[논문]한국 제주도에서 채집된 촉수과(Mullidae) 어류 1첫기록종, Upeneus subvittatus

최시원; 명세훈; 이정훈; 김정년

doi:10.5657/kfas.2024.0169

한국 제주도에서 채집된 촉수과(Mullidae) 어류 1첫기록종, Upeneus subvittatus
First Record of Goatfish Upeneus subvittatus (Pisces: Mullidae) from Jeju Island, Korea 원문보기

한국수산과학회지 = Korean journal of fisheries and aquatic sciences, v.57 no.2, 2024년, pp.169 - 176

최시원 (국립수산과학원 수산자원연구센터) , 명세훈 (국립수산과학원 수산자원연구센터) , 이정훈 (국립수산과학원 수산자원연구센터) , 김정년 (국립수산과학원 수산자원연구센터)

Abstract ▼ AI-Helper

On November 9, 2022, a goatfish (Mullidae) that had not been previously reported in Korea was collected during offshore fisheries resources research near Jeju Island. Based on the morphological identification, this goatfish was identified as the genus Upeneus owing to the presence of palatine teeth and vomerine teeth, as well as the proximal part of anterior part of second dorsal fin. Additionally, through molecular identification, the previously unreported goatfish was identified as U. subvittatus with a 99.8% match in the mtDNA COI region. Goatfish U. subvittatus has no patterns on its body and dark bands on both the lower and upper caudal fins, making it well distinguishable from the four species of genus Upeneus reported in Korea. U. vittatus, reported in Japan, showed morphological differences from U. subvittatus in that the dark band on the lower lobe of the caudal fin was wider, and longitudinal stripes were present on the body. Based on the morphological characteristics of U. subvittatus, we suggest a new Korean name, "Jul-mu-nui-kko-li-chog-su".

주제어

표/그림 (5)

그림 Fig. 1. Map showing the sampling area of goatfish Upeneus subvittatus from Korea.
그림 Fig. 2. Goatfish Upeneus subvittatus, NIFS_FRRC_1 (122.5 mm SL), Jeju Island, Korea, 9 November 2022. A, Immersion specimen; B, Fresh specimen; NIFS, National Institute of Fisheries Sciences; SL, Standard length.
그림 Fig. 3. Maximum likelihood tree based on mitochondrial DNA COI region showing the relationships among 11 species of genus Upeneus, one species of genus Parupeneus and one outgroup Bathycallionymus kaianus. The tree was constructed using Hasegawa-Kishino-Yano + Gamma distributed model and bootstrap values from 1,000 replications. Number at branches correspond to bootstrap value. The parentheses indicate registration number of NCBI and superscript indicates voucher number. The bottom bar indicates a genetic distance of 0.1. NCBI, National Center for Biotechnology Information.
표 Table 1. Counts and measurements of goatfish Upeneus subvittatus in comparison with previous recodes
표 Table 2. Pairwise genetic distance of mitochondrial DNA COI region among 12 species of goatfish and 1 outgroup

AI 본문요약
AI-Helper

문제 정의

본 연구는 2022년 11월 3일부터 14일까지 우리나라 배타적경제수역(exclusive economic zone, EEZ)에서 수행된 국립수산과학원 근해어업자원조사의 저층트롤로 현재까지 국내에 보고된 적이 없는 노랑촉수속 미기록종을 채집하여 형태를 상세히 기재하여 새로운 국명을 부여하고자 한다.

제안 방법

PCR은 AccuPower® PCR Premix에 total DNA 4 µL를 첨가한 후, 총 20 µL가 될 때까지 3차 증류수를 넣고 Thermal cycler(C1000™; Bio-Rad, Hercules, CA, USA)를 이용하여 다음과 같은 조건에서 PCR을 수행하였다[Initial denaturation 95°C, 5 min; PCR reaction 37 cycle (denaturation 94°C, 30 sec; annealing 52°C, 30 sec; extension 72°C, 1 min); final extension 72°C, 7 min]
Total DNA는 어체의 근육조직으로부터 GeneAll Exgene™ Clinic SV DNA extraction kit (GeneAll, Seoul, Korea)를 사용하여 추출하였다
margarethae)과 촉수속 어류 1종(P. indicus)의 mtDNA COI영역 염기서열과 비교 분석하였다. 분석결과, 본 종은 U.
8개의 계수형질과 22개의 계측형질을 분석하였다. 계측형질의 경우, vernier calipers를 이용하여 0.1 mm 단위까지 측정하였으며, 측정값은 체장에 대한 비율값(%)으로 환산하여 나타냈다. 척추골은 어류의 측면을 X-ray 장비(SVC-2002; Softex, Tokyo, Japan)로 촬영하여, 촬영된 사진을 통해 계수하였다.
, 2013)을 이용하여 kimura-2-parameter model (Kimura, 1980)로 계산하였다. 또한 선행연구와의 비교를 위해 최대유사분석 계통수[maximum likelihood (ML) tree]를 bootstrap 1,000번을 거쳐 작성하였다. Akaike information criterion (AIC)를 기반으로 한 J model test (Posada, 2008)을 이용하여 염기조성 및 뉴클레오타이드 치환 모델을 추정하였다.
PCR은 AccuPower® PCR Premix에 total DNA 4 µL를 첨가한 후, 총 20 µL가 될 때까지 3차 증류수를 넣고 Thermal cycler(C1000™; Bio-Rad, Hercules, CA, USA)를 이용하여 다음과 같은 조건에서 PCR을 수행하였다[Initial denaturation 95°C, 5 min; PCR reaction 37 cycle (denaturation 94°C, 30 sec; annealing 52°C, 30 sec; extension 72°C, 1 min); final extension 72°C, 7 min]. 염기서열은 ABI 3730XL DNA Analyzer (Applied Biosystemsm Inc., Foster City, CA, USA)에서 ABI Bigdyeterminator cycle sequencing ready reaction Kit v 3.1을 이용하여 다음과 같은 조건으로 cycle sequencing을 통해 얻었다. 얻어진 염기서열은 National Center for Biotechnology Information (NCBI)에 등록하였고(NIFS_FRRC_1, OR816057), 염기서열비교를 위해 NCBI에 등록된 노랑촉수속 어류 12종, 촉수속(Parupeneus) 어류 1종, 외집단(남방돛양태) 1종(Upeneus vittatus, OQ385541; Upeneus sulphureus, NC063690; Upeneus supravittatus, KR057899; Upeneus suahelicus, KP293726; Upeneus mascareinsis, KC147807; Upeneus subvittatus, OQ386976; Upeneus moluccensis, OQ387766; Upeneus tragula, NC061030; Upeneus pori, ON182865; Upeneus japonicus, OP178600; Upeneus margarethae, OL410158; Parupeneus indicus, OQ387264; Bathycallionymus kaianus, EF607336)과 함께 BioEdit version 7 (Hall, 1999)의 clustal W (Thompson et al.
1). 채집된 개체는 현장에서 Nakabo (2013)를 참고하여 형태분석을 통해 동정되었고 추후 분자분석을 위해 어체의 오른쪽 미병부의 근육조직 일부를 99% 에탄올에 넣어 보존하였다. 연구소로 운반된 어체는 15% 포르말린에 1주일간 고정하였고 3일간의 수세과정을 거친 후 70% 에탄올에 보존하였다.
1 mm 단위까지 측정하였으며, 측정값은 체장에 대한 비율값(%)으로 환산하여 나타냈다. 척추골은 어류의 측면을 X-ray 장비(SVC-2002; Softex, Tokyo, Japan)로 촬영하여, 촬영된 사진을 통해 계수하였다.

대상 데이터

형태분석을 위한 계수 및 계측은 Nakabo (2013), Uiblein and Heemstra (2010), Uiblein and Mcgrouther (2012)을 참고하였다. 8개의 계수형질과 22개의 계측형질을 분석하였다. 계측형질의 경우, vernier calipers를 이용하여 0.
노랑촉수속 어류 1개체는 2022년 11월 9일 국립수산과학원 수산과학조사선(탐구23호, 1,679톤)의 저층트롤을 이용하여 제주도 남부 해역에서 채집되었다(Fig. 1).
연구소로 운반된 어체는 15% 포르말린에 1주일간 고정하였고 3일간의 수세과정을 거친 후 70% 에탄올에 보존하였다. 본 종의 표본은 국립수산과학원 수산자원연구센터(National Institute of Fisheries Science, Fisheries Resources Research Center, NIFS_FRRC)에 등록 및 보관하였다.
표본번호 NIFS_FRRC_1, 전장 146.9 mm, 제주특별자치도 남부해역(32˚25ʹ21ʺN, 126˚75ʹ10ʺE), 수심 111.3 m, 저층수온 17.3°C, 저층트롤, 2022년 11월 9일, 최시원.

이론/모형

또한 선행연구와의 비교를 위해 최대유사분석 계통수[maximum likelihood (ML) tree]를 bootstrap 1,000번을 거쳐 작성하였다. Akaike information criterion (AIC)를 기반으로 한 J model test (Posada, 2008)을 이용하여 염기조성 및 뉴클레오타이드 치환 모델을 추정하였다. Distribution with a shape parameter는 0.
1을 이용하여 다음과 같은 조건으로 cycle sequencing을 통해 얻었다. 얻어진 염기서열은 National Center for Biotechnology Information (NCBI)에 등록하였고(NIFS_FRRC_1, OR816057), 염기서열비교를 위해 NCBI에 등록된 노랑촉수속 어류 12종, 촉수속(Parupeneus) 어류 1종, 외집단(남방돛양태) 1종(Upeneus vittatus, OQ385541; Upeneus sulphureus, NC063690; Upeneus supravittatus, KR057899; Upeneus suahelicus, KP293726; Upeneus mascareinsis, KC147807; Upeneus subvittatus, OQ386976; Upeneus moluccensis, OQ387766; Upeneus tragula, NC061030; Upeneus pori, ON182865; Upeneus japonicus, OP178600; Upeneus margarethae, OL410158; Parupeneus indicus, OQ387264; Bathycallionymus kaianus, EF607336)과 함께 BioEdit version 7 (Hall, 1999)의 clustal W (Thompson et al., 1994)를 이용하여 정렬하였다. 종확정을 위한 유전거리는 MEGA 6 프로그램(Tamura et al.
, 1994)를 이용하여 정렬하였다. 종확정을 위한 유전거리는 MEGA 6 프로그램(Tamura et al., 2013)을 이용하여 kimura-2-parameter model (Kimura, 1980)로 계산하였다. 또한 선행연구와의 비교를 위해 최대유사분석 계통수[maximum likelihood (ML) tree]를 bootstrap 1,000번을 거쳐 작성하였다.
형태분석을 위한 계수 및 계측은 Nakabo (2013), Uiblein and Heemstra (2010), Uiblein and Mcgrouther (2012)을 참고하였다. 8개의 계수형질과 22개의 계측형질을 분석하였다.

성능/효과

Upeneus subvittatus (Temminck and Schlegel, 1843) (Table 1; Fig. 2)
Upeneus subvittatus (Temminck and Schlegel, 1843) (Table 1; Fig. 2)
2022년 11월 9일 제주도 남부 해역에서 채집된 촉수과 어류 1개체를 본 연구에서 형태분석을 시행한 결과, 구개골치와 서골치가 존재하고 꼬리지느러미에 줄무늬가 존재하며 첫번째 등지느러미의 끝에 검은색 무늬를 가지고 있었다. 또한 꼬리지느러미 줄무늬들의 두께가 비교적 일정하고 몸에는 특별한 무늬가 없는 특징에 따라, 본 종을 U.
22–25% SL)]의 비율값에서 차이를 보였고 등지느러미 기점 이전의 길이와 항문전장, 문장, 두장, 아래턱 길이 및 수염 길이에서는 근소한 차이를 보였다
22–28% SL)를 가졌으며, 꼬리지느러미 하엽 중앙에 존재하는 줄무늬의 너비가 본 종의 줄무늬와 비교했을 때 더 넓었고 몸에 세로줄이 있어 차이를 보였다
9.2–9.9% SL), Uiblein and Mcgrouther (2012)가 제시한 두 종의 분류형질 중 하나인 체고[첫번째 등지느러미 기점에서의 체고(23.1% SL vs
24–27% SL in U. davidaromi)과 눈 중앙에서 측정한 두고(17.5% SL vs. 20–24% SL)에서 차이를 보였고, U.
20–24% SL)에서 차이를 보였고, U. mascareinsis와는 미병고(10.6% SL vs. 8.
U. stenopsis는 본 종보다 눈이 크다는 형태적 차이를 보였으나(8.8 vs. 9.
본종과 U. stenopsis는 형태적으로 매우 유사하기 때문에 척추골을 포함한 내부 형태학적인 분석과 DNA의 비교를 통해 종을 동정할 수 있을 것으로 판단된다. 마지막으로 우리나라에 서식하는 검은줄촉수는 노란색 수염을 가지며 몸에 수많은 점들이 분포하여 본종과 잘 구분된다(Kim et al.
subvittatus와 유전적으로 99.8% 일치하였고 계통수 내에서도 가장 가깝게 유집되었으며, 다른 노랑촉수속 어류 10종과 유전거리 0.038–0.189, 촉수속 어류와 유전거리 0.171로 유전적 차이를 보였다(Fig
suahelicus와 U. supravittatus보다 더 낮은 첫번째 등지느러미(U. subvittatus, 20.
supravittatus)를 가지고 U. supravittatus보다 더 적은 새파수(25 vs. 29–32)를 가져 차이를 보인다.
stenopsis와 비교하면, U. vittatus는 본종보다 더 높은 첫번째 등지느러미(20.1% SL vs. 22–28% SL)를 가졌으며, 꼬리지느러미 하엽 중앙에 존재하는 줄무늬의 너비가 본 종의 줄무늬와 비교했을 때 더 넓었고 몸에 세로줄이 있어 차이를 보였다.
그 중 본종은 8개의 등지느러미 극조, 26–32개의 새파, 15–17개의 가슴지느러미 연조를 가지고 꼬리지느러미 양엽에 줄무늬가 있는 종들을 “vittatus group”으로 분류하였다
노랑촉수속 어류 1개체의 mtDNA COI 영역을 증폭시켜 확보한 염기서열은 575 bp이며, NCBI에 등록된 노랑촉수속 어류 11종(U. subvittatus, U.
따라서 “stenopsis group”의 분자계통학적 지지를 얻기 위해선 본 연구에서 분석되지 않은3종(U
또한 새롭게 종을 추가하는 것은 국가 해양생물주권 주장에 필요한 과학적 근거자료를 마련하는데 필요하다(MABIK, 2023). 따라서 제주도에서 채집된 U. subvittatus는 꼬리지느러미에 줄무늬를 가지고 있는 특징에 따라 “줄무늬꼬리촉수”로 새로운 국명을 제안하고 우리나라 해양어류 종목록에 본 종을 추가한다.
subvittatus로 동정하였다(Nakabo, 2013). 또한, 외부형태와 계수형질은 U. subvittatus의 원기재와도 일치하였다(Temminck and Schlegel, 1843).
subvittatus의 계측형질은 Uiblein and Mcgrouther (2012)와 약간의 차이를 보였다. 먼저, 체장에 대한 두고(20% SL vs. 22–25% SL)와 체고[첫번째 등지느러미 기점에서의 체고(23% SL vs.
노랑촉수속 어류 1개체의 계수 및 계측값은 Table 1에 나타냈다. 몸은 길고 체형은 비교적 두꺼운 측편형으로 방추형에 가깝고 두부에서 미부로 갈수록 폭이 얇아지며 체고도 미병부로 갈수록 낮아진다(Fig. 2).
2). 수염은 전체적으로 흰색이며 중간에 옅은 적색이 나타난다. 배지느러미와 뒷지느러미는 흰색을 띠고 특별한 무늬를 가지지 않는다.
채집된 개체는 현장에서 Nakabo (2013)를 참고하여 형태분석을 통해 동정되었고 추후 분자분석을 위해 어체의 오른쪽 미병부의 근육조직 일부를 99% 에탄올에 넣어 보존하였다. 연구소로 운반된 어체는 15% 포르말린에 1주일간 고정하였고 3일간의 수세과정을 거친 후 70% 에탄올에 보존하였다. 본 종의 표본은 국립수산과학원 수산자원연구센터(National Institute of Fisheries Science, Fisheries Resources Research Center, NIFS_FRRC)에 등록 및 보관하였다.
등지느러미는 두개로 나뉘어 있고 첫번째 등지느러미는 극조로 이루어져 있으며 두번째 등지느러미는 모두 연조로 이루어져 있다. 첫번째 등지느러미의 첫번째 극조는 매우 짧으며 두번째 등지느러미와 뒷지느러미의 마지막 연조는 분리 연조이다. 두번째 등지느러미와 뒷지느러미는 대칭으로 위치하고 배지느러미는 첫번째 등지느러미보다 앞에 위치한다.
22–25% SL)]의 비율값에서 차이를 보였고 등지느러미 기점 이전의 길이와 항문전장, 문장, 두장, 아래턱 길이 및 수염 길이에서는 근소한 차이를 보였다. 추가로 노랑촉수속 어류의 근연종들 사이에 계수형질 중 주요한 분류키로 사용되는 새파의 수(7+18 vs. 7-9+19-21)에서도 약간의 차이를 보였다.
추가로 본 연구에서 표본의 비늘 탈락으로 인해 계수하지 못했던 측선 비늘 수(34–35 vs
추가로 실시한 분자분석에서는 본종의 mtDNA COI영역이 NCBI에 등록된 근연종들의 염기서열과 유전거리 0.038–0.189로 큰 차이를 보였고 U

후속연구

vanuatu, U. davidaromi, U.stenopsis)의 DNA를 확보 후, 핵 DNA 영역에 대한 추가적인 분자분석이 필요하다.
따라서 이와 같이 형태적인 차이를 보이는 것에 대한 원인을 찾기 위해서는 북서태평양에서 추가적인 U. subvittatus의 확보와 형태분석 및 종내 변이를 잘 보여줄 수 있는 DNA영역인 mtDNA control region 영역 또는 msDNA와 같은 분자분석이 진행되어야 할 것으로 판단된다(Myoung and Kim, 2014; Myoung et al., 2016).
따라서 열대 및 아열대성 어종을 포함한 장기간의 어류상 모니터링은 지구온난화의 영향을 간접적으로 파악할 수 있는 자료가 된다(Choi, 2004; Kim, 2009). 또한 새롭게 종을 추가하는 것은 국가 해양생물주권 주장에 필요한 과학적 근거자료를 마련하는데 필요하다(MABIK, 2023). 따라서 제주도에서 채집된 U.

참고문헌 (50)

Bandai A, Itou M and Motomura H. 2018. First northern hemisphere record of the tailspot goatfish Upeneus spottocaudalis (Perciformes: Mullidae) from Kagoshima, Japan. Japan J？Ichthyol 65, 35-39. https://doi.org/10.11369/jji.17-056.
Bemis KE, Girard MG, Santos MD, Carpenter KE, Deeds JR,？Pitassy DE, Flores NA, Hunter ES, Driskell AC, Macdonald III KS, Weigt LA and Williams JT. 2023. Biodiversity of？Philippine marine fishes: A DNA barcode reference library？based on voucher specimens. Sci Data 10, 411. https://doi.org/10.1038/s41597-023-02306-9.

상세보기
Bleeker P. 1855. Zesde bijdrage tot de kennis der ichthyologische fauna van Amboina. Natuurkundig Tijdschrift voor？Nederlandsch Indie 8, 391-434.
Choi Y. 2004. Warning from unfamiliar fish from the southern？seas. Sci Technol 10, 50-53.
Choi Y, Oh JK and Ra HK. 2003. Fish fauna of the southern？coastal waters in Jeju-do, Korea. Korean J Ichthyol 15, 120-126.
Cuvier G. 1829. Le Regne Animal, distribue d'apres son organisation, pour servir de base a l'histoire naturelle des animaux？et d'introduction a l'anatomie compare, Vol 2, 2nd ed. Deterville, Paris, France.
Forsskal P. 1775. Pisces. In: Descriptiones Animalium Avium,？Amphibiorum, Piscium, Insectorum, Vermium. Molleri,？Copenhagen, Denmark, 22-75.
Fricke R, Eschmeyer WN and Fong JD. 2024. Eschmeyer's catalog of fishes: Genera/species by family/subfamily. Retrieved？from http://researcharchive.calacademy.org/research/ichthyology/catalog/SpeciesByFamily.asp on Jan 20, 2024.
GBIF (Global Biodiversity Information Facility). 2024. GBIF？Backbone Taxonomy. Retrieved from https://www.gbif.org？on Jan 25, 2024.
Golani D and Galil B. 1991. Trophic relationships of colonizing and indigenous goatfishes (Mullidae) in the eastern？Mediterranean with special emphasis on decapod crustaceans. Hydrobiologia 218, 27-33. https://doi.org/10.1007/BF00006415.

상세보기
Gosline WA. 1984. Structure, function, and ecology in the goatfishes (family Mullidae). Pac Sci 38, 312-323.
Hall TA. 1999. BioEdit: A user-friendly biological sequence？alignment editor and analysis program for windows 95/98/NT. Nucleic Acids Symp Ser 41, 95-98.

상세보기
Hasegawa M, Kishino K and Yano T. 1985. Dating the human-ape splitting by a molecular clock of mitochondrial？DNA. J Mol Evol 22, 160-174. https://doi.org/10.1007/BF02101694.

상세보기
Houttuyn M. 1782. Beschryving van eenige Japanese visschen,？en andere zee-schepzelen. Verh Holl Maatsch Wet Haarlem？20, 311-350.
Jeong SY and Kim JK. 2023. First record of Bothus pantherinus？(Bothidae, Pleuronectiformes) from Korea. Korean J Ichthyol 35, 44-49. https://doi.org/10.35399/ISK.35.1.6.

원문보기 상세보기
Kim BY, Kim MJ and Song CB. 2013. First record of the freckled goatfish, Upeneus tragula (Mullidae, Perciformes) from？Korea. Korean J Ichthyol 25, 244-248.
Kim IS, Choi Y, Lee CL, Lee YJ, Kim BJ and Kim JH. 2005. Illustrated Book of Korean Fishes. Kyohak Publishing, Seoul,？Korea, 342-346.
Kim JK. 2009. Diversity and conservation of Korean marine？fishes. Korean J Ichthyol 21, 52-62.
Kim JK, Park JH and Hwang KS. 2007. One unrecorded Species of Acanthurus nigricauda (Acanthuridae, Perciformes)？from Korea. Korean J Ichthyol 19, 164-167.
Kimura M. 1980. A simple method for estimating evolutionary？rates of base substitutions through comparative studies of？nucleotide sequences. J Mol Evol 16, 111-120. https://doi.org/10.1007/BF01731581.

상세보기
Lee YJ, Song YS and Kim JK. 2021. First record of juvenile of？the mirror butterflyfish, Chaetodon speculum Cuvier, 1831？(Perciformes: Chaetodontidae) collected from Pohang, Korea. J Korean Soc Fish Ocean Technol 57, 374-381. https://doi.org/10.3796/KSFOT.2021.57.4.374.

원문보기 상세보기
MABIK (Marine Biodiversity Institute of Korea). 2023. National List of Marine Species. Namu Press, Seocheon, Korea, 39.
Masuda H, Amaoka K and Araga C. 1984. The Fishes of the？Japanese Archipelago. Tokai University Press, Tokyo, Japan, 437.
Motomura H, Alama UB, Muto N, Babaran RP and Ishikawa？S. 2017. Commercial and bycatch market fishes of Panay？Island, Republic of the Philippines. Kagoshima University？Museum, Kagoshima, Japan, University of the Philippines？Visayas, Iloilo, Philippines and Research Institute for Humanity and Nature, Kyoto, Japan, 246.
Myoung SH and Kim JK. 2014. Genetic diversity and population structure of the gizzard shad, Konosirus punctatus (Clupeidae, Pisces), in Korean waters based on mitochondrial DNA control region sequences. Genes Genom 36, 591-598.？https://doi.org/10.1007/s13258-014-0197-6.

상세보기
Myoung SH, Ban TW and Kim JK. 2016. Population structure？of Liparis tanakae (PISCES, Liparidae) from Korea based？on morphological and molecular traits. Korean J Fish Aquat？Sci 49, 198-207. https://doi.org/10.5657/KFAS.2016.0198.

원문보기 상세보기
Myoung SH, Kim JK and Kwun HJ. 2018. New record of Cantherhines multilineatus (Tanaka, 1918) (Pisces: Monacanthidae) from Jeju Island, Korea. Korean J Fish Aquat Sci 51,？199-202. https://doi.org/10.5657/KFAS.2018.0199.

원문보기 상세보기
Nakabo T. 2002. Mullidae. In: Fishes of Japan with Pictorial？Keys to the Species, 2nd ed. Tokai University Press, Tokyo,？Japan, 872-877.
Nakabo. 2013. Mullidae. In: Fishes of Japan with Pictorial Keys？to the Species, 3rd ed. Tokai University Press, Tokyo, Japan,？976-982.
Nelson JS, Grande TC and Wilson MV. 2016. Fishes of the？World. 5th edition. John Wiley and Sons, Hoboken, NJ,？U.S.A., 707.
Okamura O and Amaoka K. 1997. Sea Fishes of Japan. YamaKei, Tokyo, Japan, 784.
Poloczanska ES, Brown CJ, Sydeman WJ, Kiessling W, Schoeman DS, Moore PJ, Brander K, Bruno JF, Buckley LB,？Burrows MT, Duarte CM, Halpern BS, Holding J, Kappel？CV, O'Connor MI, Pandolfi JM, Parmesan C, Schwing F,？Thompson SA and Richardson AJ. 2013. Global imprint of？climate change on marine life. Nat Clim Change 3, 919-925.？https://doi.org/10.1038/nclimate1958.

상세보기
Posada D. 2008. jModelTest: Phylogenetic model averaging.？Mol Biol Evol 25, 1253-1256. https://doi.org/10.1093/molbev/msn083.

상세보기
Punzon A, Lopez-Lopez L, Gonzalez-Irusta JM, Preciado I, Hidalgo M, Serrano A, Tel E, Somavilla R, Polo J, Blanco M,？Ruiz-Pico S, Fernandez-Zapico O, Velasco F and Massuti？E. 2021. Tracking the effect of temperature in marine demersal fish communities. Ecol Indic 121, 107142. https://doi.org/10.1016/j.ecolind.2020.107142.

상세보기
Randall JE. 2004. Revision of the goatfish genus Parupeneus？(Perciformes: Mullidae), with description of two new species. In: Indo-Pacific Fishes. Vol. 36. Bishop Museum, Honolulu, HI, U.S.A., 1-64.
Randall JE and Lim KKP. 2000. A checklist of the fishes of the？South China Sea. Raffles Bull Zool 8, 569-667.
Richardson J. 1846. Report on the ichthyology of the seas of？China and Japan. Report of the British Association for the？Advancement of Science 15th Meet, 187-320.
Sato M. 1937. Preliminary report on the barbels of a Japanese？goatfish, Upeneoides bensasi (Temminck & Schlegel). Sci.？Repts. Tohoku Imperial University, 4th Ser. (Biology), II:？259-264
Tamura K, Stecher G, Peterson D, Filipski A and Kumar S. 2013.？MEGA6: Molecular evolutionary genetics analysis version 6.0. Mol Biol Evol 30, 2725-2729. https://doi.org/10.1093/molbev/mst197.

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Temminck CJ and Schlegel H. 1843. Pisces, Parts 2-4. In: de？Siebold's Fauna Japonica. Sieold PF, ed. Muller, Amsterdam, Netherlands, 21-72.
Thompson JD, Higgins DG and Gibson TJ. 1994. Clustal W:？Improving the sensitivity of progressive multiple sequence？alignment through sequence weighting, position specific？gap penalties and weight matrix choice. Nucleic Acids Res？22, 4673-4680. https://doi.org/10.1093/nar/22.22.4673.
Uiblein F and Causse R. 2013. A new deep-water goatfish of？the genus Upeneus (Mullidae) from Vanuatu, South Pacific. Zootaxa 3666, 337-344. https://doi.org/10.11646/zootaxa.3666.3.4.

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Uiblein F and Heemstra PC. 2010. A taxonomic review of the？Western Indian Ocean goatfishes of the genus Upeneus？(Family Mullidae), with descriptions of four new species.？Smithiana Bull 11, 35-71.
Uiblein F and Maclaine J. 2021. Description of Upeneus madras？(Mullidae), a new goatfish species from SE India (NE Indian？Ocean), with establishment of the pori-species group and a？review of barbel colour in Upeneus species. Cybium 45,？283-296. https://doi.org/10.26028/cybium/2021-454-004.
Uiblein F and Mcgrouther M. 2012. A new deep-water goatfish？of the genus Upeneus (Mullidae) from northern Australia？and the Philippines, with a taxonomic account of U. subvittatus and remarks on U. mascareinsis. Zootaxa 3550, 61-70.？https://doi.org/10.11646/zootaxa.3550.1.4.

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Uiblein F and Motomura H. 2021. Three new goatfishes of the？genus Upeneus from the Eastern Indian Ocean and Western Pacific, with an updated taxonomic account for U. itoui？(Mullidae: japonicus-species group). Zootaxa 4938, 298-324. https://doi.org/10.11646/zootaxa.4938.3.2.

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Uiblein F, Gledhill DC, Pavlov DA, Hoang TA and Shaheen S. 2019. Three new goatfishes of the genus Upeneus (Mullidae) from the Indo-Pacific, with a redescription of colour？patterns in U. margarethae. Zootaxa 4683, 151-196. https://doi.org/10.11646/zootaxa.4683.2.1.

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Uiblein F, Gouws G, Gledhill DC and Stone K. 2016. Just off the？beach: Intrageneric distinctiveness of the bandtail goatfish？Upeneus taeniopterus (Mullidae) based on a comprehensive？alpha-taxonomy and barcoding approach. Mar Biol Res 12,？675-694. https://doi.org/10.1080/17451000.2016.1190458.

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Ward RD. 2009. DNA barcode divergence among species and？genera of birds and fishes. Mol Ecol Res 9, 1077-1085.？https://doi.org/10.1111/j.1755-0998.2009.02541.x.

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Ward RD, Zemlac TC, Innes BH, Last PR and Hebert PDN. 2005.？DNA barcoding Australia's fish species. Phil Trans Biol Sci？360, 1847-1857. http://doi.org/10.1098/rstb.2005.1716.？

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표제어: PCR

동의어: Packet Collision Rate

용어 설명 출처 목록 (6)

용어 설명: PCR은 세균 특이성이 있는 primer를 이용하여 적은 수의 세균이 있을지라도 쉽게 검출할 수 있는 유용한 방법이며, 이를 이용하여 구강 내 치면세균막이나 타액에서 직접 세균을 검출할 수 있게 되었다[8].

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