은하콩의 조 사포닌은 4.59mg/g이었으며, 콩나물로 발아 생장하면서 사포닌 함량이 증가하여 재배 $5{\sim}6$일째에 $5.30{\sim}5.33mg/g$으로 가장 높은 함량을 보였으며, 6일째 이후에는 사포닌 함량이 감소하였다. 6일 동안 재배하여 자엽, 줄기 및 뿌리의 조 사포닌 함량은 자엽 4.17mg/g에 비해 줄기 7.46mg/g과 뿌리 7.45mg/g으로 거의 2배정도 높은 함량을 보였으며, 뿌리와 줄기는 비슷한 수준이었다. TLC를 이용한 부위별 사포닌 밴드 패턴으로부터 14종이 확인되었다. 줄기와 뿌리 부위는 콩에서 발견되는 여러 가지 사포닌이 함유되어 있으며, 줄기와 뿌리 부위는 Rf 0.5이하에서 비슷한 패턴으로 뚜렷한 밴드를 나타냈다. 콩의 soyasaponin group B 사포닌함량과 조성은 5일 동안 콩나물로 생장하면서 IV는 8.7배, I는 7배, V는 3.3배, II는 2배 그리고 III는 1.4배로 각각 증가하였으며, 특히 IV와 I이 많이 증가하였다. 콩나물 부위별 사포닌 함량은 자엽 부분에서 비교적 적은 양이 고루 함유하였다. 줄기는 자엽에 비해 I은 10.53배, III는 10.49배, V는 8.14배, IV는 5.72배 그리고 II는 1.45배로 더 많았다. 뿌리는 자엽에 비해 V는 9.37배, I는 5.54배 IV는 4.86배 그리고 III는 2.77배 많았지만, II는 자엽보다 2.96배 더 적었다. 콩나물의 줄기와 뿌리가 자라면서 주로 soyasaponin I, IV 및 V가 증가하였다. 이와 같이 콩나물의 사포닌은 성장함에 따라 또는 부위에 따라서 각각 다르게 생합성이 조절되는 것으로 생각된다.
은하콩의 조 사포닌은 4.59mg/g이었으며, 콩나물로 발아 생장하면서 사포닌 함량이 증가하여 재배 $5{\sim}6$일째에 $5.30{\sim}5.33mg/g$으로 가장 높은 함량을 보였으며, 6일째 이후에는 사포닌 함량이 감소하였다. 6일 동안 재배하여 자엽, 줄기 및 뿌리의 조 사포닌 함량은 자엽 4.17mg/g에 비해 줄기 7.46mg/g과 뿌리 7.45mg/g으로 거의 2배정도 높은 함량을 보였으며, 뿌리와 줄기는 비슷한 수준이었다. TLC를 이용한 부위별 사포닌 밴드 패턴으로부터 14종이 확인되었다. 줄기와 뿌리 부위는 콩에서 발견되는 여러 가지 사포닌이 함유되어 있으며, 줄기와 뿌리 부위는 Rf 0.5이하에서 비슷한 패턴으로 뚜렷한 밴드를 나타냈다. 콩의 soyasaponin group B 사포닌함량과 조성은 5일 동안 콩나물로 생장하면서 IV는 8.7배, I는 7배, V는 3.3배, II는 2배 그리고 III는 1.4배로 각각 증가하였으며, 특히 IV와 I이 많이 증가하였다. 콩나물 부위별 사포닌 함량은 자엽 부분에서 비교적 적은 양이 고루 함유하였다. 줄기는 자엽에 비해 I은 10.53배, III는 10.49배, V는 8.14배, IV는 5.72배 그리고 II는 1.45배로 더 많았다. 뿌리는 자엽에 비해 V는 9.37배, I는 5.54배 IV는 4.86배 그리고 III는 2.77배 많았지만, II는 자엽보다 2.96배 더 적었다. 콩나물의 줄기와 뿌리가 자라면서 주로 soyasaponin I, IV 및 V가 증가하였다. 이와 같이 콩나물의 사포닌은 성장함에 따라 또는 부위에 따라서 각각 다르게 생합성이 조절되는 것으로 생각된다.
We investigated the changes in saponins during the cultivation of soybean sprout. Crude saponin content was 4.15mg/g in germinated soybean and reached its peark (5.33mg/g) in soybean sprout cultivated for six days. Saponin content in the cotyledon, stem, and root of the soybean sprout cultivated for...
We investigated the changes in saponins during the cultivation of soybean sprout. Crude saponin content was 4.15mg/g in germinated soybean and reached its peark (5.33mg/g) in soybean sprout cultivated for six days. Saponin content in the cotyledon, stem, and root of the soybean sprout cultivated for six days were 4.17, 7.46, and 7.45mg/g, respectively. Soyasaponins extracted from the soybean sprout were analyzed with LC-electrospray ionization (ESI)-mass spectrometry, in which a reverse phase $C_18$ column was used for separation of saponins. In the soybeen sprout, group B saponin, I, II, III, IV, and V increased 7, 2, 1.4, 8.7, and 3.3 fold, respectively, compared to those in the soybean seed. Group B saponin I, II, III, IV, and V in the stem of the soybean sprout were 10.53, 1.45, 10.49, 5.72 and 8.14 fold the level of those in the cotyldon, respectively. In the root, the contents of group B saponin I, III, IV, and V were 5.54, 2.77, 4.86 and 9.73 fold, respectively, higher than those in cotyledon, but the content of group B saponin 2 was 2.96 fold less than that in cotyledon. These results indicate that the biosyntheses of group B saponins are differentially regulated in growing soybean sprout.
We investigated the changes in saponins during the cultivation of soybean sprout. Crude saponin content was 4.15mg/g in germinated soybean and reached its peark (5.33mg/g) in soybean sprout cultivated for six days. Saponin content in the cotyledon, stem, and root of the soybean sprout cultivated for six days were 4.17, 7.46, and 7.45mg/g, respectively. Soyasaponins extracted from the soybean sprout were analyzed with LC-electrospray ionization (ESI)-mass spectrometry, in which a reverse phase $C_18$ column was used for separation of saponins. In the soybeen sprout, group B saponin, I, II, III, IV, and V increased 7, 2, 1.4, 8.7, and 3.3 fold, respectively, compared to those in the soybean seed. Group B saponin I, II, III, IV, and V in the stem of the soybean sprout were 10.53, 1.45, 10.49, 5.72 and 8.14 fold the level of those in the cotyldon, respectively. In the root, the contents of group B saponin I, III, IV, and V were 5.54, 2.77, 4.86 and 9.73 fold, respectively, higher than those in cotyledon, but the content of group B saponin 2 was 2.96 fold less than that in cotyledon. These results indicate that the biosyntheses of group B saponins are differentially regulated in growing soybean sprout.
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문제 정의
본 연구에서는 콩가공 식품 중 우리나라 사람들이 반찬으로 많이 먹는 콩나물에서 생리활성을 갖고 있는 사포닌 group B를 중심으로 조사하였다. 나물콩 중 은하콩을 자동 재배기를 이용하여, 재배하면서 생장 기간 및 부위별로 자엽, 줄기, 뿌리를 분리하여 사포닌의 함량 변화를 관찰하였다.
가설 설정
4. A : Various parts ofsoybean sprout. B: Crude saponin contents in various parts of soybean sprout.
A : Various parts ofsoybean sprout. B: Crude saponin contents in various parts of soybean sprout. The saponin contents were determined by Liberman-Burchard colorimetirc reaction0
The other lanes were loaded with crude saponins extracted from the same amount of dried tissues such as: B: Eunha soybean seed. C: Soybean sprout grown for three days. D: Cotyledon of soybean sprout grown for six days.
E: Stem of soybean sprout grown for six days. F: Root of soybean sprout grown for six days.
제안 방법
Methanol에 용해한 시료 일정량을 취하고, 빙초산을 가한 후 HzSQ를 천천히 가하면서 흔들어 색깔변화를 관찰하여 안정할 때 UV spectrophotometer(HP-8452, USA)를 이용하여 최대흡수파장 412nm에서 흡광도를 측정하였으며, 사포닌 표준품으로 표준곡선을 구하고 정량하였다";.
5일 동안 콩나물로 재배해서 Fig. 2와 같이 추출하여, HPLC 를 이용해 Table 1의 조건에서 사포닌을 분석하였다. 보고된 soyasaponin의 20종 중에서 생리활성을 갖는 group B를 중심으로 함량과 조성의 변화를 UV 205nm에서 흡광도의 상대적 값으로 살펴본 결과는 Table 2와 같다
콩나물의 생장기간별로 시료를 취하였다. 6일 동안 재배한 콩나물은 자엽 (cotyledon), 줄기 (stem), 뿌리 (root)의 세부분으로 나누어 부위별로 조 사포닌을 추출하였다. 이 때 줄기와 뿌리의 구분은 배축을 따라 밑으로 내려가면 갑자기 가늘어지는 부분이 있는더], 그 부분에서 윗부분은 줄기, 밑부분은 뿌리로 하여 시료를 취하였다(Fig.
중심으로 조사하였다. 나물콩 중 은하콩을 자동 재배기를 이용하여, 재배하면서 생장 기간 및 부위별로 자엽, 줄기, 뿌리를 분리하여 사포닌의 함량 변화를 관찰하였다.
모든 시료는 40 시간 동결건조(Beta 1-8K, Braun, USA)하여 분쇄기로 분말화하고, 50 mesh를 통과한 시료를 취했다. 추출방법은 Fuzzati 등(10)의 방법을 변형하여 조 사포닌을 얻었고(Fig. 2), 이를 methanol에 용해시켜 시료로 사용하였다.
물에 6회 이상 세척하였다. 플라스틱 재배용기(15X 15X12cm)에 옮겨 자동재배기(남해기전, 목포)에서 재배하였다. 재배기 내부 온도는 22± 1℃이고, 4시간마다 3분 동안 물을 분무하였다.
대상 데이터
TLC 전개 용매 는 chlorofonn : methanol: water(65 : 35 : 10) 혼합액에서 아래층 용액을 사용하였다. TLC chamber에서 전개하여, 건조시킨 후 10% H2SO4* 분무하고, 110℃ 오븐에서 5분간 발색시켰다즈.
본 실험에 사용한 나물콩은 2001년도 산 은하콩(Glycine max (L.) MgG으로 전라남도 농업 기술원에서 구입하여, 4℃ 에서 냉장 저장하면서 시료로 사용하였다.
사포닌 표준품(Wako Ltd., Japan)은 구입하여 사용하였고, TLC plate는 silica gel 60F254 precoated aluminum sheet(두께 0.2 mm, 20X 20 cm; Merck Co., Germany)를 사용하였다.
성능/효과
33 mg/g으로 가장 높은 함량을 보였으며, 6일째 이후에는 사포닌 함량이 감소하였다. 6일 동안 재배하여 자엽, 줄기 및 뿌리의 조 사포닌 함량은 자엽 4.17mg/g에 비해 줄기 7.46mg/g과 뿌리 7.45mg/g으로 거의 2배정도 높은 함량을 보였으며, 뿌리와 줄기는 비슷한 수준이었다. TLC를 이용한 부위별 사포닌 밴드 패턴으로부터 14종이 확인되었다.
45mg/g으로 거의 2배정도 높은 함량을 보였으며, 뿌리와 줄기는 비슷한 수준이었다. TLC를 이용한 부위별 사포닌 밴드 패턴으로부터 14종이 확인되었다. 줄기와 뿌리 부위는 콩에서 발견되는 여러 가지 사포닌이 함유되어있으며, 줄기와 뿌리 부위는 Rf 0.
59 mg/g이었으며, 콩나물로 발아 . 생장하면서 사포닌 함량이 증가하여 재배 5~6일째에 5.30-5.33 mg/g으로 가장 높은 함량을 보였으며, 6일째 이후에는 사포닌 함량이 감소하였다. 6일 동안 재배하여 자엽, 줄기 및 뿌리의 조 사포닌 함량은 자엽 4.
이는 수세와 침지하는 동안에 외부로 유출되는 것으로 생각되며, 이후 콩나물이 발아 . 생장하면서 점차 함량 증가를 보여서 재배 5~6일째, 5.30~5.33 mg/g으로 가장 높은 함량을 보였다. 이 시기에 콩나물을 수확하기에 적당한 길이와 두께를 갖는다.
콩나물의 줄기와 뿌리가 자라면서 주로 I, IV, V의 사포닌이 증가하였다. 이상의 결과로부터 group B 사포닌의 경우 자엽에 적고 주로 줄기와 뿌리에 많이 분포하며, 콩나물 부위에 따라 증가하는 사포닌의 종류가 다름을 알 수 있다. 사포닌의 종류가 다를 경우 인체에 미치는 생리적 효과가 다르다는 여러 보고가 있다(5).
4와 같다. 자엽의 사포닌은 4.17mg/g에 비해 줄기 7.46mg/g고} 뿌리 7.45mg/g으로 줄기와 뿌리에 있는 사포닌 함량은 자엽에 비해 거의 2 배정도 높은 함량을 보였으며, 줄기와 뿌리에 거의 비슷한 함량이 존재하였다.
후속연구
또한 사포닌은 병원균의 공격을 비롯한 환경변화에 생합성이 매우 민감한 것으로 알려져 있다(8,16). 그러므로 콩나물에서 재배조건 및 성장에 따른 사포닌 종류별 함량의 변화에 대한 좀 더 깊은 연구는 콩나물의 생리적 기능성을 이해하는데 많은 도움을 줄 것이다.
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