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Monascus 균사체의 소규모 배양을 통한 고생산성 균주의 대규모 선별방법 확립과 통계적 생산배지 최적화를 통한 Monacolin-K 생산성 향상
Establishment of Miniaturized Cultivation Method for Large and Rapid Screening of High-yielding Monascus Mutants, and Enhanced Production of Monacolin-K through Statistical Optimization of Production Medium 원문보기

한국생물공학회지 = Korean journal of biotechnology and bioengineering, v.22 no.5, 2007년, pp.305 - 312  

이미진 (강원대학교 BT특성화학부대학 분자생명과학과, 강원대학교 생명공학연구소) ,  정용섭 (전북대학교 응용생물공학부) ,  김평현 (강원대학교 BT특성화학부대학 분자생명과학과, 강원대학교 생명공학연구소) ,  전계택 (바이오식품 소재개발 및 산업화연구센터)

초록
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가능한 한 대량의 균주를 테스트하여 고생산성을 지닌 균주를 신속히 선별하기 위해서는 소규모 액상배양 방법의 확립이 필수적인데, 강력한 지질저하제인 monacolin-K의 생산균주인 균사형성 Monascus의 경우 포자나 균사체의 형성이 활발하지 않은 배양 생리적 특성으로 인해 소규모 (miniature) 액상배양이 매우 어려운 문제점이 있다. 본 연구에서는 monacolin-K 고생산성 균주개량의 효율성을 큰 폭으로 증가시키고자, 기존의 플라스크 액상배양 방법을 소규모화시킨 tube 배양 방법을 개발함으로써 단기간에 보다 많은 양의 균주를 테스트하고자 하였다. 이차대사산물인 monacolin-K의 생합성은 각각의 배양단계에서의 생산균주의 배양형태가 중요한데, 특별히 최종 생산배양에서 생산성 증가에 심각한 영향을 미치는 배양형태인 직경 1 mm 이하의 pellet 모양을 유도하기 위해서는 성장배양 시에 반드시 고농도의 균사모양이 유도되어야 하는 것으로 관찰되었다. 50 ml tube (7 ml의 조업부피)를 이용하는 소규모 액상 성장배양의 경우 solid seed 배양 단계에서의 포자형성배지의 조성을 통계적 방법을 통해 최적화하고, 또한 성장배지 성분에 brown rice 가루 20 g/L를 첨가할 때, 원하는 균사모양의 배양형태가 유도됨을 확인할 수 있었다. 한편 7 ml의 조업부피의 tube를 이용한 소규모 성장배양 방법의 개발로 인해, 기존의 flask 배양을 이용할 때보다 단기간에 훨씬 많은 변이주의 생산성을 조사하게 되어 균주개량 속도를 큰 폭으로 향상시킬 수는 있었으나, 선별된 개별 균주의 monacolin-K의 생산성은 오히려 전체적으로 감소하는 경향을 보여 주었다. 이러한 결과는 소규모 배양방법을 확립하기 위해 새로이 개발한 포자형성배지와 성장배지의 조성변화로 인해 기존에 확립된 생산배지에서는 생산균주의 monacolin-K 생합성 능력이 최대로 발휘되지 않았기 때문에 발생한 것으로 판단되었다. 따라서 본 연구를 통해 확립된 소규모 성장배양에 적합한 최적의 생산배지 조성을 확립하고자 통계적 방법인 Plackett-Burman design을 적용하여 monacolin-K 생산성 향상에 영향을 주는 glycerol, malt extract, yeast extract, brown rice의 4가지 성분들을 최종 선별하였고, 또한 이들의 최적농도 결정을 위해 반응표면분석 실험을 수행하였다. 이와 같이 결정된 최적 생산배지를 사용하여 생산배양을 수행한 결과, monacolin-K의 생산성이 2배 이상 증가하고, 배양 형태 또한 용존산소와 영양분의 전달이 매우 용이한 직경 1mm 이하의 pellet 모양을 유지함을 확인할 수 있었다.

Abstract AI-Helper 아이콘AI-Helper

It is crucial to develop a miniaturized cultivation method for large and rapid screening of high-yielding mutants of monacolin-K, a powerful anti-hypercholesterolemic secondary metabolite biosynthesized by the fungal cells of Monascus ruber. In order to investigate as many strains as possible in a s...

주제어

AI 본문요약
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문제 정의

  • 통해 고생산 균주를 선별하고자 하였고 선별된 균주를 이용하여 통계적 프로그램을 통해 생산 배지 조성을 최적화 하고자 하였다.
  • 이를 위해서는 성장배양 전 단계인 포자형성 단계로부터 충분히 많은 포자를 형성하여야 하는데 기존의 포자형성 배지인 PDA는 충분한 양의 포자를 형성하지 못하여 slant에서의 배양이 불가능하였다. 따라서 통계적 프로그램인 Plackett-Burman design을 이용하여 포자형성 배지의 조성을 최적화하고자 하였다. 문헌 조사를 통해 쌀에서 생산 균주를 배양할 경우 다량의 포자를 획득할 수 있다는 결과를 토대로(11) 기본 배지 성분으로 rice powder 와 agar powder를 이 용하고 Plackett-Burman design에 따라 11가지 성분을 high value (+1)와 low value (-1)의 12가지 조합으로 혼합하여 첨가한 후 peE-dish에 부어 건조시키고 생산 균주의 포자를 약 1 X 106 spores로 접종하여 배양한 결과 각 조합에서 Table 2와 같은 결과를 확인하였다 이를 통계프로그램을 이용해 분석한 결과 각성분들이 생산균주의 포자형성에 미치는 영향을 나타내는 main effect와 실험의 유의성을 확인하는 P값은 Table 3과 같다' 실험 결과 대부분의 조합에서는 실험 균주가 본래 가지고 있는 포자형성 능력보다 낮거나 비슷하게 나타났지만, 6번 조합의 경우 주목할 만하게도 기존 배지에서보다 약 200배가량 많은 수의 포자를 형성하는 것으로 나타났다.
  • 있다. 본 연구에서는 monacolin-K 고생산성 균주개량의 효율성을 큰 폭으로 증가시키고자, 기존의 플라스크 액상배양 방법을 소규모화시킨 tube 배양 방법을 개발함으로써 단기간에보다 많은 양의 균주를 테스트하고자 하였다. 이 차대 사산 물인 monacolin-K의 생합성은 각각의 배양단계에서의 생산 균주의 배양형태가 중요한더】, 특별히 최종 생산 배양에서 생산성 증가에 심각한 영향을 미치는 배양 형태인 직경 1 mm 이하의 pellet 모양을 유도하기 위해서는 성장배양 시에 반드시 고농도의 균사 모양이 유도되어야 하는 것으로 관찰되었다' 50 ml tube (7 ml의 조업 부피)를 이용하는 소 计모 액상 성장 배양의 경우 solid seed 배양 단계에서의 포자형성 배지의 조성을 통계적 방법을 통해 최적화하고, 또한 성장배지 성분에 brown rice 가루 20 g/L를 첨가할 때, 원하는 균사모양의 배양 형태가 유도됨을 확인할 수 있었다.
  • 위와 같은 실험으로 결정된 성장 배양까지의 miniature 배양 방법을 모두 적용하여 생산 균주의 random screening을 수행하면서 기존방법인 flask 성장 배양의 경우와 비교함으로써 성장배양의 miniature 배양 방법 적용의 가능성을 확인하고자 하였다. 실험 결과 miniature 배양 방법의 경우 여전히 monacolin-K 생산성이 다소 불안정하기는 하지만 같은 조건에서 monacolin-K의 안정적인 형태인 lactone form 이 flask 성장배양의 경우보다 많이 생산되는 것을 확인할 수 있었고 같은 균주로 miniature 배양 방법과 flask 배양 방법을 동시에 수행하였을 때의 monacolin-K 생산성을 비교하였을 때 대부분의 균주가 배양과정에서의 오차범위를 포함하는 최대 생산성의 ±20% 내에 존재하는 것을 확인하였으므로 (Fig.
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참고문헌 (11)

  1. Endo, A. (1979), Monacolin-K, a new hypocholesterolemic agent produced by Monascus species, J. Antibiot; 32, 852-854 

  2. Alberts, A. W., et al. (1980), Mevinolin: A Highly Potent Competitive Inhibitor of Hydroxymethylglutaryl-Coenzyme A Reductase and a Cholesterol-Lowering Agent, Proc. Nail. Acad Sri. USA 77, 3957-3961 

  3. Fears, R. (1983), Pharmacological control of 3-hydroxyl-3-methylglutaryl coenzyme reductase. In 3-Hydroxyl-3-methylglutaryl Coenzyme A Reductase, ed. J.R. Sabine. pp189-208. Boca Raton: CRC Press, Inc., ISBN 0-84936551-1 

  4. William, R. S. (1997), In Biotechnology of Antibiotics, 2nd. ed., pp779-805, Marcel Dekker, New York 

  5. Dietschy, J. M. and J. D. Wilson (1970), Regulation of Cholesterol Metabolism, N. Engl. J. Med, 282, 1179-1183 

  6. Manfredini, R, et al. (1983), Mixing and Oxygen Transfer in Conventional Stirred Fermentors, Biotechbol. Bioeng. 25, 3115-3131 

  7. Lewis, G. A, D. Mathieu and R. Phan-Tan-Luu (1999), Drug and pharmaceutical sciences-pharmaceutical experimental design, Vol. 92, Marcel Dekker, Inc., USA 

  8. Demain, A L. and J. E. Davies (1999), Manual of Industrial Microbiology and Biotechnology, 2nd ed., pp81-93, ASM Press, Washington 

  9. Box, G. E. P. and N. R. Draper (1987), Empirical Model Building and Response Surfaces, John Wiley & Sons, Inc., New York 

  10. Friedrich, J., et al (1995), High-performance Liquid Chromatographic Analysis of Mevinolin and Mevinolinic Acid in Fermentation Broths, J. Chromatography 704, 363-367 

  11. Chang T. N., et al. (2002), Effect of rice-glycerol complex medium on the production of Lovastatin by Monascus ruber, Folia Microbiol.(Praha) 47, 677-684 

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