[논문]프로바이오틱스에 의한 레자주린의 화학적 변화와 생균수 및 환원활성 측정에의 적용

이효원; 오영지; 홍정일

doi:10.9721/kjfst.2021.53.2.204

프로바이오틱스에 의한 레자주린의 화학적 변화와 생균수 및 환원활성 측정에의 적용
Chemical changes in resazurin by probiotics and its application for evaluating living bacterial cell counts and their reduction potentials 원문보기

한국식품과학회지 = Korean journal of food science and technology, v.53 no.2, 2021년, pp.204 - 212

이효원 (서울여자대학교 자연과학대학 식품응용시스템학부) , 오영지 (서울대학교 식품바이오융합연구소) , 홍정일 (서울여자대학교 자연과학대학 식품응용시스템학부)

초록
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본 연구에서는 살아있는 프로바이오틱스 균주에 의한 레자주린의 흡광 및 형광특성의 변화와 레소루핀과의 반응성을 분석하고, 균주별 레자주린에 대한 환원능을 비교하였다. LGG에 의해 레자주린은 흡광과 형광의 변화를 수반하며 레소루핀으로 환원되고 반응시간과 생균수의 증가에 따라 환원정도가 증가하였으며, 형광의 변화에서 더 정확하고 민감한 반응성을 보였다. 한편 LGG에 의한 레소루핀으로부터 다이하이드로레소루핀으로의 환원반응은 거의 유발되지 않았다. 프로바이오틱스 6개 균주 중 L. kimchicus의 생균에 의한 레자주린 환원력이 월등하게 높은 반면, 균체 파쇄 후의 ABTS 및 DPPH 라디칼 소거능은 다른 양상을 보이며 L. plantarum과 L. casei가 높은 활성을 나타냈다. 한편 생균의 MTT 환원능은 L. kimchicus가 LGG에 비해 현저히 높아 레자주린 환원능과 유사한 양상을 보였다. 본 연구결과는 레자주린이 단일 균주 프로바이오틱스의 생균수 측정에 유용하며, 프로바이오틱스의 선별 및 환원활성 측정에 활용될 수 있음을 시사한다.

Abstract ▼ AI-Helper

Resazurin, an oxidized blue dye, is reduced to resorufin, showing a peak absorbance change and emitting fluorescence due to the metabolic activity of living cells. In this study, the growth of Lactobacillus rhamnosus GG (LGG) and the redox potential of living probiotic bacteria were evaluated based on changes in the absorbance or fluorescence of resazurin. Fluorescence analysis is a more accurate and sensitive method for quantifying viable LGG than the colorimetric absorbance measurement of resazurin change. Fluorescence measurement could detect LGG of 6.5-9.5 log CFU/mL within 30 min with R2=0.99. No significant effect of further reduction of resorufin to dihydroresorufin by LGG was observed. Various probiotics showed different resazurin-reducing activities, and L. kimchicus had the highest reducing activity among the six probiotics tested. These findings suggests that fluorescence measurement in a resazurin-based assay is useful for analyzing bacterial growth and the redox potential of living probiotics.

주제어

표/그림 (6)

그림 Fig. 1. Chemical changes of resazurin by living bacteria and comparison with different bacterial growth assays. Changes in absorbance (A) and fluorescence (B) spectrums of resazurin (100 μM) incubated with LGG (9.8 log CFU/mL) at different time (0-240 min) were shown. Colony counting assay and turbidity analysis at 600 nm were performed for analyzing LGG growth during 72 h (C). Resazurin-based assay by colorimetric changes (D), and fluorescence changes (E) with different incubation times were also compared. Each value represents the mean±SD (n=3, except n=2 for viable cell counts). Different letters indicate a significant difference (p<0.05) based on one way ANOVA and the Tukey's HSD test.
그림 Fig. 2. Chemical changes of resazurin by LGG for different incubation periods and linear regression between resazurin reduction vs. viable cell numbers. Resazurin was incubated with different numbers of living LGG (6.5-9.5 log CFU/mL) during different periods (15-180 min). At each incubation time, reduction rate from colorimetric changes (A) and fluorescence intensity (B) were analyzed. Linear regressions between viable cell numbers vs. reduction percentage (C), or vs. fluorescence intensity (D) within linear region were shown with each incubation period (correlation coefficient, R²). Each value represents the mean±SD (n=3).
그림 Fig. 3. Comparison of correlation and accuracy between colorimetric and fluorescence analysis for resazurin reduction by living bacteria. Correlation of reduction rate based on colorimetric analysis and fluorescence intensity from resazurin reduction by different cell numbers of living LGG were compared at 30 min incubation (A). CVs of measured values from reduction percentage, fluorescence intensity and plate counts were also compared (B) Each value represents the mean±SD (n=3).
그림 Fig. 4. Effects of living LGG on resorufin reduction to dihydroresorufin. Changes in absorbance (A) and fluorescence (B) spectrums of resorufin by incubation with living LGG (9.5 log CFU/mL) were shown at different time (0-240 min). Changes in absorbance at 570 nm (C) and fluorescence intensity (D) of resorufin were also analyzed at each incubation time. Each value represents the mean±SD (n=3). Different letters indicate a significant difference (p<0.05) based on one way ANOVA and the Tukey's HSD test (C and D).
그림 Fig. 5. Comparison of resazurin reduction abilities by different probiotics bacteria. Resazurin was incubated with different numbers of 6 different probiotics for 30 min and changes in reduction rate (A) and fluorescence intensity (B) were analyzed. Slopes from cell numbers vs. reduction rate (C) or vs. fluorescence intensity (D) by each bacterium were also calculated. Each value represents the mean±SD (n=3). Different letters indicate a significant difference (p<0.05) based on one way ANOVA and the Tukey's HSD test (C and D).
그림 Fig. 6. Antioxidant activities of probiotic bacteria and abilities of MTT reduction by LGG and L. kimchicus. Scavenging activities of ABTS (A) and DPPH (B) radicals of 6 probiotic bacterial cell lysates were analyzed. Abilities of MTT reduction by living LGG and L. kimchicus were also compared (C). Each value represents the mean±SD (n=3). Different letters indicate a significant difference (p<0.05) based on one way ANOVA and the Tukey's HSD test (A and B).

AI 본문요약
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문제 정의

이를 위해 Lactobacillus rhamnosus GG 생균에 의한 레자주린 화학적 변화와 정확한 균수 측정에 영향을 미치는 간섭 요인들을 파악하고, 레자주린으로부터 환원된 레소루핀이 LGG에 의해 다이하이드로레소루핀으로의 추가 환원 가능성에 대해서도 검토하였다. 또한 LGG를 비롯한 프로바이오틱스의 생균수 측정은 물론 균주별 생균 환원 특성 파악을 위한레자주린의 활용 가능성을 조사하였다.
본 연구에서는 실험실에서 널리 사용되는 도말 평판 배양법과 같은 미생물의 생균수 측정방법이 가지고 있는 여러 한계를 보완하고 관련 실험 시스템의 간편화를 위한 레자주린의 활용 가능성을 제시하고자 하였다. 이를 위해 Lactobacillus rhamnosus GG 생균에 의한 레자주린 화학적 변화와 정확한 균수 측정에 영향을 미치는 간섭 요인들을 파악하고, 레자주린으로부터 환원된 레소루핀이 LGG에 의해 다이하이드로레소루핀으로의 추가 환원 가능성에 대해서도 검토하였다.

제안 방법

LGG 1% 접종액을 35 C 배양기에서 0-72시간 동안 배양하면서 배양기간 별 성장정도를 레자주린 분석과 병행하여, 탁도 측정(600nm) 및 도말 평판 배양법으로 분석하였다. 탁도 측정을 위해 배양 시간별 LGG 현탁액의 흡광도를 600nm에서 측정하였다.
생균에 의한 레소루핀의 추가적 환원 여부를 LGG를 이용하여 조사하였다. LGG를 MRS broth 배지에 접종하여 35 C에서 24시간 동안 배양하고 원심분리(2, 500×g, 5분, RT) (HWLAB)하여 회수한 균체를 PBS로 2회 세척하였다. LGG의 희석 용액(6.
LGG와 L. kimchicus 생균의 환원 능력을 비교하기 위해 MTT 를 사용하여 분석하였다. LGG와 L.
kimchicus 생균의 환원 능력을 비교하기 위해 MTT 를 사용하여 분석하였다. LGG와 L. kimchicus를 1% 접종하여35 C 배양기에서 24시간 동안 배양한 후 위와 동일한 방법으로 세척, 원심분리하여 0~80배 생균 희석액을 제조하였다. 각 희석용액 5mL에 5mg/mL의 MTT 500μL를 첨가하여 15분 동안 반응시킨 후, 원심분리(2, 500×g, 3분)하여 균체를 회수하였다.
이에 1N NaOH를 1mL 분주하여 균체를 파쇄하고 균체 내에 생성된 MTT formazan을 용해시킨 후 200μL를 96 well plate에 분주하여 550nm에서 흡광도를 측정하였다(Spectra Max M3). MTT 분석에 사용된 LGG와 L. kimchicus는 PBS로 세척 후 멸균 생리식염수로 단계별 희석하였고 MRS agar (Difco)평판 배지에 도말하여 35 C에서 24시간 동안 배양하여 계수하였다.
Comparison of resazurin reduction abilities by different probiotics bacteria. Resazurin was incubated with different numbers of 6 different probiotics for 30 min and changes in reduction rate (A) and fluorescence intensity (B) were analyzed. Slopes from cell numbers vs.
이를 15, 000×g에서 3분 동안 원심분리하여 상등액을 취해 균 파쇄액을 얻었고, 단백질 함량은 소혈청 알부민을 표준물질로 하여 Coomassie brilliant blue G-250을 사용하여 정량하였다(Bradford, 1976). 각 균 파쇄액의 산화방지활성은 2, 2'-azinobis-(3-ethyl-benz-thiazoline-6- sulfonic acid) (ABTS) (Re 등, 1999)와 2, 2-diphenyl-1-picryl- hydrazyl (DPPH) (Blois, 1958) 라디칼 소거활성으로 측정하였다. 균체 파쇄액의 ABTS와 DPPH 라디칼 소거활성은 각각 400, 2500 μg/mL에 해당하는 시료단백질량으로 희석하여 측정하였다.
각 프로바이오틱스 균주를 MRS broth 배지에 1% 접종하여 30또는 35 C에서 24시간 동안 배양한 후 배양액을 원심분리(2, 500×g, 5분, RT) (C₁₂000, HWLAB, Zhe Jiang, China)하여 균체를 회수하였다. 회수한 균체를 PBS로 2회 세척 후, PBS에 재현 탁하였고, 균의 일부는 멸균 생리식염수로 단계별 희석하고 MRS agar(Difco) 평판 배지에 도말하여 30 또는 35 C에서 24-48시간 동안 배양하여 계수하였다.
각 균 파쇄액의 산화방지활성은 2, 2'-azinobis-(3-ethyl-benz-thiazoline-6- sulfonic acid) (ABTS) (Re 등, 1999)와 2, 2-diphenyl-1-picryl- hydrazyl (DPPH) (Blois, 1958) 라디칼 소거활성으로 측정하였다. 균체 파쇄액의 ABTS와 DPPH 라디칼 소거활성은 각각 400, 2500 μg/mL에 해당하는 시료단백질량으로 희석하여 측정하였다.
탁도 측정을 위해 배양 시간별 LGG 현탁액의 흡광도를 600nm에서 측정하였다. 도말 평판 배양법은 LGG 현탁액을 0.85%의 멸균 생리식염수로단계별 희석하였고 MRS agar (Difco) 평판 배지에 도말하여 35 C 에서 24-48시간 동안 배양하여 계수하였다.
따라서 균마다 이러한 환원력의 차이가 나타날 것이며 이러한 차이가 다양한 균총이 혼합되어 있을 경우 균수의 측정에 오차를 유발할 수 있을 것으로 판단되었다. 따라서 6종의 대표적인 프로바이오틱스 균주들을 선별하여 레자주린에서 레소루핀으로의 환원 능력을 환원률과 형광강도로 확인하였다. 그 결과, 균의 레자주린 환원 능력에는 상당한 차이를 보였으며, 특히 L.
따라서 과량의 균이나 균과의 장시간의 반응은 레소루핀을 다이하이드로레소루핀으로 더 환원시켜 균수 측정의 오류를 유발할 수 있을 것으로 판단되었다. 따라서 레소루핀으로 환원된 후에도 생균에 의해 계속적으로 다이하이드로레소루핀으로 환원이 진행되는지 여부를 평가하기 위하여 LGG와 레소루핀을 직접 반응시켜 흡광및 형광의 변화를 분석하였다(Fig. 4). 레소루핀의 흡광 및 형광스펙트럼은 레자주린의 환원에 의해 변화되는 Fig.
레자주린이 생균에 의해 레소루핀으로 환원되면서 흡광과 형광의 변화가 수반된다는 사실을 이용하여 레자주린을 이용한 프로바이오틱스 생균 수 측정 효과를 평가하였고, 이를 도말 평판 배양법, 탁도 측정법과 비교하였다. LGG를 72시간 동안 배양하면서 균수의 변화를 도말평판 배양법과 탁도측정법으로 비교한 결과 도말평판 배양법에서 24시간까지 증가하던 균수가 이후 48, 72시간에서 다소 감소하였으나, 탁도 측정법의 경우 LGG의 배양 시간 증가에 따라 72시간까지 지속적으로 흡광도 값이 증가하였다(Fig.
생균에 의한 레소루핀의 추가적 환원 여부를 LGG를 이용하여 조사하였다. LGG를 MRS broth 배지에 접종하여 35 C에서 24시간 동안 배양하고 원심분리(2, 500×g, 5분, RT) (HWLAB)하여 회수한 균체를 PBS로 2회 세척하였다.
이를 다시 원심분리하여 얻은 균체를 3차 증류수에 재현 탁하고 70W, 50% amplitude, 30-40 tune의 조건에서 50초 on, 10초 off 간격으로 10회 반복하여 초음파 파쇄기(VC₅₀AT, Sonics Vibra cell, CT, USA)를 이용하여 균체를 파쇄하였다. 이를 15, 000×g에서 3분 동안 원심분리하여 상등액을 취해 균 파쇄액을 얻었고, 단백질 함량은 소혈청 알부민을 표준물질로 하여 Coomassie brilliant blue G-250을 사용하여 정량하였다(Bradford, 1976).
제시하고자 하였다. 이를 위해 Lactobacillus rhamnosus GG 생균에 의한 레자주린 화학적 변화와 정확한 균수 측정에 영향을 미치는 간섭 요인들을 파악하고, 레자주린으로부터 환원된 레소루핀이 LGG에 의해 다이하이드로레소루핀으로의 추가 환원 가능성에 대해서도 검토하였다. 또한 LGG를 비롯한 프로바이오틱스의 생균수 측정은 물론 균주별 생균 환원 특성 파악을 위한레자주린의 활용 가능성을 조사하였다.
1D, E). 이에 생균에 의한 레자주린의 흡광 및 형광의 화학적 변화가 실제 생균수와의 정량성을 갖는지, 또한 반응시간에 따른 정량성변화를 평가하였다. 레자주린을 6.
및 도말 평판 배양법으로 분석하였다. 탁도 측정을 위해 배양 시간별 LGG 현탁액의 흡광도를 600nm에서 측정하였다. 도말 평판 배양법은 LGG 현탁액을 0.
한편 살아있는 L. kimchicus의 환원능력에 의해 레자주린의 환원이 유도되었는가를 확인하기 위해 세포의 성장활성을 측정하는데 널리 사용되는 MTT에 대한 환원능력을 평가하였다. MTT 는 살아있는 세포의 대사에 의해 MTT formazan으로 환원되며 이를 이용하여 세포활성을 측정하는데 널리 사용된다(Grela 등, 2018).
한편 이와 같은 레자주린에 대한 환원력의 차이는 생균의 환원효소 활성 뿐만 아니라 균체에 포함된 환원성 화학물질에 의해서도 나타날 수 있을 것으로 판단되어, 균을 파쇄 후 균체 성분에 의한 ABTS 및 DPPH 라디칼 소거능을 평가하였다. ABTS 라디칼에 대해서는 Leu.
회수한 균체를 PBS로 2회 세척 후, PBS에 재현 탁하였고, 균의 일부는 멸균 생리식염수로 단계별 희석하고 MRS agar(Difco) 평판 배지에 도말하여 30 또는 35 C에서 24-48시간 동안 배양하여 계수하였다. 균 희석 용액(6.

대상 데이터

560 nm, em. 585 nm에서 형광 변화를 측정하였다.
균주의 배양을 위해 MRS agar와 MRS broth (Difco)를 사용하였고, Leu. omesenteroides (KCTC 3530)는 30 C에서, 다른 5종의 균주는 35 C 에서 24시간 동안 배양 후, 2-3회 계대 후 활성화시켜 사용하였다.
MI, USA)에서 구입하였다. 실험에 사용된 레자주린 (resazurin sodium salt)과 레소루핀은 Sigma-Aldrich Co. (St. Louis, MO, USA)에서 구입하였으며 3-(4, 5-dimethylthiazol-2-yl)- 2, 5-diphenyltetrazolium bromide (MTT)는 Amresco (Solon, OH, USA)에서 구입하였다. 이 외에 실험에 사용한 모든 시약은 Sigma- Aldrich에서 구입하여 사용하였다.
유산균 배양에 사용된 배지 MRS agar 및 broth는 Difco (Detroit, MI, USA)에서 구입하였다. 실험에 사용된 레자주린 (resazurin sodium salt)과 레소루핀은 Sigma-Aldrich Co.
Louis, MO, USA)에서 구입하였으며 3-(4, 5-dimethylthiazol-2-yl)- 2, 5-diphenyltetrazolium bromide (MTT)는 Amresco (Solon, OH, USA)에서 구입하였다. 이 외에 실험에 사용한 모든 시약은 Sigma- Aldrich에서 구입하여 사용하였다.
프로바이오틱스 기능을 가진 유산균 Lactobacillus rhamnosus GG (American Type Culture Collection: ATCC) 53103, Lactobacillus plantarum ATCC 8014, Lactobacillus casei ATCC 393, Lactococcus lactis ATCC 11454, Lactobacillus kimchicus (Korean Collection for Type Cultures: KCTC) 12976, Leuconostoc mesenteroides KCTC 3530을 실험에 이용하였다. 균주의 배양을 위해 MRS agar와 MRS broth (Difco)를 사용하였고, Leu.

데이터처리

Each value represents the mean±SD (n=3). Different letters indicate a significant difference (p<0.05) based on one way ANOVA and the Tukey’s HSD test (C and D).
on one way ANOVA and the Tukey’s HSD test (A and B).
각 실험 별 대조군과의 유의차는 Student’s t-test로 95%의 유의수준에서 검정하였으며 필요에 따라 세 군 이상의 다중비교의 경우 일원 배치 분산분석(one-way ANOVA)과 Tukey’s HSD test를 실시하여 95%의 유의수준에서 검정하였다. 도말 평판 배양법은 2 반복하여 평균값으로 나타냈다.

성능/효과

Fig. 1의 결과는 레자주린이 환원되어 생성되는 레소루핀의 흡광 특성 변화와 형광성으로 말미암아 생균수의 변화를 비교적 정확하고 측정할 수 있음을 보여주었으며, 특히 8-9 log CFU/mL 범위의 LGG 생균수에 대한 큰 민감성을 나타냈다(Fig. 1D, E). 이에 생균에 의한 레자주린의 흡광 및 형광의 화학적 변화가 실제 생균수와의 정량성을 갖는지, 또한 반응시간에 따른 정량성변화를 평가하였다.
탁도 측정법과 비교하였다. LGG를 72시간 동안 배양하면서 균수의 변화를 도말평판 배양법과 탁도측정법으로 비교한 결과 도말평판 배양법에서 24시간까지 증가하던 균수가 이후 48, 72시간에서 다소 감소하였으나, 탁도 측정법의 경우 LGG의 배양 시간 증가에 따라 72시간까지 지속적으로 흡광도 값이 증가하였다(Fig. 1C). 이와 대조적으로, 레자주린의 환원률(Fig.
ABTS 라디칼에 대해서는 Leu. mesenteroides와 L. casei가 각각 약 42.5, 43.6%의 유의적으로 높은 활성을 나타냈으며, LGG가 24.4%로 가장 낮은 활성을 보였다(Fig. 6A). 또한, DPPH 라디칼 소거 활성은 Leu.
또한, DPPH 라디칼 소거 활성은 Leu. mesenteroides와 L. casei가 각각 약 50.8%, 48.6%의 소거 활성을 보여 유의적으로 높았으며, 오히려 L. kimchicus는 25.7% 로 가장 낮은 소거활성을 나타냈다(Fig. 6B).
1E) 변화는 24시간 이후 지속적으로 감소하여 도말 평판 배양법에서의 양상과 유사하였다. 각 방법을 비교한 결과, 탁도 측정법과는 달리 도말 평판 배양법과 레자주린 법은 정지기를 지나 사멸기에 이른 생균수의 감소를 측정할 수 있는 것으로 나타났으며, 특히 레자주린 법에서는 그 감소 현상이 대단히 민감하게 검출되었다. 생균수 측정 방법에 주로 사용되는 도말 평판 배양법은 배양배지의 선별 및 배양시간 고려, 단계별 희석에 의한 실험적 오차가 발생할 가능성이 높고(Brugger 등, 2012), 프로바이오틱스 유효 균수 영역으로 알려진 10 -10 의 협소한 범위의 생균 수 변화를 정확하게 측정하기에 한계가 있다.
MTT 는 살아있는 세포의 대사에 의해 MTT formazan으로 환원되며 이를 이용하여 세포활성을 측정하는데 널리 사용된다(Grela 등, 2018). 그 결과 L. kimchicus의 MTT 환원활성은 LGG에 비해 현저하게 높았으며, 기울기를 비교하였을 때 7.5배 이상의 높은 환원 활성을 나타냈다(Fig. 6C). 이상의 결과는 L.
따라서 6종의 대표적인 프로바이오틱스 균주들을 선별하여 레자주린에서 레소루핀으로의 환원 능력을 환원률과 형광강도로 확인하였다. 그 결과, 균의 레자주린 환원 능력에는 상당한 차이를 보였으며, 특히 L. kimchicus는 다른 균주들에 비해 월등한 환원능을 나타내어 균수에 따른 급격한 레자주린의 환원률과 형광 증가를 유도하였다(Fig. 5A, B). 각 균주별 레자주린 환원능을 비교하기 위해 생균수와 환원률 또는 형광강도 간의 기울기를 계산한 결과, L.
2C, D). 대표적으로 30분 반응시간에서의 생균수에 대한 레자주값도린 환원률과 형광 변화를 비교하였을 때, 기울기는 물론 R 더 높아 흡광도보다는 형광강도의 측정이 더 민감한 결과를 도출할 수 있었다(Fig. 3A). 한편 동일한 생균수에 대한 레자주린의 환원률과 형광값의 변동계수(coefficient of variation, CV)를 비교하였을 때, 형광값에서 또한 유의적으로 낮은 값을 보여 형광강도에 근거한 균수 측정의 정확도와 정밀도가 더 높은 것으로 판단된다(Fig.
5), ABTS 및 DPPH 라디칼 소거활성은 오히려 다른 균주들에 비해 유의적으로 낮은 결과를 보였다. 따라서 L. kimchicus에 의한 레자주린의 환원은 생균에 의한환원활성으로 균체 파쇄 후 균체에 존재하는 환원성 물질에 의한 것이 아니며 따라서 포스트바이오틱스에 의한 환원능과는 관련이 없음을 시사한다.
재차 환원이 가능하다(Guerin 등, 2001). 따라서 과량의 균이나 균과의 장시간의 반응은 레소루핀을 다이하이드로레소루핀으로 더 환원시켜 균수 측정의 오류를 유발할 수 있을 것으로 판단되었다. 따라서 레소루핀으로 환원된 후에도 생균에 의해 계속적으로 다이하이드로레소루핀으로 환원이 진행되는지 여부를 평가하기 위하여 LGG와 레소루핀을 직접 반응시켜 흡광및 형광의 변화를 분석하였다(Fig.
5C, 4D). 따라서 균마다 레자주린의 환원 활성에 큰 차이를 보이므로 레자주린에 의한 프로바이오틱스 생균 수 측정은 복합 균주보다 단일 균주 측정에 적절할 것으로 판단된다.
3)(Barnes and Spenney, 1980) 등 살아있는 세포의 환원효소 또는 탈수소효소에 의해 일어나며, 균체가 보유한 다양한 환원성, 항산화성 물질들에 의해서도 진행된다(Wang 등, 2017). 따라서 균마다 이러한 환원력의 차이가 나타날 것이며 이러한 차이가 다양한 균총이 혼합되어 있을 경우 균수의 측정에 오차를 유발할 수 있을 것으로 판단되었다. 따라서 6종의 대표적인 프로바이오틱스 균주들을 선별하여 레자주린에서 레소루핀으로의 환원 능력을 환원률과 형광강도로 확인하였다.
한편, 도말 평판 배양법의 경우 단계별 희석의 영향으로 측정값 간의 편차가 커서 CV값이 매우 높게 나타났다. 따라서, 균에 의한 레자주린의 화학적 특성 변화는 환원률보다 형광 강도를 비교하는 것이 상대적으로 더 민감하고 정확한 결과를 제시할 수 있을 것으로 판단되며, 레자주린법이 도말 평판 배양법을 보완할 수 있음을 시사한다. 레자주린은 pH 6.
1A). 또한, 레자주린을 LGG와 함께 반응시켰을 때 반응 생성물의 형광성이 발현되면서 585nm에서 최대 형광 영역을 나타냈으며, 반응시간이 증가할수록 피크를 포함한 해당영역의 형광강도가 현저하게 증가되었다(Fig. 1B). 이러한 현상은 600nm에서 최대 흡광 영역을 가지고 형광성이 없는 레자주린이 LGG에 의해 570nm 영역의 최대 흡광도와 형광성을 가지는 레소루핀으로 환원되면서 나타나는 것으로 파악되며, 배양시간의 증가에 따라 레소루핀으로의환원이 더욱 진행되었기 때문으로 판단된다.
이동하였다. 또한, 반응시간이 증가할수록 600nm 피크의 감소와 570nm 피크의 증가 양상이 더욱 현저하였고 570nm 부근 영역의 흡광도가 전반적으로 증가하였다(Fig. 1A). 또한, 레자주린을 LGG와 함께 반응시켰을 때 반응 생성물의 형광성이 발현되면서 585nm에서 최대 형광 영역을 나타냈으며, 반응시간이 증가할수록 피크를 포함한 해당영역의 형광강도가 현저하게 증가되었다(Fig.
4A, B). 레소루핀을 9.5 log CFU/mL LGG와 직접 0-4시간 동안 반응시킨 결과, 570 nm에서최대 흡광 피크의 감소는 유의적인 차이를 보이지 않았으며(Fig. 4C). 590nm에서의 형광강도는 4시간 반응 시에 일부 감소하는결과를 나타냈다(Fig.
이에 생균에 의한 레자주린의 흡광 및 형광의 화학적 변화가 실제 생균수와의 정량성을 갖는지, 또한 반응시간에 따른 정량성변화를 평가하였다. 레자주린을 6.5-9.5 log CFU/mL의 LGG와 0- 180분 사이에서 시간을 달리하여 반응시킨 후 흡광 및 형광 변화를 분석한 결과, 전반적으로 균 수와 반응시간에 비례하는 흡광 및 형광의 변화가 수반되었다(Fig. 2). 과량의 균에 의한 장시간의 반응은 레자주린의 화학적 변화를 더 이상 진행시키지 못했는데, 9.
레자주린의 가시광선 영역에서의 흡수 스펙트럼을 분석한 결과, 600nm에서 최대 흡광영역을 보였으며 이를 LGG와 반응시켰을 때 600nm에서의 흡광도가 감소하고 570nm로 최대 흡광 영역이 이동하였다. 또한, 반응시간이 증가할수록 600nm 피크의 감소와 570nm 피크의 증가 양상이 더욱 현저하였고 570nm 부근 영역의 흡광도가 전반적으로 증가하였다(Fig.
4D). 본 결과는 생균에 의한 레소루핀의 화학적 변화가 일부 일어나고 흡광변화 보다 민감한 형광에서의 변화가 감지될 수 있으나, 일반적인 균수 측정범위와 측정시간에서레소루핀이 다이하이드로레소루핀으로 환원되어 나타나는 오류는 레자주린을 이용한 생균수의 측정에 거의 영향을 미치지 않는다는 것을 의미한다.
정의할 수 있다(Patel and Denning, 2013). 본 실험에 사용된 프로바이오틱스 균주들 중 L. kimchicus의 레자주린에 대한 환원활성이 가장 높았으나(Fig. 5), ABTS 및 DPPH 라디칼 소거활성은 오히려 다른 균주들에 비해 유의적으로 낮은 결과를 보였다. 따라서 L.
본 실험에서 적용한 15-180분 사이 대부분 반응시간에서 생균 수 변화에 대한 레자주린의 환원률보다 형광 변화의 기울기가 더크게 나타났으며(data not shown), 상관계수 R 의 값도 높았다(Fig. 2C, D). 대표적으로 30분 반응시간에서의 생균수에 대한 레자주값도린 환원률과 형광 변화를 비교하였을 때, 기울기는 물론 R 더 높아 흡광도보다는 형광강도의 측정이 더 민감한 결과를 도출할 수 있었다(Fig.
2A, B). 생균수 변화에 대한 레자주린의 환원률 및 형광 변화를 반응시간별 회귀직선으로 분석한 결과, 반응시간 15분에서 6.5-9.5 log CFU/mL, 30분에서 6.5-9.2 log CFU/mL, 60분에서 6.5-8.9 log CFU/mL, 그리고 반응시간 90-180분에서 6.5-8.6log CFU/mL 균수 사이에 R =0.99 이상의 상관관계를 보였다(Fig. 2C, D).
6C). 이상의 결과는 L. kimchicus가 다른 프로바이오틱스 유산균에 비해 특징적으로 높은 생균으로서의 환원 활성을 보유하고 있다는 것을 의미한다. 일부 프로바이오틱스는 다양한 산화방지활성 기작을 발휘하면서 항산화 보충제로 사용될 수 있으며(Lin 등, 1999), nitrate 환원능 등은 유용 프로바이오틱스 선별을 위한 주요 활성으로 이용되고 있다(Sobko 등, 2006).
3B). 한편, 도말 평판 배양법의 경우 단계별 희석의 영향으로 측정값 간의 편차가 커서 CV값이 매우 높게 나타났다. 따라서, 균에 의한 레자주린의 화학적 특성 변화는 환원률보다 형광 강도를 비교하는 것이 상대적으로 더 민감하고 정확한 결과를 제시할 수 있을 것으로 판단되며, 레자주린법이 도말 평판 배양법을 보완할 수 있음을 시사한다.

후속연구

생균수 측정 방법에 주로 사용되는 도말 평판 배양법은 배양배지의 선별 및 배양시간 고려, 단계별 희석에 의한 실험적 오차가 발생할 가능성이 높고(Brugger 등, 2012), 프로바이오틱스 유효 균수 영역으로 알려진 10 -10 의 협소한 범위의 생균 수 변화를 정확하게 측정하기에 한계가 있다. 따라서 레자주린을 이용한 방법이 프로바이오틱스를 비롯한 다양한 균주들의 간편하고 정확한 생균수 측정방법으로 활용될 수 있으리라 판단된다.
일부 프로바이오틱스는 다양한 산화방지활성 기작을 발휘하면서 항산화 보충제로 사용될 수 있으며(Lin 등, 1999), nitrate 환원능 등은 유용 프로바이오틱스 선별을 위한 주요 활성으로 이용되고 있다(Sobko 등, 2006). 따라서, 레자주린은 생균수의 신속하고 정확한 측정은 물론 환원력이 높은 유용 프로바이오틱스의 발굴에 있어서도 활용될 수 있을 것으로 판단된다.
또한 본 연구에서도 MRS broth 자체에 의한 레자주린의 흡광 변화도 관찰되었다(data not shown). 이러한 산과 배지 성분들에 의한 간섭요인들을 배제하기 위해서는 균을 PBS로 세척하는 과정의 추가가 필요하며, 세척 후 균과 레자주린의 반응을 통해 보다 정확한 생균활성 측정이 가능할 것으로 생각된다.

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저자의 다른 논문 :

표제어: PCR

동의어: Packet Collision Rate

용어 설명 출처 목록 (6)

용어 설명: PCR은 세균 특이성이 있는 primer를 이용하여 적은 수의 세균이 있을지라도 쉽게 검출할 수 있는 유용한 방법이며, 이를 이용하여 구강 내 치면세균막이나 타액에서 직접 세균을 검출할 수 있게 되었다[8].

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