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다양한 유기물을 분해하는 Bacillus subtilis CK-2의 분리
Isolation of Bacillus subtilis CK-2 Hydrolysing Various Organic Materials 원문보기

생명과학회지 = Journal of life science, v.21 no.12 = no.140, 2011년, pp.1716 - 1720  

김철호 (경남과학기술대학교 제약공학과) ,  이상협 (경남과학기술대학교 제약공학과)

초록
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섬유소를 비롯한 단백질, 지질, 녹말을 분해할 수 있는 세균을 된장으로부터 분리하여 동정한 결과 Bacillus subtilis로 분류되었으며, Bacillus subtilis CK-2로 명명하였다. 분리균주는 $40\sim45^{\circ}C$의 비교적 넓은 온도 범위와 pH 6~9의 넓은 pH 범위, 그리고 NaCl 0~3% 범위에서 잘 자랐으며, 높은 자가분해효소 활성을 갖는 것을 알 수 있었다. B. subtilis CK-2가 분비하는 가수분해효소들은 대부분 세균의 생장과 거의 비례적으로 세포외 활성을 나타내는 1차 대사산물로 확인되었다. 이상의 결과로부터 B. subtilis CK-2는 농수임산물 폐기물이나 음식물 폐기물의 퇴비화, 사료 생산 등에 유용하게 이용될 수 있을 것으로 생각한다.

Abstract AI-Helper 아이콘AI-Helper

A bacterium hydrolysing various organic materials including cellulose, protein, starch and lipid was isolated. The isolate was identified as Bacillus subtilis, and named Bacillus subtilis CK-2 in this paper. This bacterium showed optimal growth at $40\sim45^{\circ}C$, pH 6~9, and 0~3% of ...

주제어

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문제 정의

  • 지방분해효소는 triacylglycerol을 가수분해하는 효소로서 지방 가공 공정이나 세제, 식품 가공 공정, 화공 및 제약 합성, 제지 공업, 화장품 제조 공정 등 다양한 분야에 이용되고 있으며[19], 지방성 폐기물과 polyurethane의 분해 촉진제로 이용되기도 한다[21]. 본 연구에서는 음식물이나 축산 폐기물 처리, 사료 생산 등의 과정에 활용할 수 있는 미생물 자원을 확보하기 위하여 섬유소, 단백질, 지질, 녹말 등의 다양한 유기화합물을 분해할 수 있는 세균을 분리하여 그 특징을 확인하고자 하였다.
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질의응답

핵심어 질문 논문에서 추출한 답변
인간은 수백년 동안 섬유소를 어떻게 이용하였는가? 섬유소(cellulose)는 지구상에서 가장 풍부한 유기물로서 인간은 수백년 동안 이 물질을 에너지원이나 사료 등으로 이용하였다. 섬유소를 이용하기 위해서는 먼저 섬유소분해 효소에 의한 가수분해가 선행되어야 하는데, 이는 균류나 세균 등 미생물에 의해 생성된다[18].
섬유소분해효소는 어느 분야에서 연구가 이루어져 왔는가? 섬유소분해효소는 광범위한 분야에서 많은 관심을 끌어왔다. 무엇보다 큰 관심은 산업적인 측면에서 가졌는데, 섬유광택제나 세제 등의 개발에 많이 이용되었고[4], 포도당이나 알코올, 단백질 등의 생산에 대한 연구도 많이 이루어졌다[6]. 최근에는 산업 부산물 또는 음식물 폐기물의 재활용 차원에서 버섯부산물이나 음식물 쓰레기의 퇴비화 또는 사료화를 위한 섬유소 분해 미생물에 대한 연구가 많이 이루어지고 있다[1,16].
섬유소를 완전히 분해하기 위해서는 무엇이 필요한가? 섬유소를 이용하기 위해서는 먼저 섬유소분해 효소에 의한 가수분해가 선행되어야 하는데, 이는 균류나 세균 등 미생물에 의해 생성된다[18]. 섬유소분해효소는 섬유소가 존재할 때만 합성되는 유도성 효소로서[12], 섬유소를 완전히 분해하기 위해서는 endoglucanase와 exocellobiohydrolase, 그리고 β-glucosidase 등 서로 다른 효소를 필요로 한다[23]. 섬유소분해효소는 광범위한 분야에서 많은 관심을 끌어왔다.
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참고문헌 (23)

  1. Ariffin, H., N. Abdullah, M. S. U. Kalsom, Y. Shirai, and M. A. Hassan. 2006. Production and characterisation of cellulase by Bacillus pumilus EB3. International J. Engineering and Technology 3, 47-53. 

  2. Bailey, M. J., P. Biely, and K. Poutanen. 1992. Inter-laboratory testing of methods for assay of xylanase activity. J. Biotechnol. 23, 257-270. 

  3. Bhat, M. K. and S. Bhat, 1997. Celllose degrading enzymes and their potential industrial applications. Biotechnology Advences 15, 583-620. 

  4. Coral, G., B. Arikan, M. N. Unaldi, and H. Guvenmez. 2002. Some properties of crude carboxymethyl cellulase of Aspergillus niger Z10 wild-type strain. Turk J. Biol. 26, 209-213. 

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  20. Sigh, J., N. Batra, C. R. Sobti. 2001. Serine alkaline protease from a newly isolated Bacillus sp. SSR1. Proc. Biochem. 36, 781-785. 

  21. Takamoto, T., H. Shirasaka, H. Uyama, S. Kobayashi. 2001. Lipase-catalyzed hydrolytic degradation of polyurethane in organic solvent. Chem. Lett. 6, 492-493. 

  22. Wood, T. M. and K. M. Bhat. 1988. Methods for measuring cellulose activities. Methods Enzymol. 160, 87-112. 

  23. Yi, J. C., A. B. Sandra, and T. C. Shu, 1999. Production and distribution of endoglucanase, cellobiohydrolase, and $\beta$ -glucosidase components of the cellulolytic system of Volvariella volvacea, the edible straw mushroom. Appl. Environ. Microbiol. 65, 553-559. 

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