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16S rRNA에 의한 한국 내 Chyseobacterium indologenes과 염기 서열 변화
Change of Sequences and Identification of Chyseobacterium indologenes in Korea by 16S rRNA 원문보기

생명과학회지 = Journal of life science, v.21 no.6 = no.134, 2011년, pp.788 - 795  

허만규 (동의대학교 분자생물학과) ,  박소혜 (동의대학교 분자생물학과) ,  염종화 (동의대학교 임상병리학과)

초록
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병원균에 대한 정확한 동정은 임상 연구실에서 필수적인 요소의 하나이다. Chyseobacterium indologenes에 대한 동정을 포함한 분자생물학적 분석과 리보솜의 16S rRNA 유전자로 한국에서 추출한 17검체와 GenBank에서 Chyseobacterium속 검색을 통해 이들과 계통관계를 평가하였다. C. indologenes의 배당 서열은 1,176 nucleotides였다. C. indologenes 내의 서열 변이는 주로 염기 치환이었다. 한국의 C. indologenes 검체는 다른 나라의 동 종과 크게 다르지 않았다. 그런데 한국의 C. indologenes의 치환율은 GenBank에 있는 동종보다 높았다. C. indologenes는 C. isbiliense, C. hominis, C. hispanicum, C. molle, C. hungaricum, and C. pallidum과 자매종을 형성하였다.

Abstract AI-Helper 아이콘AI-Helper

Accurate identification for pathogenic bacterium is an essential element in the clinical microbiology laboratory. We studied molecular analysis involving the identification of Chyseobacterium indologenes and evaluated the seventeen isolates in Korea with the 16S rRNA gene of the ribosome to estimate...

주제어

AI 본문요약
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제안 방법

  • 병원균에 대한 정확한 동정은 임상 연구실에서 필수적인 요소의 하나이다. Chyseobacterium indologenes에 대한 동정을 포함한 분자생물학적 분석과 리보솜의 16S rRNA 유전자로 한국에서 추출한 17검체와 GenBank에서 Chyseobacterium속 검색을 통해 이들과 계통관계를 평가하였다. C.
  • DNA 서열에서 염기 치환이 같은 패턴으로 진화해왔다는 가설을 몬테-카를로 테스트(1000 반복)로 검증하였다(Table 3).
  • PCR 반응을 위하여 추출한 각 분류군의 게놈 DNA 50 ng, 각 dNTPs, 100 μM, 시발체 각 0.2 μM, 1× enzyme buffer, Taq polymerase 2 unit를 넣고 증류수로 전체 50 μl volume이 되도록 추가하였다.
  • 또한 Chyseobacterium속의 종이 ß-lactamase를 생성하여 그람 음성균에 의한 감염의 치료로 사용되는 aminoglycosides계, ß-lactam계 항생제, tetracyclines, chloramphenicol 등에 본질적으로 저항성을 지니며 약제 사용에 대한 저항성 균주의 발생을 야기할 수 있는 서열 치환, 삽입, 결실, 중복 등 돌연변이에 의한 염기 변화를 탐지하기 위한 검체들 내 서열 간 차이가 있는지 변이를 분석하였다.
  • 621번째부터 CID27에서 많은 변이가 관찰되었다. 모든 균주 간 유전적 거리를 산출하였다(Table 3). CID11번과 CID22번 균주 간 가장 유전적으로 먼 유연관계를 나타내었다.
  • 본 연구에서는 전통적인 생화학적 방법 또는 동정용 키트로도 명확하게 드러나지 않는 30검체를 분석하여 동일한 서열을 가진 같은 계보의 검체를 제외한 17균주와 GenBank에서 얻은 서열과 비교하였다. 또한 Chyseobacterium속의 종이 ß-lactamase를 생성하여 그람 음성균에 의한 감염의 치료로 사용되는 aminoglycosides계, ß-lactam계 항생제, tetracyclines, chloramphenicol 등에 본질적으로 저항성을 지니며 약제 사용에 대한 저항성 균주의 발생을 야기할 수 있는 서열 치환, 삽입, 결실, 중복 등 돌연변이에 의한 염기 변화를 탐지하기 위한 검체들 내 서열 간 차이가 있는지 변이를 분석하였다.
  • 57의 NEIGHBOR, neighbor-joining (NJ) 방법에 의해 구성하였다[5,15]. 분류군의 가지에 대한 Bootstrap 분석은 1,000회 반복법으로 실시하였다.
  • 염기 치환에 대한 가능성과 transition/transversion의 비는 Tamura 등[2004]의 방법으로 산출하였다. 서열 간 코돈의 중립성 검증은 갭(gap)과 결손 서열을 제외하고 1,000회 반복으로 MEGA4로 실시하였다[11]. 다양도와 돌연변이 정도는 Tajima의 여러 통계 척도(M=number of sites, S=Number of segregating sites, ps=S/M, and π=nucleotide diversity.
  • 현상된 젤은 Alpha Image TM (Alpha Innotech Corperation, CA, USA)을 사용하여 밴드 양상을 조사하였다. 이후 젤에서 DNA를 QIAquick Gel Extraction Kit (QIAGEN, ICI Americas Inc., USA)로 추출하였다. 추출된 DNA를 bluescript II SK(+) vector (Invitrogen, Life Technologies, USA)로 클로닝한 후 ABI Prism 377 Sequencer (Applied Biosystem, USA)로 염기서열을 분석하였다.
  • 최절약법에 의한 tree (maximum parsimonious tree, MP)는 heuristic search, branch-swapping options, tree bisection-reconnection에 따랐다[17]. 최우법(maximum likelihood tree, ML), N-J법(neighbor-joining tree, NJ)으로 tree 작성을 실시하여 비교하였다. 계통분석의 분지는 PHYLIP version 3.
  • , USA)로 추출하였다. 추출된 DNA를 bluescript II SK(+) vector (Invitrogen, Life Technologies, USA)로 클로닝한 후 ABI Prism 377 Sequencer (Applied Biosystem, USA)로 염기서열을 분석하였다.
  • 전기영동 후 젤은 ethidium bromide로 염색하여 밴드를 현상하였다. 현상된 젤은 Alpha Image TM (Alpha Innotech Corperation, CA, USA)을 사용하여 밴드 양상을 조사하였다. 이후 젤에서 DNA를 QIAquick Gel Extraction Kit (QIAGEN, ICI Americas Inc.

대상 데이터

  • 동정용 키트로도 명확하게 드러나지 않는 30검체를 분석하였다. 이 중 동일한 서열을 가진 같은 계보의 검체는 한 검체만 남기고 제외하여 총 17균주의 서열을 사용하였다.
  • 본 분석에 사용한 시료는 2007년부터 2009년까지 서울특별시 oo대학교 의료원에서 배양 의뢰한 임상검체에서 증식된 세균 중 전통적인 생화학적 방법 또는 동정용 키트(VITEK system, BIOMḖRIEUX, Marcy-I'Toile, France)로 동정이 불명확한 세균 30주를 대상으로 하였다.

데이터처리

  • )로 편집하였다. 이들 서열에서 결손부위를 포함한 서열 배당은 MEGA version 4.1과 Clustal X program으로 분석하였다[20]. 배당된 서열에서 갭의 부위는 missing data로 처리하였다.
  • 프로그램 PAUP* (Phylogenetic Analysis Using Parsimony)에서 분류군간 핵산 차이에 의한 유의성 검증, 염기 빈도, 서열쌍 거리, uncorrected "p"에 의한 측정된 거리 등을 산출하였다[17].

이론/모형

  • DNA 추출은 상등액 10 μl를 사용하였다. 각 균주로부터 DNA를 추출하기 위한 시약은 DNA Zol Reagent(Life Technologies Inc., Grand Island, New York, USA)를 사용하였다 추출방법은 사용자의 지침서에 의거하여 추출하였다. 추출된 DNA는 진공 흡입기로 5분간 건조시킨 후 TE(10 mM Tris, pH 8.
  • 최우법(maximum likelihood tree, ML), N-J법(neighbor-joining tree, NJ)으로 tree 작성을 실시하여 비교하였다. 계통분석의 분지는 PHYLIP version 3.57의 NEIGHBOR, neighbor-joining (NJ) 방법에 의해 구성하였다[5,15]. 분류군의 가지에 대한 Bootstrap 분석은 1,000회 반복법으로 실시하였다.
  • 염기 치환에 대한 가능성과 transition/transversion의 비는 Tamura 등[2004]의 방법으로 산출하였다. 서열 간 코돈의 중립성 검증은 갭(gap)과 결손 서열을 제외하고 1,000회 반복으로 MEGA4로 실시하였다[11].
  • 최절약법에 의한 tree (maximum parsimonious tree, MP)는 heuristic search, branch-swapping options, tree bisection-reconnection에 따랐다[17]. 최우법(maximum likelihood tree, ML), N-J법(neighbor-joining tree, NJ)으로 tree 작성을 실시하여 비교하였다.
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질의응답

핵심어 질문 논문에서 추출한 답변
C. indologenes의 특징은 무엇인가? C. indologenes는 사람에서 병원성은 낮으나 면역력이 저하된 사람에서 패혈증, 균혈증, 신우신염, 뇌수막염, 담도 감염, 인공호흡기 관련 폐렴 등을 유발할 수 있다[6].
Chyseobacterium속의 특징은 무엇인가? Chyseobacterium속은 Chyseobacterium gleum, Chyseobacterium indologenes, Chyseobacterium meningosepticum 등이 있다. 이들 종은 비발효성 그람 음성 간균이다. 또한 이들은 호기성, oxidase 양성, 비운동성, indole 양성을 특성을 가지고 있다[1]. 이들이 발견되는 곳은 주거 환경, 식물체, 유제품, 토양, 민물과 해수 등 광범위하며 특히 주거 환경 내 욕조, 체내 유치 도관, 소독약, 흡입치료제 등에서도 동정되기도 한다[16]. C.
Chyseobacterium속에는 어떤 종이 있는가? Chyseobacterium속은 Chyseobacterium gleum, Chyseobacterium indologenes, Chyseobacterium meningosepticum 등이 있다. 이들 종은 비발효성 그람 음성 간균이다.
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참고문헌 (23)

  1. Bloch, K. C., R. Nadarajah, and R. Jacobs. 1997. Chryseobaterium meninggosepticum : an emerging pathogen among immunocompromised adults. Report of 6 cases and literature review. Medicine (Boltimore) 76, 30-41. 

  2. Bosshard, P. P., R. Zbinden, S. Abels, B. Boddinghaus, M. Altwegg, and E. C. Bottger. 2006. 16S rRNA gene sequencing versus the API 20 NE system and the VITEK 2 ID-GNB card for identification of nonfermenting gram-negative bacteria in the clinical laboratory. J. Clin. Microbiol. 44, 1359-1366. 

  3. Bull, J. J. 1994. Virulence. Evolution 48, 1423-1437. 

  4. Cech, T. R. 1988. Conserved sequences and structures of group I introns: building an active site for RNA catalysis - a review. Gene 73, 259-271. 

  5. Felsenstein, J. 1993. PHYLIP (Phylogeny Inference Package) version 3.5s, Distributed by the author. Department of Genetics, Univ. Washington, seattle. 

  6. Hsueh, P. R., L. L. Teng, P. C. Yang, S. W. Ho, W. C. Hsieh, and K. T. Luh. 1997. Increasing incidence of nosocomial Chryseobaterium indologennes infections in Taiwan. Eur. J. Clin. Microbiol. Infect. Dis. 16, 568-574. 

  7. Kirby, J. T., H. S. Sadar, T. R. Walsh, and R. N. Jones. 2004. Antimicrobial susceptibility and epidemiology of a worldwide collection of Chyseobacterium spp. report from the SENTRY antimicrobial survaillance program (1997-2001). J. Clin. Microbiol. 42, 445-448. 

  8. Kuhsel, M. G., R. Strickland, and J. D. Palmer. 1990. An ancient group I intron shared by eubacteria and chloroplasts. Science 250, 1570-1573. 

  9. Kumar, S. and S. R. Gadagkar. 2001. Disparity Index: A simple statistic to measure and test the homogeneity of substitution patterns between molecular sequences. Genetics 158, 1321-1327. 

  10. Michel, F. and B. Dujon. 1983. Conservation of RNA secondary structures in two intron families including mitochondrial-, chloroplast- and nuclear-encoded members. EMBO J. 2, 33-38. 

  11. Nei, M. and T. Gojobori. 1986. Simple methods for estimating the numbers of synonymous and nonsynonymous nucleotide substitutions. Mol. Biol. Evol. 3, 418-426. 

  12. Pace, N. R. 1997. A molecular view of microbial diversity and the biosphere. Science 276, 734-740. 

  13. Patel, J. B. 2001. 16S rRNA gene sequencing for bacterial pathogen identification in the clinical laboratory. Mol. Dign. 6, 313-321. 

  14. Rudi, K. and K. S. Jackobsen. 1997. Complex evolutionary patterns of $tRNA_{UAA}^{Leu}$ group I introns in cyanobacterial radiation. J. Bateriol. 181, 3445-3451. 

  15. Saitou, N. and M. Nei. 1987. The neighbor-joining method: A new method for reconstructing phylogenetic trees. Mol. Biol. Evol. 4, 406-425. 

  16. Schreckenberger, P. C., M. I. Danesshvan, R. S. Weyant, and D. G. Hollis. 2003. Acinetobacter, Achromobacter, Chryseobaterium, Moraxella, and other nonfermentative gram-negative rods, pp. 749-779, In Murray, P. R., E. J. Baron, M. A. Pfaller, J. H. Jorgensen, and R. H. Yolken (eds.), Manual of Clinical microbiology. American Society for Microbiology, Washington, DC. 

  17. Swofford, D. L. 2003. PAUP*. Phylogenetic Analysis Using Parsimony (*and other methods). Version 4. Sinauer Associates Inc., Sunderland, MA. 

  18. Tajima, F. 1989. Statistical methods to test for nucleotide mutation hypothesis by DNA polymorphism. Genetics 123, 585-595. 

  19. Tamura, K., M. Nei, and S. Kumar. 2004. Prospects for inferring very large phylogenies by using neighbor-joining method. Proc. Natl. Acad. Sci. USA 101, 11030-11035. 

  20. Tamura, K., J. Dudley, M. Nei, and S. Kumar. 2007. MEGA4: molecular evolutionary genetics analysis (MEGA) software version 4.0. Mol. Biol. Evol. 24, 1596-1599. 

  21. Thorne, J. L., H. Kishino, and I. S. Painter. 1998. Estmating the rate of evolution of the rate of molecular evolution. Mol. Biol. Evol. 15, 1647-1657. 

  22. Tortoli, E. 2003. Impact of genotypic studies on mycobacterial taxonomy: the new mycobacterial of the 199s. Clin. Microbiol. Rev. 16, 319-354. 

  23. Yannelli, B., I. G. Koj, and B. A. Cunha. 1999. Chyseobacterium meningosepticum bacteremia secondary to central intravenous line-related infection. Am. J. Infet. Control 27, 533-535. 

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