[논문]배양육 조직구현을 위한 배향성 부여에 관한 연구

석용주; 조선미; 최순모; 한성수

doi:10.5764/tcf.2022.34.4.284

배양육 조직구현을 위한 배향성 부여에 관한 연구
A Study on Conferring Orientation to Myoblast for Realizing Tissue of Cultured Meat 원문보기

韓國染色加工學會誌 = Textile coloration and finishing, v.34 no.4, 2022년, pp.284 - 301

석용주 (영남대학교 화학공학부) , 조선미 (영남대학교 화학공학부) , 최순모 (영남대학교 세포배양연구소) , 한성수 (영남대학교 화학공학부)

Abstract ▼ AI-Helper

The limitations of food production caused by global warming, consumption of soil fertility, and land shortage have demanded the development of alternative foods. Their market has been increasing, and in particular, there is an urgent need for an alternative meat. Among them, the non-slaughtered cell-cultured meat that can be manufactured in the laboratory, that is, cultured meat, is in the spotlight, which can solve the problem of meat consumption while including the advantages of meat. It is classified into minced cultured meat and structured one with a structure similar to that of real meat. The latter is currently facing limitations related scaffolds, cells, and the multiplicative problems, and many attempts are being made to solve them. The complex problem is related to secure texture and taste as well as structural similarity to actual meat. To solve the problems, it is necessary to lay emphasis on cells, there are fat cells and vascular cells, and the most fundamental cells, muscle cells. These are the main cells that control the texture and nutrients of meat, and unlike other cells, they grow in the form of fibers. A myofibril (also known as a muscle fibril) is a basic rod-like organelle of a muscle cell, which is a quantitatively major component of meat, and one of the tissues that maintain the appearance of the body and bones. In this review article, we focused on the growth of muscle cells into long, tubular cells known as muscle fibers using the fabricated fibrous scaffold, and reviewed not only research results for muscle tissue engineering but also various results in the related fields for the last five years.

주제어

표/그림 (16)

그림 Figure 1. Schematic representation of the hierarchical structure of vertebrate muscle; a) cross-sectional view of a muscle with a single fascicle, muscle fiber, myofibril, and sarcomere magnified to show detail, b) mammalian/avian and c) fish muscle cut longitudinally and in cross-section to highlight their structural homology. Copyright 2021, WILEY-VCH Verlag GmbH⁷⁾.
그림 Figure 2. Regulation of bovine myotube alignment using micropatterned thermoresponsive culture substrates prepared with different patterning conditions; (a) schematic illustration of photo-induced micropatterning of PAAm on a PIPAAm-grafted substrate, (b) fluorescence image of fluorescently-labeled fibronectin immobilized on the micropatterned substrate (photo-irradiation time: 20 min). (c-f) Microscopic images of myotubes differentiated on (c) non-patterned or (d-f) patterned substrates (photo-irradiation time: (d) 7 min, (e) 10 min, and (f) 20 min) were taken on Day 2 after induction of differentiation. Histograms of orientation of the myotubes were analyzed from six samples in each group. Copyright 2022, Elsevier Inc.¹⁵⁾.
그림 Figure 3. Schematic diagram of a) melt spinning, b) wet spinning, c) dry spinning, d) electrospinning, e) touch spinning, and f) 3D printing.
그림 Figure 4. Collagen fiber processing; a) photograph of the tape loom used to fabricate flat and tubular woven collagen structures. SEM images of structures with various morphological features fabricated using wet spun collagen fibers. Image of collagen fibers woven in a b) flat and c) tubular structure fabricated using a tape loom d) Image of a flat structure created by weaving collagen fibers using a frame e) Image of a braided structure using three single collagen fibers. Copyright 2020, Wiley-VCH GmbH²⁷⁾.
그림 Figure 5. Fibrous gelatin production by immersion rotary jet spinning(iRJS); a) schematic (i) and photo (ii) of iRJS fiber production. The schematic shows a precursor solution fed into an open-top rotating reservoir. The solution is extruded through small orifices in the reservoir wall into a precipitation bath where fibers are collected on a rotating cylindrical collector. b) removal of gelatin fibers from the iRJS collector following a 10-min production run; scale bar is 10 cm. c) peeling fibrous gelatin; scale bar is 1 cm. d) freeze-dried fibrous gelatin. Copyright 2019, Springer Nature²⁸⁾.
29)." alt="Figure 6. Wet-Spinning BioSynthetic Myoblast fibers(PLGA and Alginate); Comparison of native Muscle, PLGA and "Trojan Horse" Alginate fibers. Line schematic. Copyright 2020, Frontiers²⁹⁾." onerror="this.src='/images/noimg.png'" class="objectfit" /> 그림 Figure 6. Wet-Spinning BioSynthetic Myoblast fibers(PLGA and Alginate); Comparison of native Muscle, PLGA and "Trojan Horse" Alginate fibers. Line schematic. Copyright 2020, Frontiers²⁹⁾.
그림 Figure 7. a) Schematic and optical image of the electrospinning process, b) SEM and optical images of the surface of the PCL strut. The electrospinning was performed to arrange the nanofibers in the c) horizontal, d) diagonal, and e) multi-diagonal directions. Copyright 2019, Elsevier Inc.³¹⁾.
그림 Figure 8. Schematic illustrating the fabrication of polymer fibers via electrospinning. Copyright 2020, Frontiers³²⁾.
그림 Figure 9. SEM images for the morphological analysis of aligned PLGA fibers with different polymer concentrations; a) 20% PLGA (Matrix 1), b) 30% PLGA (Matrix 2), c) 40% PLGA (Matrix 3), Scale bar 50μm. d) bar graphs of the relationship between PLGA fiber diameter and polymer concentration (n = 90 fibers; n = 3 images per scaffold) showing that an increase in PLGA concentration from 20 to 40% resulted in an increase of fiber diameter ranging from 335 ± 154 nm to 3013 ± 531 nm, e) categorical scatter plot showing mean alignment angle with the spread for PLGA fibers indicating high alignment of fibers using three different polymer concentrations. Copyright 2020, Frontiers³²⁾.
그림 Figure 10. Schematics of a) a native skeletal muscle structure with a vascular network and b) the cell electrospinning process using human umbilical vein endothelial cells (HUVECs). c) SEM and live/dead images of HUVECs-laden fibers fabricated using various electric fields. A quantitative analysis of d) orientation factor of nanofibers and e) cell viability. Copyright 2020, Elsevier Inc.³³⁾.
그림 Figure 11. Basic scheme of the electrospinning setup used for the experiments. Copyright 2019, Elsevier Inc.³⁴⁾.
그림 Figure 12. Schematic diagram of touch spinning. Copyright 2021, American Chemical Society³⁵⁾.
표 Table 1. Oriented fibrous scaffolds for muscle tissue engineering manufactured through various spinning methods
그림 Figure 13. Frontal, lateral and axonometric views of scaffold design; a) 100 μm series and b) 400 μm series. Scale bar of the fourth image of each panel is 100 μm and 400 μm, respectively. Copyright 2022, MDPI³⁷⁾.
그림 Figure 14. a) schematic images of 3D cell printing process using the Gly/KCl buffer solution [(1) randomly dispersed collagen molecules in the bioink before printing, (2) alignment and assembly into collagen fibrils of collagen molecules during 3D cell-printing process, (3) formation of aligned collagen fibers in the Gly/KCl buffer solution. Copyright 2019, Elsevier Inc.³⁹⁾.
표 Table 2. Classification according to cell types combined with scaffolds fabricated by 3D printing

AI 본문요약
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문제 정의

본 리뷰논문에서는 근아세포에 배향성을 부여하기 위한 방법 가운데, 섬유형 지지체를 통한 배양육의 제조를 위해 이전 선행되었던, 근조직 재생용 섬유형 지지체 제조 방법에 초점을 두고 다루고자 한다.
현재까지 개발되어온 지지체의 제조법은 기존에 선행되어 왔던 섬유의 방사와 방직(용융 방사, 건조 방사, 습식 방사, 전기 방사, 접촉 방사)부터 시작하여 최근의 3D 프린팅까지 다양한 방법이 있다. 우리는 이러한 섬유형 지지체를 통한 지지체 내부의 미시적, 거시적 배향을 통한 세포의 정렬 방법에 대해서 말하고자 한다.

제안 방법

필라멘트 또는 용액을 잉크로 하여 3D 설계대로 노즐이 움직이며, 이를 인쇄하여, 구조를 재현하는 방법이다. 이 때, 인쇄 속도, 3차원 구조, 베드의 온도, 노즐의 온도, 베드의 가교 방법 등 다양한 방법을 통해 제어가 가능하며, 그 중 세포를 포함하지 않은 배향성을 부여한 지지체(필름, 시트, 전체 지지체)와 세포를 포함한 바이오 잉크를 이용한 지지체 제조 방법 등에 대하여 간략히 정리하였다.

성능/효과

높은 회전속도 및 전압을 통해서, 배향성이 부여된 전기 방사 섬유 지지체 제조가 가능하며, 농도를 통한 굵기의 조절 또한 가능하나 농도 자체의 영향 외에도 농도에 따른 점도의 변화나 다른 변수에 의해 정비례하지는 않는 것으로 나타났다(Figure 9).
우리는 본 리뷰에서 제시한 연구들을 통하여, 섬유형 지지체에 근세포를 배양하였을 경우 세포의 성장방향이 섬유 배향방향을 따르는 것을 확인할 수 있었다. 지지체 내 배향성이 부여된 구조를 구현하는 방법은 기존의 물리적, 전기적, 생물학적 자극을 부여하는, 까다롭고 복잡한 방식과 차별되는 효율적인 방법으로, 마이크론 크기의 미세한 섬유형 구조를 구현함으로써 근육조직 뿐만 아니라 미세 섬유다발로 이루어진 신경조직의 재생에 활용될 수 있는 기술이다.

후속연구

그렇기에 배양육의 완전한 개발을 위해서는 이를 대체할 수 있는 재료와 가교 방법의 탐색이 중요한 부분이다. 다음으로 제조 과정 측면에서 보자면, 일부 제조 과정이 식용에 부적합한 유기 용매를 사용하거나, 식용 가능한 재료의 특성에 적합하지 않은 방법을 사용하므로, 이 부분에 대해서는 우선 재료를 탐색한 이후, 재료에 맞추어 상기의 서술한 다양한 방법에 적용하는 순서로 적용해야 될 것이다.
마지막으로 세포 배양 과정에서 역시 FBS, horse serum, FGF 등의 동물성 배지의 사용으로부터 벗어나는 것 또한 배양육의 개발에 중요한 부분일 것이다. 이러한 부분은 외부의 물리적, 전기적, 화학적 자극과 비동물성 첨가물을 통한 돌파구를 탐색해야 될 것이다.
이러한 제조 방법 또는 그 외의 다양한 지지체 제조 방법을 통해 조직과 유사한 형태의 식용 지지체를 제조할 수 있다면, 배양육 개발 및 상용화에 더욱 박차를 가할 수 있을 것이다. 이후의 문제점으로 대두되고 있는 생검을 통해 얻거나 중간배엽 세포의 분화를 통한 근세포, 지방세포, 혈관 세포의 안정적인 확보, 식용 가능하며, 생분해성 및 생체 적합성이 우수하며, 물리적 특성이 육류와 유사한 재료의 선택, 효율적이고, 경제적이며, 비도축성, 즉 무혈청 배지의 확보 등이 있으며, 이들이 모두 종합된 이후에는 배양육 배양기 및 용기의 제작과 상품화 등 다양한 문제점이 남아 있으며, 이 모든 것이 해결된 이후에는 그 누구도 하물며, 동물마저도 희생되지 않는 영양소 공급을 위한 배양육의 개발이 완료되고, 우리는 가정에서 이러한 배양육을 섭취하며 살아갈 수 있을 것이다.
이러한 제조 방법 또는 그 외의 다양한 지지체 제조 방법을 통해 조직과 유사한 형태의 식용 지지체를 제조할 수 있다면, 배양육 개발 및 상용화에 더욱 박차를 가할 수 있을 것이다. 이후의 문제점으로 대두되고 있는 생검을 통해 얻거나 중간배엽 세포의 분화를 통한 근세포, 지방세포, 혈관 세포의 안정적인 확보, 식용 가능하며, 생분해성 및 생체 적합성이 우수하며, 물리적 특성이 육류와 유사한 재료의 선택, 효율적이고, 경제적이며, 비도축성, 즉 무혈청 배지의 확보 등이 있으며, 이들이 모두 종합된 이후에는 배양육 배양기 및 용기의 제작과 상품화 등 다양한 문제점이 남아 있으며, 이 모든 것이 해결된 이후에는 그 누구도 하물며, 동물마저도 희생되지 않는 영양소 공급을 위한 배양육의 개발이 완료되고, 우리는 가정에서 이러한 배양육을 섭취하며 살아갈 수 있을 것이다.

참고문헌 (40)

K. Sakadevan and M. L. Nguyen, Livestock Production and its Impact on Nutrient Pollution and Greenhouse Gas Emissions, Advances in Agronomy, 141, 147(2017).
Z. F. Bhat, H. Bhat, and S. Kumar, "Cultured Meat-A Humane Meat Production System", Principles of Tissue Engineering, Academic Press, USA, pp.1369-1388, 2020.
S. H. Park, S. W. Jung, M. H. Choi, M. L. Lee, B. G. Choi, and W. G. Koh, Gelatin MAGIC Powder as Nutrient-Delivering 3D Spacer for Growing Cell Sheets into Cost-Effective Cultured Meat, Biomaterials, 278, 121155 (2021).

상세보기
S. Verbruggen, D. Luining, A. van Essen, and M. J. Post, Bovine Myoblast Cell Production in a Microcarriers-based System, Cytotechnology, 70(2), 503(2018).

상세보기
S. H. Park, S. W. Jung, J. W. Heo, W. G. Koh, S. M. Lee, and J. K. Hong, Chitosan/Cellulose-Based Porous Nanofilm Delivering C-Phycocyanin: A Novel Platform for the Production of Cost-Effective Cultured Meat, ACS Applied Materials and Interfaces, 13(27), 32193(2021).

상세보기
A. Shahin-Shamsabadi and P. R. Selvaganapathy, Engineering Murine Adipocytes and Skeletal Muscle Cells in Meat-Like Constructs Using Self-Assembled Layer-by-Layer Bio-fabrication: A Platform for Development of Cultivated Meat, Cells Tissues Organs, 211(3), 304(2022).

상세보기
C. Bomkamp, S. C. Skaalure, G. F. Fernando, T. Ben-Arye, E. W. Swartz, and E. A. Specht, Scaffolding Biomaterials for 3D Cultivated Meat: Prospects and Challenges, Advanced Science, 9(3), 2102908(2022).

상세보기
T. Ben-Arye, Y. Shandalov, S. Ben-Shaul, S. Landau, Y. Zagury, I. Ianovici, N. Lavon, and S. Levenberg, Extured Soy Protein Scaffolds Enable the Generation of Three-Dimensional Bovine Skeletal Muscle Tissue for Cell-Based Meat, Nature Food, 1(4), 210(2020).

상세보기
M. Beldjilali-Labro, A. G. Garcia, F. Farhat, F. Bedoui, J. F. Grosset, M. Dufresne, and C. Legallais, Biomaterials in Tendon and Skeletal Muscle Tissue Engineering: Current Trends and Challenges, Materials, 11(7), 1116(2018).

상세보기
S. Ostrovidov, S. Salehi, M. Costantini, K. Suthiwanich, M. Ebrahimi, R. B. Sadeghian, T. Fujie, X. Shi, S. Cannata, C. Gargioli, A. Tamayol, M. R. Dokmeci, G. Orive, W. Swieszkowski, and A. Khademhosseini, 3D Bioprinting in Skeletal Muscle Tissue Engineering, Small, 15(24), 1805530 (2019).

상세보기
E. Alarcin, A. Bal-Ozturk, H. Avci, H. Ghorbanpoor, F. D. Guzel, A. Akpek, G. Yesiltas, T. Canak-Ipek, and M. Avci-Adali, Current Strategies for the Regeneration of Skeletal Muscle Tissue, International Journal of Molecular Sciences, 22(11), 5929(2021).

상세보기
N. Haghighipour, S. Heidarian, M. M. A. Shokrgozar, and N. Amirizadeh, Differential Effects of Cyclic Uniaxial Stretch on Human Mesenchymal Stem Cell into Skeletal Muscle Cell, Cell Biology International, 36(7), 669(2012).

상세보기
J. Canicio, P. Ruiz-Lozano, M. Carrasco, M. Palacin, K. Chien, A. Zorzano, and P. Kaliman, Nuclear Factor κB-inducing Kinase and IκB Kinase-α Signal Skeletal Muscle Cell Differentiation, Journal of Biological Chemistry, 276(23), 20228(2001).

상세보기
J. Krieger, B. W. Park, C. R. Lambert, and C. Malcuit, 3D Skeletal Muscle Fascicle Engineering is Improved with TGF-β1 Treatment of Myogenic Cells and their Co-culture with Myofibroblasts, PeerJ, 6, e4939(2018).

상세보기
H. Takahashi, A. Yoshida, B. Gao, K. Yamanaka, and T. Shimizu, Harvest of Quality-controlled Bovine Myogenic Cells and Biomimetic Bovine Muscle Tissue Engineering for Sustainable Meat Production, Biomaterials, 287, 121649 (2022).

상세보기
C. Mueller, M. Trujillo-Miranda, M. Maier, D. E. Heath, A. J. O'Connor, and S. Salehi, Effects of External Stimulators on Engineered Skeletal Muscle Tissue Maturation, Advanced Materials Interfaces, 8(1), 2001167(2021).

상세보기
K. Lu, Y. Qian, J. Gong, Z. Zhu, J. Yin, L. Ma, M. Yu, and H. Wang, Biofabrication of Aligned Structures that Guide Cell Orientation and Applications in Tissue Engineering, Bio-Design and Manufacturing, 4(2), 258(2021).

상세보기
B. Ferrigno, R. Bordett, N. Duraisamy, J. Moskow, M. R. Arul, S. Rudraiah, S. P. Nukavarapu, A. T. Vella, and S. G. Kumbar, Bioactive Polymeric Materials and Electrical Stimulation Strategies for Musculoskeletal Tissue Repair and Regeneration, Bioactive Materials, 5(3), 468(2020).

상세보기
D. Pajalunga and M. Crescenzi, Restoring the Cell Cycle and Proliferation Competence in Terminally Differentiated Skeletal Muscle Myotubes, Cells, 10(10), 2753(2021).

상세보기
T. L. Jenkins and D. Little, Synthetic Scaffolds for Musculoskeletal Tissue Engineering: Cellular Responses to Fiber Parameters, NPJ Regenerative Medicine, 4(1), 1(2019).

상세보기
G. Jin, R. He, B. Sha, W. Li, H. Qing, R. Teng, and F. Xu, Electrospun Three-dimensional Aligned Nanofibrous Scaffolds for Tissue Engineering, Materials Science and Engineering: C, 92, 995(2018).

상세보기
Y. Liu, N. Fang, B. Liu, L. Song, B. Wen, and D. Yang, Aligned Porous Chitosan/Graphene Oxide Scaffold for Bone Tissue Engineering, Materials Letters, 233, 78(2018).

상세보기
D. Gholobova, L. Terrie, M. Gerard, H. Declercq, and L. Thorrez, Scularization of Tissue-Engineered Skeletal Muscle Constructs, Biomaterials, 235, 119708(2020).

상세보기
L. Shang, Y. Yu, Y. Liu, Z. Chen, T. Kong, and Y. Zhao, Spinning and Applications of Bioinspired Fiber Systems, ACS Nano, 13(3), 2749(2019).

상세보기
K. A. V. Kampen, J. Fernandez-Perez, M. Baker, C. Mota, and L. Moroni, Fabrication of a Mimetic Vascular Graft Using Melt Spinning with Tailorable Fiber Parameters, Biomaterials Advances, 139, 212972(2022).
W. Huang, X. Huang, P. Wang, and P. Chen, Poly(glycolic acid) Nanofibers via Sea-Island Melt-Spinning, Macromolecular Materials and Engineering, 303(12), 1800425(2018).

상세보기
K. S. Koeck, S. Salehi, M. Humenik, and T. Scheibel, Processing of Continuous Non-Crosslinked Collagen Fibers for Microtissue Formation at the Muscle-Tendon Interface, Advanced Functional Materials, 32(15), 2112238(2022).

상세보기
L. A. MacQueen, C. G. Alver, C. O. Chantre, S. Ahn, L. Cera, G. M. Gonzalez, B. B. O'Connor, D. J. Drennan, M. M. Peters, S. E. Motta, J. F. Zimmerman, and K. K. Parker, Muscle Tissue Engineering in Fibrous Gelatin: Implications for Meat Analogs, NPJ Science of Food, 3(1), 1(2019).

상세보기
A. F. Quigley, R. Cornock, T. Mysore, J. Foroughi, M. Kita, J. M. Razal, J. Crook, S. E. Moulton, G. G. Wallace, and R. M. I. Kapsa, Wet-spun Trojan Horse Cell Constructs for Engineering Muscle, Frontiers in Chemistry, 8, 18(2020).

상세보기
C. Zhang, Y. Zhang, H. Shao, and X. Hu, Hybrid Silk Fibers Dry-spun from Regenerated Silk Fibroin/Graphene Oxide Aqueous Solutions, ACS Applied Materials and Interfaces, 8(5), 3349(2016).

상세보기
M. J. Yeo and G. H. Kim, Nano/Microscale Topographically Designed Alginate/PCL Scaffolds for Inducing Myoblast Alignment and Myogenic Differentiation, Carbohydrate Polymers, 223, 115041(2019).

상세보기
N. Narayanan, C. Jiang, C. Wang, G. Uzunalli, N. Whittern, D. Chen, O. G. Jones, S. Kuang, and M. Deng, Harnessing Fiber Diameter-dependent Effects of Myoblasts Toward Biomimetic Scaffold-based Skeletal Muscle Regeneration, Frontiers in Bioengineering and Biotechnology, 8, 203(2020).

상세보기
M. J. Yeo and G. H. Kim, Micro/Nno-hierarchical Scaffold Fabricated Using a Cell Electrospinning/3D Printing Process for Co-culturing Myoblasts and HUVECs to Induce Myoblast Alignment and Differentiation, Acta Biomaterialia, 107, 102(2020).

상세보기
D. Dippold, A. Cai, M. Hardt, A. R. Boccaccini, R. E. Horch, J. P. Beier, and D. W. Schubert, Investigation of the Batch-to-batch Inconsistencies of Collagen in PCL Collagen Nanofibers, Materials Science and Engineering C, 95, 217(2019).

상세보기
J. U. Gomez, A. P. Murcia, A. Shukla, H. Alkhamis, S. Salehi, and L. Ionov, Soft Elastic Fibrous Scaffolds for Muscle Tissue Engineering by Touch Spinning, Applied Bio Materials, 4, 5585(2021).

상세보기
J. U. Gomez, D. Schonfeld, A. P. Murcia, M. M. Roland, A. Caspari, A. Synytska, S. Salehi, T. Pretsch, and L. Ionov, Fibrous Scaffolds for Muscle Tissue Engineering Based on Touch-Spun Poly(Ester-Urethane) Elastomer, Macro Molecular, 22, 2100427(2022).
M. Gasparotto, P. Bellet, G. Scapin, R. Busetto, C. Rampazzo, L. Vitiello, D. I. Shah, and F. Filippini, 3D Printed Graphene-PLA Scaffolds Promote Cell Alignment and Differentiation, International Journal of Molecular Sciences, 23(3), 1736(2022).

상세보기
J. Y. Kim, W. J. Kim, and G. H. Kim, Scaffold with Micro/Nanoscale Topographical Cues Fabricated Using E-field assisted 3D Printing Combined with Plasma-Etching for Enhancing Myoblast Alignment and Differentiation, Applied Surface Science, 509, 145404(2020).

상세보기
W. J. Kim and G. H. Kim, A Functional Bioink and its Application in Myoblast Alignment and Differentiation, Chemical Engineering Journal, 366, 150(2019).

상세보기
W. J. Kim and G. H. Kim, 3D Bioprinting of Functional Cell-laden Bioinks and its Application for Cell-Alignment and Maturation, Applied Materials Today, 19, 100588(2020).

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저자의 다른 논문 :

표제어: PCR

동의어: Packet Collision Rate

용어 설명 출처 목록 (6)

용어 설명: PCR은 세균 특이성이 있는 primer를 이용하여 적은 수의 세균이 있을지라도 쉽게 검출할 수 있는 유용한 방법이며, 이를 이용하여 구강 내 치면세균막이나 타액에서 직접 세균을 검출할 수 있게 되었다[8].

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