[논문]Sprague-Dawley 쥐의 사염화탄소 유도 간 손상에 대한 표고버섯균사체의 효과

장욱진; 김영숙; 하영래; 박철우; 하영권; 김정옥

doi:10.5352/jls.2010.20.5.782

Sprague-Dawley 쥐의 사염화탄소 유도 간 손상에 대한 표고버섯균사체의 효과
Optimal Level for the Protection of Carbon Tetrachloride-induced Sprague-Dawley Rat Liver Damage by Mycelial Cultures of Lentinus edodes 원문보기

생명과학회지 = Journal of life science, v.20 no.5 = no.121, 2010년, pp.782 - 788

장욱진 (경상대학교 응용생명과학부 (BK21).농업생명과학원) , 김영숙 (경상대학교 응용생명과학부 (BK21).농업생명과학원) , 하영래 (경상대학교 응용생명과학부 (BK21).농업생명과학원) , 박철우 ((주)HK바이오텍) , 하영권 ((주)HK바이오텍) , 김정옥 ((주)HK바이오텍)

초록
AI-Helper

표고버섯균사체 고체배양물 분말과 액체배양물 분말을 2:1 (w/w)로 혼합한 시료 (LED로 명명)가 $CCl_4$로 유발된 숫컷 쥐의 간독성을 보호하는 효과에 대해 연구하였다. Vehicle 처리군(0.2 ml 증류수), Control 처리군(0.2 ml 증류수), LED 처리군(LED 100, 200, 300, 400 mg/kg BW을 0.2 ml 증류수에 각각 혼합), 그리고 Silymarin 처리군(200 mg/kg을 0.2 ml 증류수에 용해)의 각 처리군(군당 여섯 마리)에 매일 2주간 투여한 다음, Vehicle 처리군을 제외한 모든 군에 $CCl_4$ ($CCl_4$:corn oil, 1:1 v/v; 0.5 ml/kg BW)를 복부에 주사하였다. 하루가 지난 후에 생화학적 지표성분을 분석하기 위해 혈액과 간 시료를 채취하였다. 모든 LED 처리에 의해 간 SOD, catalase, 그리고 GSH peroxidase의 활성이 증가하였으며, TBARS, tumor necrosis factor-$\alpha$ (TNF-$\alpha$), interleukin-$1{\beta}$ (IL-$1{\beta}$) 그리고 interleukin-6 (IL-6)가 감소하였다. 그 결과, 혈청중의 GOT, GPT, 그리고 LDH의 활성이 감소하였다. LED의 간 기능 보호효과가 가장 효과적으로 나타난 처리농도는 200 mg/kg BW였다. 이러한 결과로 보아 LED는 $CCl_4$로 유발된 SD 쥐의 간 손상을 보호하며, 이는 LED의 항산화능과 cytokine의 감소에 의한 것이다. 따라서, LED는 사람의 간독성보호를 위해 효과적으로 사용할 수 있을 것으로 생각된다.

Abstract ▼ AI-Helper

The protective effects of a powder mixed with solid-cultured and liquid-cultured Lentinus edodes mycelia (2 : 1, w/w) (designate LED) with different doses of carbon tetrachloride ($CCl_4$) on induced hepatotoxicity in male Sprague-Dawley (SD) rats was investigated. The rats were divided into seven groups (6 rats/group) and the following substances were administered orally to each group: Vehicle (0.2 ml distilled water), Control (0.2 ml distilled water), LED (LED 100, 200, 300 and 400 mg/kg BW in 0.2 ml distilled water), and Silymarin (200 mg/Kg BW in 0.2 ml distilled water). After two weeks of daily administration, all groups except for the Vehiclegroup were subjected to abdominal injection with $CCl_4$ ($CCl_4$ : corn oil, 1 : 1 v/v; 0.5 ml/kg BW). One day later, blood and liver samples were collected to analyze biomarkers. All LED treatments elevated hepatic superoxide dismutase (SOD), catalase and glutathione peroxidase (GSH peroxidase) activities, and reduced thiobarbituric reactive substances (TBARS), tumor necrosis factor-$\alpha$ (TNF-$\alpha$), interleukin-$1{\beta}$ (IL-$1{\beta}$) and interleukin-6 (IL-6), resulting in the reduction of glutamate-oxalate transaminase (GOT), glutamate-pyruvate transaminase (GPT) and lactic acid dehydrogenase (LDH) activities in plasma. These results indicate that LED effectively protected SD rat hepatotoxicity induced by $CCl_4$ through its antioxidative activity and reduction of some cytokines. The highest efficacy was found in LED 200 mg/kg BW, showing potential as a useful material for protection from hepatotoxicity in humans.

주제어

AI 본문요약
AI-Helper

* AI 자동 식별 결과로 적합하지 않은 문장이 있을 수 있으니, 이용에 유의하시기 바랍니다.

문제 정의

LED를 간 독성완화 기능성 소재로 개발하기 위해서는 LED의 간독성완화 최적 함량 결정이 필요하다. 따라서 본 연구에서는 CCl₄로 rat의 간독성을 유발한 SD rat 모델에서 LED의 최적 투여량 결정에 관한 연구를 수행하였다.

가설 설정

2)Given constituent is not added.
4)Treatment amount of silymarin was a 200 mg/kg body weight.

제안 방법

Fig. 1은 LED 100, 200, 300, 400 (mg/kg BW)을 1일 1회 14일 동안 SD rat에 경구투여 한 후 CCl₄ (CCl₄: corn oil, 1:1 v/v; 0.5 ml/kg BW) 1회 복강 투여로 간독성을 유발한 rat의 혈청의 GOT, GPT, LDH의 활성을 나타내고 있다. LED 100 mg/kg BW를 초과하는 농도의 처리구에서 GOT 활성은 Control 처리(644 U/l)에 비해 유의성 있게 감소하였다(p<0.
GOT, GPT 및 lactate dehydrogenase (LDH) 활성(U/l)은 assay kit (Asan Pharmaceutical, Republic of Korea)를 이용하여 분석하였다. Triglyceride (TG), total cholesterol (TC), HDL-cholesterol (HDL-C)은 assay kit (BioAssay Systems, Hayword, CA)를 이용하여 분석하였다.
LED (100, 200, 300, 400 mg/kg BW)를 처리한 SD rat 간 조직의 SOD 및 catalase 활성을 분석하였다(Fig. 3). Vehicle rat의 SOD 및 catalase의 활성은 각각 15.
LED 시료(100, 200, 300, 400 mg/kg BW; β-glucan 함량 14.6%)를 1일 1회 14일 동안 SD rat에 경구투여 한 후 CCl4 (CCl4: corn oil, 1:1 v/v; 0.5 ml/kg BW)를 1회 복강 투여하여 간독성을 유발하고, LED의 처리량 의존 간독성 완화효과를 silymarin (200 mg/kg BW)을 positive control로 사용하여 연구하였다(Table 1).
LED 처리는 CCl4로 유도한 SD rat의 간조직의 TNF-α, IL-1β 및 IL-6 함량을 감소시켰다(Table 3).
LED 처리량에 따른 SD rat 간 조직에서 cytokine TNF-α, IL-1β, IL-6의 함량을 측정하였다(Table 3).
5 ml/kg BW)을 1회 투여하였고, Control rat은 증류수를 1일 1회씩 14일간 경구 투여 한 다음 CCl₄를 1회 처리하였다. Silymarin rat에는 silymarin (200 mg/kg BW)을 1일 1회씩 14일간 경구 투여한 다음 CCl₄를 1회 처리하였다. LED와 CCl₄의 처리는 rat 몸무게나 사료섭취량 및 간 무게에는 영향을 미치지 않았다(Table 2).
GOT, GPT 및 lactate dehydrogenase (LDH) 활성(U/l)은 assay kit (Asan Pharmaceutical, Republic of Korea)를 이용하여 분석하였다. Triglyceride (TG), total cholesterol (TC), HDL-cholesterol (HDL-C)은 assay kit (BioAssay Systems, Hayword, CA)를 이용하여 분석하였다.
5 ml/kg BW)를 1회 복강 투여하여 간독성을 유발하고, LED의 처리량 의존 간독성 완화효과를 silymarin (200 mg/kg BW)을 positive control로 사용하여 연구하였다(Table 1). Vehicle rat은 증류수를 1일 1회씩 14일간 경구 투여한 후 corn oil (0.5 ml/kg BW)을 1회 투여하였고, Control rat은 증류수를 1일 1회씩 14일간 경구 투여 한 다음 CCl₄를 1회 처리하였다. Silymarin rat에는 silymarin (200 mg/kg BW)을 1일 1회씩 14일간 경구 투여한 다음 CCl₄를 1회 처리하였다.
5 ml/kg BW)를 복강 주사하여 간독성을 유발하고, 12시간 절식시킨 후 심장채혈(heparin 함유 채혈 시험관)로 sacrifice하였다. Vehicle 처리군 rat에는 corn oil (0.5 ml/kg BW)을 복강 주사하였다.
상등액에 함유된 tumor necrosis factor-α (TNF-α), interleukin-1β (IL-1β) 및 interleukin-6 (IL-6) 함량을 rat TNF-α, rat IL-1β 및 rat IL-6 (Bender MedSystem, San Diego, CA) assay kit를 이용하여 분석하였다.
수컷 Sprague-Dawley (SD) (Samtako, Osan, Republic of Korea, 7주령, 290-300 g) rat에 AIN-96G semipurified diet (Samtako, Osan, Republic of Korea)를 제공하면서 1주일간 적응시킨 후 Table 1과 같이 Vehicle, Control, LED (100, 200, 300, 400), Silymarin 처리군으로 나누고(6마리/처리군) 1일 1회 2주간 경구 투여하였다. 식이와 물은 ad libitum으로 공급하였고, 사육실의 온도 및 습도는 각각 22±1℃, 50±3%로 유지하였고, Light와 dark cycle을 12시간 간격으로 조절하였다.
식이와 물은 ad libitum으로 공급하였고, 사육실의 온도 및 습도는 각각 22±1℃, 50±3%로 유지하였고, Light와 dark cycle을 12시간 간격으로 조절하였다. 시료 처리 15일째에 Vehicle 처리군을 제외한 모든 처리군의 rat에 CCl₄ (CCl₄: corn oil, 1:1 v/v; 0.5 ml/kg BW)를 복강 주사하여 간독성을 유발하고, 12시간 절식시킨 후 심장채혈(heparin 함유 채혈 시험관)로 sacrifice하였다. Vehicle 처리군 rat에는 corn oil (0.
식이와 물은 ad libitum으로 공급하였고, 사육실의 온도 및 습도는 각각 22±1℃, 50±3%로 유지하였고, Light와 dark cycle을 12시간 간격으로 조절하였다.
액체배지(탈지대두분 2.5 g/l, 황백당 25 g/l, KH₂PO₄ 0.025 g/l, MgSO₄ 0.025 g/l)를 121℃에서 2시간 살균하고 25℃로 식힌 다음 표고버섯균사체종균을 접종하였다. 이를 하 등[9]의 방법에 따라 25℃에서 8일간 배양하고 고압 추출하였다.
물에 침지한 늘보리를 121℃에서 2 시간 살균한 다음 25℃로 식혔다. 이 배지에 표고버섯균사체종균을 접종하였다. 이를 하 등[9]의 방법에 따라 8일간 배양하고, 표고버섯균사체 배양물을 50℃에서 건조시켰다.

대상 데이터

(Boston, MA)에서 구입하였다. Thiobarbituric acid, 1,1,3,3,-tetramethoxypropane (TMP), CCl₄, silymarin 등은 Sigma-Aldrich (St. Louis, MO)로부터 구입하여 사용하였다. 그 외 사용된 시약은 first grade 이상이었다.
늘보리는 진양농업협동조합(Jinju, Republic of Korea), 탈지 대두분은 ㈜개미산업(Eumseong, Republic of Korea)으로부터 구입하였다. 표고버섯균(Lentinus edodes)은 종자관리소(Whaseong, Republic of Korea)로부터 품종생산/판매신고를 필한 ㈜HK바이오텍(Jinju, Republic of Korea)의 균주를 사용하였다.
늘보리는 진양농업협동조합(Jinju, Republic of Korea), 탈지 대두분은 ㈜개미산업(Eumseong, Republic of Korea)으로부터 구입하였다. 표고버섯균(Lentinus edodes)은 종자관리소(Whaseong, Republic of Korea)로부터 품종생산/판매신고를 필한 ㈜HK바이오텍(Jinju, Republic of Korea)의 균주를 사용하였다. RIPA buffer는 Cell Signaling Tech.
표고버섯균사체 배양물 시료의 β-glucan 함량을 높이기 위해 고체배양 표고버섯균사체 분말과 액체배양 표고버섯균사체 분말을 2:1(w/w)로 혼합한 LED를 시료로 사용하였다.

데이터처리

각 군의 평균치의 유의성 검정은 분산분석(ANOVA)을 사용하여 Duncan의 다중검증으로 p<0.05 수준에서 유의성을 검증하였다.

이론/모형

SOD 활성은 Marklund의 방법[19], Catalase 활성은 Abei법[1], 그리고 Glutathione (GSH) peroxidase 활성은 Lawrence 방법[17]에 준하여 측정하였다. Protein의 함량은 Bradford 방법[3]에 준하여 측정하였다.
Rat 간의 thiobarbituric acid reactive substance (TBARS)의 함량은 총 지질을 Folch법[6]으로 추출한 후 TMP를 표준물질로 하여 MDA 함량으로 측정하였다[23]. Ice bath 상에서 fresh 간 조직(1 g)을 RIPA buffer (3 ml)에서 homogenizer (ULTRA TURRAX T-25, IKA-WERKE, Germany)로 마쇄한 후 Micro-17TR centrifuge (Hanil Sci.
상등액에 함유된 tumor necrosis factor-α (TNF-α), interleukin-1β (IL-1β) 및 interleukin-6 (IL-6) 함량을 rat TNF-α, rat IL-1β 및 rat IL-6 (Bender MedSystem, San Diego, CA) assay kit를 이용하여 분석하였다. SOD 활성은 Marklund의 방법[19], Catalase 활성은 Abei법[1], 그리고 Glutathione (GSH) peroxidase 활성은 Lawrence 방법[17]에 준하여 측정하였다. Protein의 함량은 Bradford 방법[3]에 준하여 측정하였다.
시료 LED의 β-glucan 함량은 건강기능식품공전 건강기능식품 시험법 III.3.4.3 베타글루칸 측정 방법[16]에 준하여 측정하였다.

성능/효과

Control rat 간조직의 TNF-α 함량은 149 ng/g으로 119 ng/g인 Vehicle rat 간조직에 비해 유의성(p<0.05) 있게 증가하여 CCl4의 독성이 유발되었다.
2에서는 혈청중의 TC, HDL-C 및 TG의 함량을 나타내고 있다. Control 처리에서의 TC, HDL-C, TG의 함량은 각각 71 mg/dl, 20 mg/dl, 89 mg/dl였고, LED의 처리로 TC와 HDL-C 함량에는 Control 처리와 비교하여 크게 차이가 없었다. 한편, TG의 함량은 LED 200 mg/kg BW 이상의 처리에서 Control의 TG 함량에 비해 유의성 있게 감소하였고, LED 200 mg/kg BW 이상의 처리량 간에는 유의성이 없었다.
Lentinan과 LEM은 모두 표고버섯균사체 β-glucan을 함유하고 있어 면역증진 기능과 간 보호 기능을 갖고 있다[12,25,30]. D-Galactosamine, CCl₄ 등의 화학물질을 투여하여 급성 또는 만성 간 기능장애를 유발한 rat에 LEM을 경구투여한 결과 LEM을 처리하지 않은 rat에 비해서 glutamate-oxalate transaminase (GOT)와 glutamate-pyruvate transaminase (GPT)의 유출이 적고, 간 기능장애가 적었으며, 혈청단백질 함량이 낮았다[21,27].
이와 같은 LED의 SD rat 간보호 효과는 IL-1β와 IL-6에서도 볼 수 있었다. LED 200 mg/kg BW 이상의 처리에서 이들 함량은 Vehicle rat수준은 아니지만 Silymarin 처리 rat의 수준으로 감소되었다. 이들 cytokine에 대한 결과는 LED가 CCl₄ 유발 rat의 간 손상을 완화시킬 수 있고, LED 200 mg/kg BW의 처리량이 가장 효율적임을 의미하였다.
LED 처리에 따른 SOD 활성은 LED 처리량에 따라 Control rat에 비해 유의적으로 상승되었으며(p<0.05), LED 200 mg/kg BW의 처리량을 초과하는 경우는 SOD의 활성이 농도 의존적으로 유의성 있게 증가하지는 않았다.
TNF-α의 함량은 LED 전 처리(200 - 400 mg/kg BW)에서 Control rat에 비해 유의성 있게 감소되어(p<0.05), LED의 TNF-α 감소효과를 알 수 있었다.
Vehicle rat의 SOD 및 catalase의 활성은 각각 15.1 U/mg protein, 8.3 U/mg protein였으나, CCl4를 처리한 Control rat의 SOD 및 catalase의 활성이 각각 8.3 U/mg protein와 4.1 U/mg protein으로 유의성 (p<0.05) 있게 감소하여 CCl4에 의한 간 손상이 유도되었음을 알 수 있었다.
간세포 손상이 일어나면 간장에서의 담즙산 배설에 장애가 일어나서 혈장 cholesterol 농도가 상승하는 것으로 보고되었다[15]. 그러나 본 연구에서 혈장의 TC 및 HDL-C의 함량은 증가하는 경향을 보였지만, 유의성은 없었다(Fig. 2). 이와 같은 경향은 간에서 합성된 cholesterol의 biotransformation이 빠르기 때문으로 생각되고 이러한 효과는 Thomas 등[28]이 blackgram에서 추출한 식이섬유소룰 급여한 흰쥐에서 관찰된 결과와도 유사하였다.
혈청의 GPT와 LDH의 활성도 GOP 활성의 경우와 마찬가지로 LED 처리의 효과를 관찰할 수 있었다. 따라서 GOT, GPT 및 LDH 효소 활성은 LED 200 mg/kg BW의 처리가 가장 효율적으로 영향을 미치는 것으로 밝혀졌고, 이들 효소의 활성은 Vehicle 처리의 GOT (143 IU/l), GPT (40 IU/l) 및 LDH (250 IU/l) 활성과 유의적인 차이가 없었고, Silymarin 200 mg/kg BW의 처리(GOT 280 IU/l, GTP 57 IU/l, LDH 270 IU/l)와도 유의적인 차이가 없었다. Fig.
또한 LED 200 mg/kg BW 처리의 TC, HDL-C 및 TG 함량은 Vehicle 처리(TC 59 mg/dl, HDL-C 23 mg/dl, TG 55 mg/dl)와 Silymarin 처리(TC 65 mg/dl, HDL-C 21 mg/dl, TG 60 mg/dl)의 함량과는 유의성이 없었다. 따라서 이들 혈청의 GOT, GPT, LDH와 TC, HDL-C, TG의 함량으로 볼 때 LED 200 mg/kg BW의 처리에서 가장 효율적으로 CCl₄로 유발된 SD rat의 간독성을 완화시켰다.
한편, TG의 함량은 LED 200 mg/kg BW 이상의 처리에서 Control의 TG 함량에 비해 유의성 있게 감소하였고, LED 200 mg/kg BW 이상의 처리량 간에는 유의성이 없었다. 또한 LED 200 mg/kg BW 처리의 TC, HDL-C 및 TG 함량은 Vehicle 처리(TC 59 mg/dl, HDL-C 23 mg/dl, TG 55 mg/dl)와 Silymarin 처리(TC 65 mg/dl, HDL-C 21 mg/dl, TG 60 mg/dl)의 함량과는 유의성이 없었다. 따라서 이들 혈청의 GOT, GPT, LDH와 TC, HDL-C, TG의 함량으로 볼 때 LED 200 mg/kg BW의 처리에서 가장 효율적으로 CCl₄로 유발된 SD rat의 간독성을 완화시켰다.
05), LED 200 mg/kg BW의 처리량을 초과하는 경우는 SOD의 활성이 농도 의존적으로 유의성 있게 증가하지는 않았다. 또한 LED 200, 300, 400 mg/kg BW의 처리에 따른 SOD의 활성은 Vehicle rat의 수준은 아니지만 Silymarin 처리 rat의 수준으로 상승되어 LED처리에 의해 CCl₄로 유발되는 rat의 간 손상을 완화시킬 수 있음을 알 수 있었다. LED의 처리량에 따른 Catalase의 활성 증가도 SOD 활성 증가와 유사하였다.
1). 또한 LED를 처리한 rat의 간 조직에서 항산화효소인 SOD, catalase, GSH peroxidase의 활성이 증가하였고, MDA의 함량은 감소하였다(Fig. 2). 이는 간조직에서 LED의 항산화 효과가 ^∙CCl₃ free radical로부터 간세포를 보호하여 GOT, GPT 및 LDH의 방출을 억제하였기 때문으로 추정된다.
8 nmol/mg protein)과 유사하였고, 그 이상의 LED 처리량에 의해 농도 의존적으로 유의성 있게 상승되지 않았다. 또한 TBARS의 함량은 GSH peroxidase 활성효과와는 반대로 MDA의 함량은 LED 200 mg/kg BW 이상의 처리구에서 유의적으로 감소되었다. LED 200 mg/kg BW 이상의 처리량 간에는 농도의존적인 유의성은 없었다.
CCl₄는 간의 mixed function (cytochrome P₄₅₀) oxidase system에 의해 free radical인 ^∙CCl₃로 전환되고[2,8,20], 전환된 free radical은 간세포의 막 단백 thiol기와 공유결합하여 막의 지질과산화 반응을 촉진시키고 조직 내 지질과산화를 유도함으로써 지방산 조성을 변화시키고 궁극적으로는 세포독성을 유발시킨다[2,20,23]. 본 연구에서 CCl₄로 간독성을 유발한 SD rat에서 LED는 간 독성을 완화하였는데, 이는 LED의 항산화력과 간 독성과 관련이 있는 cytokine 생성 억제에 기인하였다.
본 연구에서도 CCl4를 처리하여 rat의 간독성을 유도한 다음, LED를 처리한 rat의 혈장 GOT, GPT, LDH 효소 활성을 측정한 결과, Control rat 보다 유의성 있게 낮아졌고(p<0.05), Silymarin 처리 rat의 혈장 GOT, GPT, LDH 효소 활성과 비슷하여 LED는 간독성을 완화하는 효과가 있었다(Fig. 1).
LED 200 mg/kg BW 이상의 처리에서 이들 함량은 Vehicle rat수준은 아니지만 Silymarin 처리 rat의 수준으로 감소되었다. 이들 cytokine에 대한 결과는 LED가 CCl₄ 유발 rat의 간 손상을 완화시킬 수 있고, LED 200 mg/kg BW의 처리량이 가장 효율적임을 의미하였다.
1 nmole/mg protein)과 유사하였다. 이와 같은 결과는 LED 200 mg/kg BW 처리에서 가장 효율적으로 CCl₄의 SD rat 간독성을 완화할 수 있음을 나타낸다.
Control 처리에서의 TC, HDL-C, TG의 함량은 각각 71 mg/dl, 20 mg/dl, 89 mg/dl였고, LED의 처리로 TC와 HDL-C 함량에는 Control 처리와 비교하여 크게 차이가 없었다. 한편, TG의 함량은 LED 200 mg/kg BW 이상의 처리에서 Control의 TG 함량에 비해 유의성 있게 감소하였고, LED 200 mg/kg BW 이상의 처리량 간에는 유의성이 없었다. 또한 LED 200 mg/kg BW 처리의 TC, HDL-C 및 TG 함량은 Vehicle 처리(TC 59 mg/dl, HDL-C 23 mg/dl, TG 55 mg/dl)와 Silymarin 처리(TC 65 mg/dl, HDL-C 21 mg/dl, TG 60 mg/dl)의 함량과는 유의성이 없었다.

질의응답

핵심어	질문	논문에서 추출한 답변
	표고버섯추출물은 신체의 어느부위를 보호하는가?	유해물질로부터 간 손상을 방지하고 손상된 간을 치유할 수 있는 천연물이나 천연소재 개발을 위한 다양한 연구가 수행되고 있다. 천연소재 중에는 표고버섯추출물을 비롯한 칡 추출물, 양파 추출물이 간 기능을 보호하는 것으로 보고되었다[10,24]. 표고버섯추출물은 carbon tetrachloride (CCl4)로 간독성을 유발 한 rat 간 조직의 지질산화를 억제하였다[21].
	표고버섯 균사체의 간 기능 보호 효과는 어떤 성분에서 기인하는가?	표고버섯균사체 및 이의 배양물이 간을 보호하는 기능이 있다[12,25,30]. 표고버섯 균사체의 간 기능 보호 효과는 주로 표고버섯균사체에 함유된 polysaccharide 인 β-glucan에 기인한다[11,21,22]. 이들 polysaccharide 중 lentinan은 β-(1→3)-glucose를 기본골격으로 하고 5개의 β-(1→3)-glucose마다 2개의 β-(1→6)-glucose 가지를 갖는 구조를 갖고 있고[12,31], 표고버섯 균사체 배양물의 열수추출물인 Lentinus edodes mycelia (LEM)는 lentinan을 비롯한 glycoprotein 등을 포함하고 있다[13].
	CCl4로 rat의 간독성을 유발한 SD rat 모델에서 LED의 최적 투여량 결정에 관한 연구를 수행한 이유는?	LED를 간 독성완화 기능성 소재로 개발하기 위해서는 LED의 간독성완화 최적 함량 결정이 필요하다. 따라서 본 연구에서는 CCl4로 rat의 간독성을 유발한 SD rat 모델에서 LED의 최적 투여량 결정에 관한 연구를 수행하였다.

참고문헌 (31)

Abei, H. E. 1984. Methods in enzymatic analysis. pp. 273-285. 3rd eds., Academic press, New York.
Alqasoumi, S. 2010. Carbon tetrachloride-induced hepatotoxicity: Protective effect of 'Rocket' Eruca sativa L. in rats. Am. J. Chin. Med. 38, 75-88.

상세보기
Bio-Rad Laboratories, Inc. 2008. Quick Start Bradford Protein Assay, Hercules, CA.
Chance, B., H. Sies, and A. Boveris. 1979. Hydroperoxide metabolism in mammalian organs. Physiol. Rev. 59, 527-605.

상세보기
Rikans, L. E., L. A. DeCicco, K. R. Hornbrook, and T. Yamano. 1999. Effect of age and carbon tetrachloride on cytokine concentrations in rat liver. Mech. Ageing Devel. 108, 173-182.

상세보기
Hazama, S., S. Watanabe, M. Ohashi, M. Yagi, M. Suzuki, K. Matsuda, T. Yamamoto, Y. Suga, T. Suga, S. Nakazawa, and M. Oka. 2009. Efficacy of orally administered superfine dispersed lentinan ( $\beta$ -1,3-glucan) for the treatment of advanced colorectal cancer. Anticancer Res. 29, 2611-2617.

상세보기
Folch, J., M. Lees, and G. H. Sloane Stanley. 1957. A simple method for the isolation and purification of total lipids from animal tissues. J. Biol. Chem. 226, 497-509.
Glende, E. A., A. M. Hruszkewycz, and R. O. Recknagel. 1976. Critical role of lipid peroxidation in carbon tetrachloride-induced loss aminopyrine demethylase, cytochrome P-450 and glucose 6-phosphatase. Biochem. Pharmacol. 25, 2163-2170.

상세보기
Ha, Y. L., Y. S. Kim, C. R. Ahn, J. M. Kweon, C. W. Park, Y. K. Ha, and J. O. Kim. 2010. Mycelial culture of Lentinus edodes alleviates rat liver toxicity induced by carbon tetrachloride and ethanol. J. Life Sci. 20, 133-141.

원문보기 상세보기
Han, S. H., J. B. Kim, S. G. Min, and C. H. Lee. 1995. The effects of Puerariae Radix catechins administration on liver function in carbon tetrachloride-treated rats. J. Korean Soc. Food Nutr. 24, 713-719.
Hayes. 1982. Principles and methods of toxicology. pp. 407. Raven Press. New York.
Hobbs, C. 2000. Medicinal value of Lentinus edodes (Berk) Sing (Agaricomycetideae). A literature review. Int. J. Med. Mushrooms 2, 287-302.
Iizuka, H. 1997. Production of Lentinus edodes mycelia extract (LEM). Food Rev. Int. 13 (Issue 3), 343-348.

상세보기
Kim, K. S., S. Y. Chung, and S. W. Kim. 1993. The effect of selenium and vitamin E on activity of enzyme related to the lipid peroxidation in rat with alcohol administration. J. Korean Soc. Food Nutr. 22, 116-126.
Kim, S. K. and S. Y. Chung. 1992. Effects of feeding the mixed oils of butter, sardine and safflower on the lipid components in serum and activities of hepatic functional enzymes in rats. J. Korean. Soc. Food Nutr. 21, 608-616.
Korea Food & Drug Administration. 2008. Health Functional Food Code, pp. 130-131. Standards of Health Functional Food III. 3.4.3, Republic of Korea.
Lawrence, R. A. and R. F. Burk. 1976. Glutathione peroxidase activity in selenium-deficient rat liver. Biochem. Biophys. Res. Commun. 71, 952？958.

상세보기
Lee, H. S., K. H. Jung, S. W. Hong, I. S. Park, C. Lee, H. K. Han, D. H. Lee, and S. S. Hong. 2008. Morin protects acute liver damage by carbon tetrachloride (CCl4) in rat. Arch. Pharm. Res. 31, 1160-1165.

원문보기 상세보기
Marklund, S. and G. Marklund. 1974. Involvement of the superoxide anion radical in the autooxidation of pyrogallol and a convenient assay for superoxide dismutase. Eur. J. Biochem. 47, 469-474.

상세보기
Maynard, E. H., S. Brittern, and R. G. James. 1972. Effect of 3-methylchloanthrene induction on the CCl4-induced changes in rat hepatic microsomal enzyme system. Biochem. pharmacol. 21, 745-747.

상세보기
Mizuno, T. 1995. Mushrooms: the versatile fungus-food and medicinal properties. Food Rev. Int. 11 (Issue 1), 1-235.

상세보기
Morinaga, H., K. Tazawa, H. Tagoh, A. Muraguchi, and M. Fujimaki. 1994. An in vivo study of hepatic and splenic interleukin-1 beta mRNA expression following oral PSK or LEM administration. Jpn. J. Cancer Res. 85, 1298-1303.

상세보기
Noll, T and H. Groot. 1984. The critical steady-state hypoxic conditions in carbon thtrachloride-induced lipid peroxidation in rat live microsome. Biochem. Biophys. Acta. 795, 356-362.

상세보기
Park. P. S., B. L. Lee, and M. Y. Lee. 1991. Effect of onion diet on carbon tetrachloride toxicity of rats. J. Korean Soc. Food Nutr. 20. 121-125.
Ross, G. D., V. Vetvicka, J. Yan, Y. Xia, and J. Vetickova. 1999. Therapeutic intervention with complement and beta- glucan in cancer. Immunophamacology 42, 61-74.

상세보기
Surendra, V., T. Prakash, U. R. Sharma, D. Goli, S. D. Fadadu, D. Kotresha. 2008. Hepatoprotective activity of aerial parts of Cynodon dactylon against CCl4-induced in rats. Phcog. Mag. 4 (16 SUPPL.), S195-S201.
Terada, H., T. Ohara, Y. Yamaguchi, T. Ueda, and K. Asano. 2001. Protective effects of the Lentinus edodes mycelia on carbon tetrachloride induced liver injury. J. New Rem. Clin. 50, 655-664.
Thomas, M., S. Leelamma, and P. A. Kurup. 1983. Effect of blackgram fiber (Phaseolus mungo) on cholesterol genesis and cholesterol degeneration in rats. J. Nutr. 113, 1104-1108.
Tsubura, E., M. Nishimoto, and K. Nishii. 1999. Effects of LEM (Lentinus edodes mycelia) for chemotherapy. Prog. Med. 19, 129-134.
Yamamoto, Y., H. Shirono, K. Kono, and Y. Ohashi. 1997. Immunopotentiating activity of the water-soluble lignin rich fraction prepared from LEM: The extract of the solid culture medium of Lentinus edodes mycelia. Biosci. Biotech. Biochem. 61, 1909-1912.

상세보기
Zhoua, L. D., Q. H. Zhang, Y. Zhangc, J. Liua, and Y. M. Caoa. 2009. The shiitake mushroom-derived immunostimulant lentinan protects against murine malaria blood-stage infection by evoking adaptive immune-responses. Int. Immunopharmacol. 9, 455-462.

상세보기

저자의 다른 논문 :

표제어: PCR

동의어: Packet Collision Rate

용어 설명 출처 목록 (6)

용어 설명: PCR은 세균 특이성이 있는 primer를 이용하여 적은 수의 세균이 있을지라도 쉽게 검출할 수 있는 유용한 방법이며, 이를 이용하여 구강 내 치면세균막이나 타액에서 직접 세균을 검출할 수 있게 되었다[8].

내보내기 구분	파일저장 인쇄 메일전송
구성항목	기본정보 상세정보 관리번호, 논문명, 저널/프로시딩명, 저자 , 발행년, 권, 호, 시작페이지, 끝페이지, 발행기관 관리번호, 논문명, 대등논문명, 저자 , 저널/프로시딩명, 발행기관, 발행년, 발행언어, 권, 호, 시작페이지, 끝페이지, ISBN, ISSN, 주제분야, 키워드, 초록(한글), 초록(영문), 저자(소속기관)
저장형식	Text(ASCII format) Excel format RefWorks Direct Export RIS format (for Reference Manager, ProCite, EndNote), Scholar's Aids, Mendeley
메일정보	받는사람 (필수) @ 보내는사람 (선택) @ 제목 내용 KISTI 검색결과 이메일 서비스
안내	총 건의 자료가 검색되었습니다. 다운받으실 자료의 인덱스를 입력하세요. (1-10,000) 검색결과의 순서대로 최대 10,000건 까지 다운로드가 가능합니다. 데이타가 많을 경우 속도가 느려질 수 있습니다.(최대 2~3분 소요) 다운로드 파일은 UTF-8 형태로 저장됩니다. 파일의 내용이 제대로 보이지 않을실 때는 웹브라우저 상단의 보기 -> 인코딩 -> 자동선택 여부를 확인하십시오. ~ Text(ASCII format) Excel format

연합인증