[논문]식육감별을 위한 미토콘드리아 12S rRNA와 16S rRNA 유전자의 종 특이적 multiplex PCR 기법 개발

고바라다; 김지연; 나호명; 박성도; 김용환

doi:10.7853/kjvs.2011.34.4.417

식육감별을 위한 미토콘드리아 12S rRNA와 16S rRNA 유전자의 종 특이적 multiplex PCR 기법 개발
Development of species-specific multiplex PCR assays of mitochondrial 12S rRNA and 16S rRNA for the identification of animal species 원문보기

韓國家畜衛生學會誌 = Korean journal of veterinary service, v.34 no.4, 2011년, pp.417 - 428

고바라다 (광주광역시보건환경연구원 동물위생연구부) , 김지연 (광주광역시보건환경연구원 동물위생연구부) , 나호명 (광주광역시보건환경연구원 동물위생연구부) , 박성도 (광주광역시보건환경연구원 동물위생연구부) , 김용환 (광주광역시보건환경연구원 동물위생연구부)

Abstract ▼ AI-Helper

Species-specific PCR assay was developed for detection of cattle, sheep, goat, horse, dog, pig, chicken, duck, goose, and turkey using mitochondrial 12S rRNA and 16S rRNA as target genes. Also, an internal positive control was used to detect possible false negatives by using 18S rRNA gene. We designed species-specific primers with amplicon length of 190, 219, 350, 467, 241, 119, 171, 229, 111 and 268 bp for cattle, sheep, goat, horse, dog, pig, chicken, duck, goose, and turkey respectively. The specificity of the primers was tested against the other 10 non-target animal species and a cross-reaction was not observed. We developed two multiplex PCR assays for the simultaneous identification of Korea's major livestock species (cattle, pig, chicken and duck) and poultry species (chicken, duck, goose and turkey) from analogous samples, retaining the same specificity. The limit of detection of the multiplex PCR assay (cattle, pig, chicken and duck) ranged between 1 pg and 0.1 pg of template DNA extracts from raw meat. Applying multiplex PCR assays to DNA extracts from experimental pork/beef and pork/chicken tested raw and heat-treated ($120^{\circ}C$ for 30 min) mixtures respectively, detection limit was 0.1% level beef in pork, pork in beef and chicken in pork and 1.0% level pork in chicken. In conclusion, this assay using gel-based capillary electrophoresis would be very useful in highly sensitive and rapid identification of animal species or ingredients in minced meat and other meat products.

주제어

AI 본문요약
AI-Helper

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문제 정의

축산식품의 표시사항을 허위로 기재하거나 비의도적으로 잘못 표시하거나, 저가의 육류를 부정하게 혼합된 제품 등에 대한 검증과 부정유통을 예방하고 검사할 수 있는 신뢰성 있는 정확한 유전자 검사방법이 현행 축산물의 가공기준 및 성분규격에 시급히 도입되어야 한다. 따라서 이번 연구에서는 소, 면양, 산양, 말, 개, 돼지, 닭, 오리, 거위 및 칠면조의 종에 대한 mt DNA 유전자 중 12S rRNA와 16S rRNA 부위를 이용한 PCR 방법을 개발함과 동시에 국내 식생활에 중요한 부분을 차지하는 소, 돼지, 닭 그리고 오리를 동시에 감별할 수 multiplex PCR 방법을 개발하였다.

제안 방법

1. 종 특이적인 primer를 이용하여 소 190 bp, 면양 219 bp, 산양 350 bp, 말 467 bp, 개 241 bp, 돼지 119 bp, 닭 171 bp, 오리 229 bp, 거위 111 bp 그리고 칠면조 268 bp의 각각 다른 크기의 PCR 산물이 증폭되도록 singleplex PCR 방법을 개발하였다.
BSGA multiplex PCR에 대한 검출한계 검사를 위해서 4개 축종의 DNA를 100 ng/μl으로 정량한 후 혼합물을 10배 계단희석하여 실험하였다.
PCR 반응조건은 95℃에서 5분간 가열하여 변성을 유도하고, 95℃ 30초, 57℃ 35초, 및 72℃ 35초씩 35회 반복하였으며, 최종적으로 72℃에서 5분 반응시켰다. PCR 산물은 QIAxcel system (Qiagen, USA) 장비로 QIAxcel DNA High Resolution kit을 사용하여 전기 영동 하였다.
PCR 반응조건은 95℃에서 5분간 가열하여 변성을 유도하고, 95℃ 30초, 57℃ 35초, 및 72℃ 35초씩 35회 반복하였으며, 최종적으로 72℃에서 5분 반응시켰다. PCR 산물은 QIAxcel system (Qiagen, USA) 장비로 QIAxcel DNA High Resolution kit을 사용하여 전기 영동 하였다. 획득된 자료는 전기영동 제조사에서 공급한 Bio Calculator 소프트웨어를 사용하여 분석하였다.
Singleplex PCR 반응액은 Table 1에서 같은 동물종 별 특이 primer를 0.5 μM과 IPC primer를 0.25 μM 되도록 사용하였고, 추출한 DNA (10∼100 ng/μl) 2 μl, 비특이 반응을 억제하기 위해서 DMSO를 0.4 μl를 첨가하여 최종부피는 멸균된 3차 증류수로 20 μl로 조정하여 PCR을 하였다.
이번 연구에서 mt DNA 유전자 중 12S rRNA와 16S rRNA 유전자의 동물종 간 염기서열 변이를 이용하여 설계된 종 특이적인 primer로 포유류 6종(소, 면양, 산양, 말, 개 그리고 돼지)과 가금류 4종(닭, 오리, 거위 그리고 칠면조)을 검출하고 감별할 수 있는 PCR 기법을 개발하였다. 그리고 국내 식생활에 중요한 부분을 차지하는 소, 돼지, 닭 그리고 오리를 동시에 감별할 수 multiplex PCR 기법과 가금류 4종을 동시에 검출할 수 있는 multiplex PCR 기법을 개발하였다.
내재성 유전자용(internal positive control, IPC) primer 설계는 11개 동물종에 공통으로 대응하도록 18S rRNA의 최대 공통부위를 검색하여 primer를 설계하였다(Fig. 1).
PCR premix 제품은 Maxime PCR PreMix Kit (i-StarTaq, iNtRON biotechnology, Korea)을 사용하였다. 동물종별 primer에 대한 특이성 검사를 위해서 소, 면양, 산양, 말, 개, 고양이, 돼지, 닭, 오리, 거위 그리고 칠면조 축종에 대해서 교차반응 여부를 검사하였다.
동물종별 특이 primer는 clustal X (Ver. 1.8)으로 GenBank database에서 제공된 염기서열을 정렬하여 mt DNA (12S rRNA, 16S rRNA)의 각각 다른 부위를 표적으로 하여 Table 1과 같이 설계한 후 합성하였다(Bioneer, Korea). 동물종별 특이적인 primer 디자인은 PCR annealing 온도 차이를 최소화하면서 각기 다른 크기로 증폭되도록 설계하였다.
8)으로 GenBank database에서 제공된 염기서열을 정렬하여 mt DNA (12S rRNA, 16S rRNA)의 각각 다른 부위를 표적으로 하여 Table 1과 같이 설계한 후 합성하였다(Bioneer, Korea). 동물종별 특이적인 primer 디자인은 PCR annealing 온도 차이를 최소화하면서 각기 다른 크기로 증폭되도록 설계하였다.
동물종별 학명의 머리글자에 기초하여 소, 돼지, 닭 그리고 오리 동시 감별을 위한 PCR은 BSGA multiplex PCR로 표기하고 닭, 오리, 거위 그리고 칠면조 동시 감별을 위한 PCR은 GAAM multiplex PCR로 표기하였다.
소, 돼지, 닭 및 오리 동시 검출과 조류 4종 동시 검출을 위한 multiplex PCR은 singleplex PCR용으로 설계한 각각의 primer를 사용하였다. 동시감별을 위한 온도조건 설정을 위해 54℃부터 65℃까지 12개의 온도 구역을 설정하여 PCR을 하였다.
분쇄 혼합육에서 소, 돼지 그리고 닭고기의 함량(0.1∼50.0%)에 따른 검출한계 실험을 위해, 소고기와 돼지고기 분쇄 혼합육 그리고 닭고기와 돼지고기 분쇄 혼합육 각각의 원료육과 가열 처리육 100 g으로부터 DNA를 추출하여 100 ng/μl 농도로 정량하여 BSGA multiplex PCR 실험에 사용하였다.
소 등 10개 동물종별 primer의 특이성을 확인하기 위하여 동물종별 시료에서 DNA를 추출하여 singleplex PCR을 하였다. 동물종별 primer를 이용하여 소 190 bp, 면양 219 bp, 산양 350 bp, 말 467 bp, 개 241 bp, 돼지 119 bp, 닭 171 bp, 오리 229 bp, 거위 111 bp 그리고 칠면조 268 bp의 PCR 산물이 증폭되었다(Fig.
소 등 10개 동물종을 감별하기 위해 mt DNA 유전자에 존재하는 핵산 염기서열의 변이에 근거한 종 특이적인 PCR 방법과 여러 가지 동물종을 감별할 수 있는 multiplex PCR 방법을 개발하였고 소와 돼지 또는 닭고기를 혼합하여 가열 처리된 분쇄육에 대한 multiplex PCR 방법이 성공적으로 적용되었다.
소 등 11개 동물종에 대한 각 시료에서 DNA 추출은 Sambrook와 Russell (2001)의 방법을 일부 수정하여 다음과 같이 실시하였다. 시료 0.
소, 돼지, 닭 그리고 오리 동시감별에 대한 DNA 민감도 검사를 위해서 4개 축종의 DNA를 100 ng/μl으로 정량한 후 10배 계단 희석하여 4개 축종 DNA 혼합물 4 μl를 BSGA multiplex PCR에 이용하였다.
소, 돼지, 닭 및 오리 동시 검출과 조류 4종 동시 검출을 위한 multiplex PCR은 singleplex PCR용으로 설계한 각각의 primer를 사용하였다. 동시감별을 위한 온도조건 설정을 위해 54℃부터 65℃까지 12개의 온도 구역을 설정하여 PCR을 하였다.
이번 연구에서 mt DNA 유전자 중 12S rRNA와 16S rRNA 유전자의 동물종 간 염기서열 변이를 이용하여 설계된 종 특이적인 primer로 포유류 6종(소, 면양, 산양, 말, 개 그리고 돼지)과 가금류 4종(닭, 오리, 거위 그리고 칠면조)을 검출하고 감별할 수 있는 PCR 기법을 개발하였다. 그리고 국내 식생활에 중요한 부분을 차지하는 소, 돼지, 닭 그리고 오리를 동시에 감별할 수 multiplex PCR 기법과 가금류 4종을 동시에 검출할 수 있는 multiplex PCR 기법을 개발하였다.
그리고 오리, 칠면조 그리고 거위로부터 닭을 감별하기 위해 Table 1에 제시한 Chicken12S-171F primer의 5'말단에 CAACAG를 추가하고 3'말단에 네 개의 연속된 cytosine 염기 중 한 개를 adenine으로 교체(CCCC→CCaC)하여 설계함으로써 증폭산물의 크기가 171 bp에서 175 bp로 증가하고 Chicken12S-R primer와 상보적인 염기서열을 변화시킴으로써 비특이 반응도 억제할 수 있었다(자료 미제시). 이번 연구에서 제시된 PCR 증폭산물의 크기는 multiplex PCR을 실시한 후 증폭산물을 확인하기 위해 아가로스겔를 사용하기에는 변별력이 떨어져 자동모세관 전기영동 장치(Qiagen, USA)를 이용하였다. 이번 실험에서 multiplex PCR 방법으로 소와 닭의 검출한계는 Martín 등(2007a)이 보고한 닭고기 검출한계 0.
이들 방법은 PCR 산물의 크기의 차이가 몇 bp에 불과하고 PCR annealing 온도가 대부분이 달라 multiplex PCR 방법을 수행하기에는 곤란하였다. 이번 연구에서는 multiplex 방법으로 닭, 칠면조, 오리, 거위 그리고 칠면조를 동시 감별하기 위해서 PCR 증폭산물의 크기의 적절한 배분과 일정한 annealing 온도가 되도록 primer를 설계하여 효율적으로 축종을 감별하였다(Table 1).
소고기와 돼지고기 혼합육 그리고 닭고기와 돼지고기 혼합육에 대한 동시감별과 검출한계 실험을 위해 시료를 가위로 세절하여 준비하였다. 혼합 함량에 따른 검출한계를 검사하기 위하여 소고기와 닭고기 시료들을 각각 돼지고기에 0.1, 1.0, 2.0, 10.0 그리고 50.0% 함유되도록 각각 100 g를 준비하였다. 혼합육에 대한 원료육과 열처리에 따른 검출실험을 위해서 각각의 시료를 120℃에서 30분 동안 가열한 열처리육에서 상기와 같은 방법으로 genomic DNA를 추출하였다.
0% 함유되도록 각각 100 g를 준비하였다. 혼합육에 대한 원료육과 열처리에 따른 검출실험을 위해서 각각의 시료를 120℃에서 30분 동안 가열한 열처리육에서 상기와 같은 방법으로 genomic DNA를 추출하였다.

대상 데이터

4 μl를 첨가하여 최종부피는 멸균된 3차 증류수로 20 μl로 조정하여 PCR을 하였다. PCR premix 제품은 Maxime PCR PreMix Kit (i-StarTaq, iNtRON biotechnology, Korea)을 사용하였다. 동물종별 primer에 대한 특이성 검사를 위해서 소, 면양, 산양, 말, 개, 고양이, 돼지, 닭, 오리, 거위 그리고 칠면조 축종에 대해서 교차반응 여부를 검사하였다.
동물원에서 사육 중인 말, 면양, 산양, 거위 및 칠면조 혈액 각 1점을 채취하였다. 개와 고양이의 혈액은 동물보호소에 보호 중인 유기동물의 진료시에 각 1건을 채취하였다. 채취된 혈액은 항응고제 처리를 하지 않았다.
축종감별을 위한 시료는 소, 돼지, 닭, 오리고기 각 1건을 도축장에서 채취하였다. 동물원에서 사육 중인 말, 면양, 산양, 거위 및 칠면조 혈액 각 1점을 채취하였다. 개와 고양이의 혈액은 동물보호소에 보호 중인 유기동물의 진료시에 각 1건을 채취하였다.
소고기와 돼지고기 혼합육 그리고 닭고기와 돼지고기 혼합육에 대한 동시감별과 검출한계 실험을 위해 시료를 가위로 세절하여 준비하였다. 혼합 함량에 따른 검출한계를 검사하기 위하여 소고기와 닭고기 시료들을 각각 돼지고기에 0.
추출된 DNA는 NanoDropⓇ ND-1000 UV-Vis Spectrophotometer (NanoDrop Technologies, USA)를 이용하여 260:280 nm에서 정량한 후 10∼100 ng/μl 농도로 정량하여 실험에 사용하였다.
축종감별을 위한 시료는 소, 돼지, 닭, 오리고기 각 1건을 도축장에서 채취하였다. 동물원에서 사육 중인 말, 면양, 산양, 거위 및 칠면조 혈액 각 1점을 채취하였다.
침전된 DNA가 포함된 EP tube에 70% ethanol 700 μl로 2회 세척 후 건조하여 멸균된 3차 증류수를 100∼200 μl 가하여 실험에 사용하였다.
PCR 산물은 QIAxcel system (Qiagen, USA) 장비로 QIAxcel DNA High Resolution kit을 사용하여 전기 영동 하였다. 획득된 자료는 전기영동 제조사에서 공급한 Bio Calculator 소프트웨어를 사용하여 분석하였다.

이론/모형

이번 연구에서 multiplex PCR 방법으로 돼지고기의 DNA를 1 pg/μl까지 검출하였는데 Tanabe 등(2007)이 보고한 cyt b 유전자를 singleplex PCR 방법으로 검출한 수준과 같았다.

성능/효과

2. 소, 돼지, 닭 그리고 오리를 동시 감별할 수 있는 BSGA multiplex PCR 방법과 닭, 오리, 거위 그리고 칠면조를 감별할 수 있는 GAAM multiplex PCR 방법을 개발하였다.
3. BSGA multiplex PCR 방법을 통한 축종별 최소 검출가능 범위는 소와 닭은 100 fg/μl까지, 돼지와 오리는 1 pg/μl까지 확인이 가능하였으며, IPC는 1 fg/μl까지 검출할 수 있었다.
4. BSGA multiplex PCR 방법으로 원료육과 가열 처리된 분쇄 혼합육에서 소와 닭고기의 검출한계는 0.1%이었고, 돼지고기의 검출한계는 0.1∼1.0% 범위이었다.
BSGA multiplex PCR과 GAAM multiplex PCR 검사 결과는 Fig. 4에서 보이는 것과 같이 각 축종에서 원하는 크기의 PCR 산물이 확인되었으며, 4개 축종의 DNA 혼합물에서도 역시 각 축종별 PCR 산물이 교차 반응이 없이 증폭되었다. GAAM multiplex PCR 검사에는 IPC primer를 포함하지 않았다.
국내에서 많이 소비되는 대표적 축종으로 소, 돼지, 닭 그리고 오리를 동시에 감별하기 위한 BSGA multiplex PCR의 최적 조건을 설정하기 위해 54℃에서 65℃까지 12개의 온도를 설정하고 PCR을 수행한 결과 4개 축종 모두에서 뚜렷한 유전자 증폭을 보인 온도는 54.0∼60.0℃ 범위였다.
그리고 오리, 칠면조 그리고 거위로부터 닭을 감별하기 위해 Table 1에 제시한 Chicken12S-171F primer의 5'말단에 CAACAG를 추가하고 3'말단에 네 개의 연속된 cytosine 염기 중 한 개를 adenine으로 교체(CCCC→CCaC)하여 설계함으로써 증폭산물의 크기가 171 bp에서 175 bp로 증가하고 Chicken12S-R primer와 상보적인 염기서열을 변화시킴으로써 비특이 반응도 억제할 수 있었다(자료 미제시).
소 등 10개 동물종별 primer의 특이성을 확인하기 위하여 동물종별 시료에서 DNA를 추출하여 singleplex PCR을 하였다. 동물종별 primer를 이용하여 소 190 bp, 면양 219 bp, 산양 350 bp, 말 467 bp, 개 241 bp, 돼지 119 bp, 닭 171 bp, 오리 229 bp, 거위 111 bp 그리고 칠면조 268 bp의 PCR 산물이 증폭되었다(Fig. 2). 동물종별 특이 primer에 대한 교차반응 여부를 확인하기 위해서 나머지 10개 축종에서도 singleplex PCR을 실시한 결과 칠면조를 제외한 소 등 나머지 9개 축종에서는 IPC primer와 간섭없이 PCR 산물이 확인되었다.
2). 동물종별 특이 primer에 대한 교차반응 여부를 확인하기 위해서 나머지 10개 축종에서도 singleplex PCR을 실시한 결과 칠면조를 제외한 소 등 나머지 9개 축종에서는 IPC primer와 간섭없이 PCR 산물이 확인되었다.
mt DNA 유전자는 첫 번째로 핵 내 DNA보다 세포당 수천 개의 copy number가 있어 열변성에 의해 야기된 DNA 단편으로부터 적절한 크기로 증폭될 수 있다. 두 번째로 다양한 축종에서 보고된 염기서열의 유용성 뿐만 아니라 동물 mt DNA 유전자 구성에 관한 방대한 정보를 이용하여 PCR 증폭을 위한 축종별 특이 primer를 쉽게 설계할 수 있다. 세 번째로 mt DNA의 큰 변이성 때문에 혼합물에서 신뢰성 있는 축종감별이 가능하다.
두 번째로 다양한 축종에서 보고된 염기서열의 유용성 뿐만 아니라 동물 mt DNA 유전자 구성에 관한 방대한 정보를 이용하여 PCR 증폭을 위한 축종별 특이 primer를 쉽게 설계할 수 있다. 세 번째로 mt DNA의 큰 변이성 때문에 혼합물에서 신뢰성 있는 축종감별이 가능하다. DNA에 기반을 둔 PCR 방법에 널리 이용된 유전자는 12S rRNA, 16S rRNA, 그리고 cytochrome b (cyt b)와 같은 mt DNA 유전자이며, 반추류(소, 면양, 산양, 사슴), 가금류(닭, 칠면조, 오리, 거위), 개, 고양이, 그리고 돼지와 같은 축종을 감별하였다(Ha 등, 2006; Martín 등, 2007a; Martín 등, 2007b; Tanabe 등, 2007).
한편, Montiel-Sosa 등(2000)은 D-loop 부위로 소, 닭, 양을 제외한 돼지만 증폭되는 영역을 선정하여 돼지고기와 멧돼지를 AvaII를 이용하여 감별하였고 검출한계는 원료육에서 5%였다. 이번 실험에서 multiplex PCR 방법으로 원료육과 가열 처리육에서 소고기와 혼합한 돼지고기의 검출한계는 0.1%였고, 닭고기와 혼합한 돼지고기의 검출한계는 1.0%였다.
축종별 genomic DNA의 검출한계는 소(190 bp)와 닭(171 bp)은 100 fg/μl까지, 돼지(119 bp)와 오리(229 bp)는 1 pg/μl까지 확인이 가능하였으며, IPC는 1 fg/μl까지 검출이 가능 하였다(Fig. 5).
칠면조에 특이적인 primer는 IPC primer와 함께 PCR을 수행하면 고양이, 오리 그리고 칠면조에서 비특이 증폭산물이 확인되었다(Fig. 2J). 그래서 IPC primer를 PCR 반응액에 첨가하지 않고 유전자를 증폭하면 고양이, 오리 그리고 칠면조에서 비특이 증폭산물이 관찰되지 않았다(Fig.

후속연구

따라서 정확한 축종 감별을 위해서는 Martín 등(2007a)이 제시한 가금류 4종과 이번 연구에서 개발한 소, 면양, 산양을 감별할 수 있는 PCR 방법을 병용한다면 식육제품에 사용된 동물종을 신속하고 정확하게 확인할 수 있을 것으로 생각한다.
RFLP 방법은 아가로스겔에서 낮은 해상도와 분별력으로 판독에 어려움이 있으며, 계통발생학적으로 연관성이 있는 축종감별을 위해서는 두 가지 이상의 제한효소가 필요한 경우가 많으며 PCR 증폭산물의 절단에 요구되는 제한효소 온도가 각기 달라서 큰 비용과 많은 시간이 소요되는 단점이 있지만 다양한 야생 동물종을 감별할 수 있는 연구가 이루어졌다. 이번 실험에서는 사슴에 대한 특이성 실험과 감별을 위한 primer가 제시되지 않았지만, 우리나라에서도 양록산업이 점차 발전하고 있어 감별 기술이 필요할 것으로 생각한다.
이번 연구에서 개발된 PCR 방법은 식육제품을 가공ㆍ제조하는 생산자의 실험실 품질 관리와 축산식품의 표시사항에 대한 허위 기재, 비의도적으로 표시 오류 그리고 저가의 육류를 부정하게 혼합한 제품 등에 대한 검증에 활용되어 소비자의 신뢰를 확보하는데 유용한 검사법이 될 것이다.
이번에 개발된 PCR 방법으로 국내에서 유통되는 제품에 대한 표시사항 검증이 이루어져 식육의 유통과 축산물 가공산업에서 저가의 육류를 부정하게 혼합하여 제조하는 것을 방지함으로써 유통구조를 개선하고, 식품에 대한 올바른 정보가 제공되어 소비자의 신뢰를 확보할 수 있을 것으로 생각한다.

질의응답

핵심어	질문	논문에서 추출한 답변
	돼지고기를 먹지 않는 이유에는 무엇이 있는가?	축산물의 안전성 측면에서 알레르기 유발 물질 중 난류(계란)와 돼지고기는 표시사항에 반드시 표시하도록 하고 있어, 육류를 가려 먹어야 하는 소비자에게는 매우 중요한 표시사항 중 하나일 것이다. 채식주의자와 유기농 식품을 선호하는 생활 양식의 차이, 돼지고기를 먹지 않는 종교적 이유, 식이요법 그리고 알레르기 물질과 같은 건강에 대한 우려 때문에 축산물의 표시사항을 자세히 살펴보고 구매하는 소비자가 증가하였다. 부가적으로 정확한 표시사항은 공정한 거래 질서를 확립하는데 매우 중요하다(Ballin, 2010).
	우리나라의 대표적인 축산물은 무엇인가?	우리나라에서 축산물을 대표하는 소, 돼지, 닭 및 오리는 식생활에 중요한 부분을 차지하는 육류 식품으로, 경제 성장으로 소득수준의 향상과 식생활의 서구화로 육류 소비가 폭발적으로 증가하였다. 현재 축산식품에 대한 소비자의 가장 큰 관심은 축산식품의 안전성과 품질일 것이다.
	축산식품의 안전성 측면에서 행하고 있는 제도는 무엇인가?	현재 축산식품에 대한 소비자의 가장 큰 관심은 축산식품의 안전성과 품질일 것이다. 축산물의 안전성 측면에서 알레르기 유발 물질 중 난류(계란)와 돼지고기는 표시사항에 반드시 표시하도록 하고 있어, 육류를 가려 먹어야 하는 소비자에게는 매우 중요한 표시사항 중 하나일 것이다. 채식주의자와 유기농 식품을 선호하는 생활 양식의 차이, 돼지고기를 먹지 않는 종교적 이유, 식이요법 그리고 알레르기 물질과 같은 건강에 대한 우려 때문에 축산물의 표시사항을 자세히 살펴보고 구매하는 소비자가 증가하였다.

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저자의 다른 논문 :

표제어: PCR

동의어: Packet Collision Rate

용어 설명 출처 목록 (6)

용어 설명: PCR은 세균 특이성이 있는 primer를 이용하여 적은 수의 세균이 있을지라도 쉽게 검출할 수 있는 유용한 방법이며, 이를 이용하여 구강 내 치면세균막이나 타액에서 직접 세균을 검출할 수 있게 되었다[8].

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