated by coconut water in tissue culture 원문보기

Journal of plant biotechnology = 식물생명공학회지, v.47 no.3, 2020년, pp.242 - 247  

김혜진 (국립식량과학원 고령지농업연구소) ,  최미자 (국립식량과학원 고령지농업연구소) ,  이종남 (국립식량과학원 고령지농업연구소) ,  서종택 (국립식량과학원 고령지농업연구소) ,  김기덕 (국립식량과학원 고령지농업연구소) ,  김율호 (국립식량과학원 고령지농업연구소) ,  홍수영 (국립식량과학원 고령지농업연구소) ,  김수정 (국립식량과학원 고령지농업연구소) ,  손황배 (국립식량과학원 고령지농업연구소)

초록
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본 실험은 딸기 조직배양 시 증식률 향상을 위해 coconut water의 적정처리 농도 구명하고자 실시하였다. 본 실험에 사용된 시험 품종은 '매향'이며, BA 0.5 mg·L-1와 IBA 0.1 mg·L-1을 혼합처리한 배지에 coconut water를 0, 20, 40, 60, 80, 100 ml·L-1로 첨가하여 실험하였다. Coconut water 처리 시 형태적 변이검정과 SSR 검정을 통해 변이 발생 유무를 확인하였다. '매향'은 무처리에 비해 coconut water 처리에서 증식률이 향상되었으며, 특히 coconut water 100 ml·L-1 처리에서 증식률이 약 4배 향상되었다. '매향'에 coconut water 100 ml·L-1 처리 시 형태적 변이체가 2개체 발생하였으나 유전적 차이는 보이지 않았다. 따라서 '매향' 조직배양 시 coconut water 100 ml·L-1를 처리하면 유전적 변이없이 대량증식이 가능할 것으로 판단된다.

Abstract AI-Helper 아이콘AI-Helper

This experiment was performed to determine the concentration of coconut water that is most effective in promoting the growth of 'Maehyang' strawberry in tissue culture. Cultivars in this experiment consisted of 'Maehyang' grown in the presence of 0, 20, 40, 60, 80, 100 ml·L-1 of coconut water...

주제어

AI 본문요약
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문제 정의

  • 그러나 ‘매향’은 같은 농도의 BA와 IBA를 처리해도 증식률이 저조하여(데이터 미제시), 식물생장조절물질이 아닌 천연물질을 첨가하여 증식률을 향상시키고자 하였다.
  • 따라서 본 실험은 매향의 증식률 향상을 위해 coconut water의 적정 처리 농도를 구명하고, 적정 농도의 coconut water 처리 시 유전적 변이 발생 유무를 확인하고자 하였다.
  • 본 실험은 딸기 조직배양 시 증식률 향상을 위해 coconut water의 적정처리 농도 구명하고자 실시하였다. 본 실험에 사용된 시험 품종은 ‘매향’이며, BA 0.
  • 본 연구는 Kim et al. (2020)의 결과를 바탕으로 변이 발생이 적은 BA 안정 농도 처리(BA 0.5 mg・L-1과 IBA 0.1 mg・L-1혼합 처리) 시 증식률이 낮은 ‘매향’ 품종의 안정적인 조직배양묘 증식을 위하여 coconut water 100 ml・L-1를 함께 첨가하여 배양하면 조직배양묘의 대량생산이 가능할 것으로 판단된다.
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참고문헌 (37)

  1. Abdullahil MB, Shin YK, Elshmari T, Lee EJ. Paek KY (2011) Effect of light quality, sucrose and coconut water concentration on the micropropagation of Calanthe hybrids ('Bukduseong' $\times$ 'Hyesunt' and 'Chunkwang' $\times$ 'Hyesung'). Australian. J. Crop Sci. 5:1247-1254 

  2. Anderson G, Lewis-Smith AC, Chamberlain M, Smith SM (1991) Variation in organization and copy number of ribosomal RNA genes in Petunia hybrida somaclones. Biologia Plantarum 33:206-210 

  3. Arditti J (2008) Micropropagation of Orchids, vol. II., second ed. Blackwell Publishing, Oxford, UK. 

  4. Biswas MK, Islam R, Hossain M (2008) Micropropagation and field evaluation of strawberry in Bangladesh. J. Agric. Technol. 4:167-182 

  5. Boase M, Wright S, McLeay PL (1993) Coconut milk enhancement of axillary shoots growth in vitro of kiwifruit. N. Z. J. Crop Hort. Sci. 21:171-176 

  6. Buah J and Agu-Asare P (2014) Coconut water from fresh and dry fruits as an alternative to BAP in the in vitro culture of dwarf Cavendish banana. J. Bio. Sci. 14:521-526 

  7. Darnell R, Cantliffe D, Kirschbaum D, Chandler C (2003) The physiology of flowering in strawberry. Hort. Rev. 28:325-349 

  8. Faedi W, Mourgues F, Rosati C (2002) Strawberry breeding and varieties: situation and perspectives. Acta Hort. 567:51-59 

  9. Ferreira MA, Caldas LS, Pereira EA (1998) Aplicacoes da cultura de tecidos no melhoranento genetico de plantas. In: Torres AC, Caldas LS, Buzzo JA. Cultura de tecidos e transformacao genetica de plantas. Brasilia, Embrapa 1:864pp. 

  10. Govan GL, Simpson DW, Johnson AW, Tobutt KR, Sargent DJ (2008) A reliable multiplexed microsatellite set for genotyping Fragaria and its use in a survey of 60 F. $\times$ ananassa cultivars. Mol. Breeding 22:649-661 

  11. Honjo M, Nunome T, Kataoka S, Yano T, Yamazaki H, Hamano M, Yui S, Morishita M (2011) Strawberry cultivar identification based on hypervariable SSR markers. Breeding Sci. 61:420-425 

  12. Jayasih Y and Wattimena D (1994) The effect of coconut water and zeolite on micropropagation of potato shoot. Acta Hortic. 369:451-454 

  13. Kaeppler SM, Kaeppler HF, Rhee Y (2000) Epigenetic aspects of somaclonal variation in plants. Plant Mol. Biol. 43:179-188 

  14. Kane EJ, Wilson AJ, Chourey PS (1992) Mitochondrial genome variability in Sorghum cell culture protoclones. Theor. Appl. Genet. 83:799-806 

  15. Khatun M, Roy PK, Razzak MA (2018) Additive effect of coconut water with various hormones on in vitro regeneration of carnation (Dianthus caryophyllus L.). 28:589-596 

  16. Kim HJ, Lee JN, Choi MJ, Suh JT (2019) Comparison of in vitro propagation and occurrence of morphological and genetic variation in strawberry tissue culture with various plant hormone treatments. J Plant Biotechnol. 46:106-113 

  17. Kim HJ, Choi MJ, Lee JN, Suh JT, Kim GD, Kim YH, Hong SY, Kim SJ, Sohn HB, Nam JH (2020) Occurrence and identification of genetic variation and variation continuity in strawberry tissue culture caused by benzyladenine treatment. J Plant Biotechnol. 47:46-52 

  18. Koruza B and Jeleska S (1993) Influence of meristem culture and virus elimination on phenotypical modifications of grapevine (Vitis vinifera L., cv. Refosk). Vitis 32:59-60 

  19. Kristina NN, Syahid SF (2012) The effect of coconut water on in vitro shoots multiplication, rhyzome yield, and xanthorrhizol content of Java turmeric in the field. J. Littri. 18:125-134 

  20. Krikorian AD (1991) Medios de cultivo : generalidades, composicio y preparacion. In: Roca WM, Mrofinski LA (Eds). Cultivo de tejidos em la agricultura. Colombil: Centro Internacional de Agricultura Tropical. p.41-77 

  21. Krug M, Stipp L, Rodriguez A, Mendes B (2005) In vitro organogenesis in watermelon cotyledons, Pesquisa Agropecuaria Brasileira Brasilia. 40:861-865 

  22. Lee JN, Kim HJ, Kim KD, Kwon YS, Im JS, Lim HT, Yeoung YR (2010) In vitro mass propagation and economic effects of bioreactor culture in ever-bearing strawberry 'Goha'. Hort. Sci. Technol. 28:845-849 

  23. Mathias R and Simpson E (1986) The interaction of genotype and culture medium on the tissue culture responses of wheat (Triticum aestivum L.) callus. Plant Cell Tissue Organ Cult. 7:31-37 

  24. Mondal S, Ahirwar MK, Singh MK, Singh RP (2015) Effect of coconut water and ascorbic acid on shoot regeneration in banana variety dwarf Cavendish. Int. J. Bio-res. Env. Agri. Sci. 1:65-69 

  25. Murashige T and Skoog F (1962) A Revised medium for rapid growth and bio assays with tobacco tissue cultures. Plant Physiology 15:473-497 

  26. Nasib A, Ali K, Khan S (2008) An optimized and improved method for the in vitro propagation of kiwifruit (Actinidia deliciosa) using coconut water. Pakistan J. Bot. 40:2355-2360 

  27. Parthibhan S, Rao MV, Kumar TS (2015) In vitro regeneration from protocorms in Dendrobium aqueum Lindley - an imperiled orchid. J. Genet. Eng. Biotechnol. 13:227-233 

  28. Peixe A, Raposo A, Lourenco, Cardoso H, Macedo E (2007) Coconut water and BAP successfully replaced zeatin in olive (Olea europaea L.) micropropagation. Scientia Horticulturae 113:1-7 

  29. Pyati A, Murthy A, Hahn E, Paek KY (2002) In vitro propagation of Dendrobium macrostachyum L. A threatened orchid. Indian J. Exp. Biol. 40:620-623 

  30. Raja HD, Jenifer AM, Steffi PF, Thamilmaraiselvi B, Srinivasan P, Tamilvanan R (2018) Micropropagation of Plumbago zeylanica - an important medicinal plant. J. Pharmacy and Phamaceutical Sciences 7:1823-1829 

  31. Roy PK (2008) Rapid multiplication of Boerhaavia diffusa L. through in vitro culture of shoot tip and nodal explants. Plant Tiss. Cult. and Biotech. 18:49-56 

  32. Sargent DJ, Clarke J, Simpson DW, Tobutt KR, Arus P, Monfort A, Vilanova S, Denoyes-Rothan A, Rousseau M, Bassil NV, Battey NH (2006) An enhanced microsatellite map of diploid Fragaria. Theor. Appl. Genet. 112:1349-1359 

  33. Sherif NA, Kumar TS, Rao MV (2016) In vitro regeneration by callus culture of Anoectochilus elatusn Lindley, and endangered terrestrial jewel orchid. In vitro cell. Dev. Biol. Plant 52:72-80 

  34. Van Overbeek J, Conklin ME, Blakeslee AF (1941) Factors in coconut milk essential for growth and development of very young Datura embryos. Science 94:350-351 

  35. Villa F, Pasqual M, Faria Freitas G (2009) Optimization of a protocol for the micropropagation of olive tree CV. Revista Ceres. 57:530-534 

  36. Yong JW, Ge L, Ng YF, Tan SN (2009) The chemical composition and biological properties of coconut (Cocos nucifera L.) water. Molecules 14:5144-5164 

  37. Yoon YJ, Murthy HN, Hahn EJ, Paek KY (2007) Biomass production of Anoectichilus formosanus Hayata in a bioreactor system. J. Plant Biol. 50:573-576 

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