$\require{mediawiki-texvc}$

연합인증

연합인증 가입 기관의 연구자들은 소속기관의 인증정보(ID와 암호)를 이용해 다른 대학, 연구기관, 서비스 공급자의 다양한 온라인 자원과 연구 데이터를 이용할 수 있습니다.

이는 여행자가 자국에서 발행 받은 여권으로 세계 각국을 자유롭게 여행할 수 있는 것과 같습니다.

연합인증으로 이용이 가능한 서비스는 NTIS, DataON, Edison, Kafe, Webinar 등이 있습니다.

한번의 인증절차만으로 연합인증 가입 서비스에 추가 로그인 없이 이용이 가능합니다.

다만, 연합인증을 위해서는 최초 1회만 인증 절차가 필요합니다. (회원이 아닐 경우 회원 가입이 필요합니다.)

연합인증 절차는 다음과 같습니다.

최초이용시에는
ScienceON에 로그인 → 연합인증 서비스 접속 → 로그인 (본인 확인 또는 회원가입) → 서비스 이용

그 이후에는
ScienceON 로그인 → 연합인증 서비스 접속 → 서비스 이용

연합인증을 활용하시면 KISTI가 제공하는 다양한 서비스를 편리하게 이용하실 수 있습니다.

[국내논문] 장기간 기내 배양한 춘란(Cymbidium goeringii Lindley) 및 한란(Cymbidium kanran Makino)의 변이 비교
Variation Analysis of Long-term in vitro Cultured Cymbidium goeringii Lindley and Cymbidium kanran Makino 원문보기

韓國資源植物學會誌 = Korean journal of plant resources, v.24 no.2, 2011년, pp.139 - 149  

류재혁 (순천대학교 웰빙자원학과) ,  이효연 (제주대학교 생명공학부) ,  배창휴 (순천대학교 웰빙자원학과)

초록
AI-Helper 아이콘AI-Helper

기내 배양된 Cymbidium속 춘란과 한란의 근경을 대상으로 장기배양에 따른 변이성을 비교하기 위하여 RAPD 분석을 실시하였다. 춘란은 총 151개 DNA 밴드 중 40개의 다형성 밴드가 증폭되어 다형성 비율은 26.4%였으며, 한란은 총 155개 밴드 중 56개의 다형성 밴드가 증폭되어 36.1%의 다형성 비율을 나타내었다. 단순일치 계수(simple-matching coefficient)를 사용하여 유전적 유사도 지수를 분석한 결과, 춘란의 개체간의 유전적 유사도 지수는 0.825~1.00 사이로 평균 0.944였다. 한란의 개체간 유전적 유사도 지수는 0.812~1.00 사이로 평균 0.913이었다. 군집분석결과 춘란은 유전적 유사도 지수 0.841과 0.837에서 1개의 그룹과 유집되지 않는 2개체로 나누어졌으며 한란보다 단순하게 유집되었다. 이와 같이 생장조절제가 첨가된 기내 배지에서 장기간 배양된 Cymbidium 근경은 유전적 다형성을 나타냈으며, 유전적 유사지수도 다소 낮게 나타났다. 이 결과는 추후 여러 가지 변이원을 이용한 자원식물개발과 품종육성의 기초자료로 활용될 것으로 기대된다.

Abstract AI-Helper 아이콘AI-Helper

RAPD (random amplified polymorphic DNA) analysis was examined to detect variation of in vitro cultured 30 rhizomes of Cymbidium goeringii Lindley and Cymbidium kanran Makino, with long-term (8 years) subculture, respectively. Out of 151 DNA bands detected, the 40 were polymorphic with a polymorphic ...

Keyword

AI 본문요약
AI-Helper 아이콘 AI-Helper

* AI 자동 식별 결과로 적합하지 않은 문장이 있을 수 있으니, 이용에 유의하시기 바랍니다.

문제 정의

  • 그러나 RAPD 방법을 이용하여 기내 배양된 Cymbidium 식물속의 변이성 분석에 관한 국내 연구는 거의 이루어지지 않고 있다. 따라서 본 실험에서는 Cymbidium속 식물의 종간 관계인 춘란과 한란의 근경을 기내에서 장기간 배양할 때 발생할 수 있는 변이성을 RAPD 수준에서 탐색함으로써 기내배양 중 발생하는 변이빈도를 구명하고, 기내 배양계를 이용한 돌연변이 연구의 기초자료를 작성하기 위하여 실시하였다.
본문요약 정보가 도움이 되었나요?

질의응답

핵심어 질문 논문에서 추출한 답변
난과 (Orchidaceae) 식물이란? 식물학상 단자엽식물 중 가장 진화된 식물인 난과 (Orchidaceae) 식물은 전 세계적으로 800속, 20,000~ 25,000 종으로 분화되어 있으며(Arditti, 1992), 우리나라 에는 29속 92종 11변종이 있다(Chung et al., 1985).
난과 (Orchidaceae) 식물은 전 세계적으로 어느 정도 분화되어 있는가? 식물학상 단자엽식물 중 가장 진화된 식물인 난과 (Orchidaceae) 식물은 전 세계적으로 800속, 20,000~ 25,000 종으로 분화되어 있으며(Arditti, 1992), 우리나라 에는 29속 92종 11변종이 있다(Chung et al., 1985).
식물 기내 배양의 이점은? 난은 대부분 타식성 식물이기 때문에 유전인자의 조성이 heterozygous한 형태이며, 이종속간에도 교잡이 잘되기 때문에 유전인자가 매우 다양한 식물이다(Garay and Sweet, 1974; Harn, 1973). 식물의 기내배양은 체세포분열을 통한 식물체의 재분화로 동질성을 지닌 클론을 대량으로 얻을 수 있다는 이점을 가지고 있으나 기내배양 과정 중 유전적 변이가 일어남으 로써 종종 원치 않는 방향으로 재분화식물체의 증식이 이루어진다(Karp, 1991; Scowcroft et. al.
질의응답 정보가 도움이 되었나요?

참고문헌 (40)

  1. Arditti, J. 1992. Classification and naming of orchids. Fundamentals of Orchid Biology. John Wiley and Sons Press, New York, USA. pp. 55-101. 

  2. Bae, C.H., T. Abe, J.I. Lyu, S. Gensaram, Y.H. Shin, H.Y. Lee and S. Yoshida, 2003. Characteristics of plant organism irradiated with heavy-ion beam. Proceed. J. Kor. Plant Biotech. p. 126 (in Korean). 

  3. Bang, J.W., J.H. Park and E.Y. Choi. 1994. Chromosome variation in callus cells derived from different cytogenetic type plants of Scilla scillodes Complex. Kor. J. Plant Tissue Cult. 21:59-63 (in Korean). 

  4. Broertjes, C. and A.M. Van Harten. 1988. Applied mutation for vegetatively propagated crops. Elsevier Science Publisher, Amsterdam, Netherlands. pp. 225-285. 

  5. Brown, P.T.H. 1989. DNA methylation in plants and its role in tissue culture. Genome 31:717-729. 

  6. Choi, S.H. 2001. Phylogenetic analysis of oriental Cymbidium. Department of Horticulture, Ph.D. Thesis, Seoul Women's Univ. pp. 31-43. 

  7. Choi, J.Y., I.S. So, C.H. Pak and B.H. Kwack. 1998. Randomly amplified polymorphic DNA (RAPD) analysis on compatibility of Korean native Cymbidium goeringii with other Cymbidium species. J. Kor. Soc. Hort. Sci. 16:361-363 (in Korean). 

  8. Chung, J.D., C.K. Chun, S.S. Kim and J.S. Lee 1985. Factors affecting growth of rhizome and organogenesis of Korea native Cymbidium kanran. J. Kor. Soc. Hort. Sci. 26:281-288 (in Korean). 

  9. Chung, S.Y. 2003. Molecular phylogenetical relationship of Paphiopedilum and Phragmipedium. Department of Horticulture, Ph.D. Thesis, Seoul Women's Univ. pp. 25-38 (in Korean). 

  10. De Melo Ferreira, W., G.B. Kerbauy and A.P.P. Costa. 2006. Micropropagation and Genetic Stability of a Dendrobium Hybrid (Orchidaceae). in vitro Cell. Dev. Bio. Plant 42(6):568-571. 

  11. DeVerno, L.L., Y.S. Park, J.M. Bonga and J.M. Barrett. 1999. Somaclonal variation in cryopreserved embryogenic clone of white spruce (Picea glauca Voss). Plant Cell Rep. 18:948-953. 

  12. Evans, DA. 1989. Somaclonal variation : Genetic basis and breeding application. Trends in Genet. 5:46-50. 

  13. Fnag, G., S. Hammar and R. Grumet, 1992. A quick inexpensive method of removing ploysaccharides from plant genomic DNA. Biotechniques 13:52-55. 

  14. Garay, L.A. and H.R. Sweet. 1974. Natural and artificial hybrid genetic names of orchid. In C.L. Withner (eds.). The Orchids. Jhon Wiley and Son Press, New York, USA. pp. 485-561. 

  15. Goto, S.R., C. Thakur and K. Ishii. 1998. Determination of genetic stability in long term microprogated shoots of Pinus thungergii part using RAPD markers. Plant Cell Rep. 18:193-197. 

  16. Harn, C. 1973. Orchid. Kor. J. Plant Tissue Cult. 1:40-47 (in Korean). 

  17. Jung, M.S., Y.H. Joung, J.H. Lee, J.K. Choi, K.S. Kim and T.H. Han. 2008. Assessment of genetic diversity of Hedera spp. using RAPD marker technique. J. Kor. Flower Res. 16:28-35 (in Korean). 

  18. Karp, A. 1991. On the current understanding of somaclonal variation. In Oxford Surveys of Plant Molecular and Cell Biology Vol 7. Oxford University Press, New York, USA. pp. 1-58. 

  19. Kim, B.M. 2004. Analysis of phenotypic and genetic polymorphism of self-pollinated Korean native Cymbidium goeringii seedlings. Department of Horticulture, M.A. Thesis, Seoul Women's Univ. pp. 20-29 (in Korean). 

  20. Kim, J.Y. and J.S. Lee. 1992. Effect of cultural conditions on rhizome growth and organogenesis of Cymbidium lancifolium native to Korea in vitro. J. Kor. Soc. Hort. Sci. 33:471-476 (in Korean). 

  21. Kishor, R. and H.S. Devi. 2009. Induction of multiple shoots in a monopodial orchid hybrid (Aerides vandarum Reichb.f x Vanda stangeana Reichb.f) using thidiazuron and analysis of their genetic stability. Plant Cell Tiss. Org. Cult. 97(2):121-129. 

  22. Larkin, P.J. and W.R. Scowcroft. 1981. Somaclonal variation-a novel source of variability from cell cultures for plant improvement. Theor. Appl. Genet. 60:197-214. 

  23. Lee, J.S. and B.H. Kwack. 1985. Studies on ecology of Korean native wild orchids. III. Geographical distribution of genus Cymbidium. J. Kor. Soc. Hort. Sci. 26:140-144 (in Korean). 

  24. Lee, H.Y., J.S. Jung and J.S. Lee. 1998. Induction of chlorophyll deficient mutant plant of Cymbidium kanran by EMS treatment. Kor. J. Plant Tissue Cult. 25:183-187. 

  25. Martins, M., D. Sarmento and M.M. Oliveira 2004. Genetic stability of micropropagated almond plantlets, as assesed by RAPD and ISSR markers. Plant Cell Rep. 23:492-496. 

  26. Modgil, M., K. Mahajan, S.K. Chakrabarti, D.R Sharma and R.C. Sobti. 2005. Molecular analysis of genetic stability in micropropagated apple rootstock MM106. Sci. Hort. 104:151-160. 

  27. Murashige T and F. Skoog. 1962. A revised medium for rapid growth and bioassays with tabacco tissue culture. Physiol. Plant. 15:473-479. 

  28. Na, A.S., C.G. Been, K.B. Lim and R.J. Byoung. 2007. Observation of morphological variations and selection of specific RAPD marker for somaclonal variation in Phalaenopsis clones. J. Kor. Flower Res. 15:174-178. 

  29. Obara-Okeyo, P. and S. Kako. 1998. Genetic diversity and identification of Cymbidium cultivars as measured by random amplified polymorphic DNA (RAPD) markers. Euphytica 99:95-101. 

  30. Park, Y.C., M.S. Seong, S.R. Kim and S.W. Song. 2005. RAPD-mediated genetic relationship analysis of Cymbidium. J. Kor. Flower Res. 13:25-30 (in Korean). 

  31. Parani, M., A. Anand and A. Parida. 1997. Application of RAPD fingerprinting in selection of micropropagated plants of Piper longum for conservation. Current Sci. 73:81-83. 

  32. Peschke, V.M., R.L. Phillips and B.G. Genenbach. 1987. Discovery of transposable element activity among progeny of tissue culture derived maize plants. Science 238:804-807. 

  33. Raimondi, J.P., R.W. Masuelli and E.L. Camadro. 2001. Assesment of somaclonal variation in aspragus by RAPD fingerprinting and cytogenic analyses. Sci. Hort. 90:19-29. 

  34. Scowcroft, W.R., R.I.S. Bretell, S.A. Ryan, P.A. Davis and M.A. Pallota. 1987. Somaclonal variation and genomic flux. In Plant Tissue and Cell Culture (eds.). Alan R. Liss, England. pp. 275-286. 

  35. Silva, J.A., N. Singh and M. Tanaka. 2006. Priming biotic factors for optimal protocorm-like body and callus induction in hybrid Cymbidium (Orchidaceae), and assessment of cytogenetic stability in regenerated plantlets. Plant Cell Tiss. Org. Cult. 84(2):100119-100128. 

  36. So, I.S., J.Y. Choi, T.S. Ko and B.J. Oh. 1998. Growth characteristics of a dwarf mutant in Cymbidium kanran and its genetic relationship evaluated by random amplified polymorphic DNA analysis. J. Kor. Flower Res. Soc. 7:11-18 (in Korean). 

  37. Williams, J.G.K., A.R. Kubelik and L.J. Livuk. 1990. DNA Polymorphisms amplified by arbitray primers are useful as genetic markers. Nucl. Acids Res. 18:6531-6535. 

  38. Yuan, X.F., Z.H. Dai, X.D. Wang and B. Zhao. 2009. Assessment of genetic stability in tissue-cultured products and seedlings of Saussurea in volucrata by RAPD and ISSR markers. Biotech. Lett. 31(8):1279-1287. 

  39. Zheng, K.L., S. Castiglione, M.G. Biasini, C. Morandi and F. Sala. 1987. Nuclear DNA amplification and genetic mapping. Nucl. Acids Res. 19:303-306. 

  40. Zhou, T.S. 1995. In vitro culture of Doritaenopsis: comparison between formation of the hyperhydric protocorm-like body (PLB) and the normal PLB. Plant Cell Rep. 15:181-185. 

저자의 다른 논문 :

LOADING...

활용도 분석정보

상세보기
다운로드
내보내기

활용도 Top5 논문

해당 논문의 주제분야에서 활용도가 높은 상위 5개 콘텐츠를 보여줍니다.
더보기 버튼을 클릭하시면 더 많은 관련자료를 살펴볼 수 있습니다.

관련 콘텐츠

오픈액세스(OA) 유형

FREE

Free Access. 출판사/학술단체 등이 허락한 무료 공개 사이트를 통해 자유로운 이용이 가능한 논문

이 논문과 함께 이용한 콘텐츠

유발과제정보 저작권 관리 안내
섹션별 컨텐츠 바로가기

AI-Helper ※ AI-Helper는 오픈소스 모델을 사용합니다.

AI-Helper 아이콘
AI-Helper
안녕하세요, AI-Helper입니다. 좌측 "선택된 텍스트"에서 텍스트를 선택하여 요약, 번역, 용어설명을 실행하세요.
※ AI-Helper는 부적절한 답변을 할 수 있습니다.

선택된 텍스트

맨위로