톳 분획물이 3T3-L1 지방전구세포의 분화 및 지방생성의 억제에 미치는 영향 Effects of Hizikia fusiforme Extracts on Adipocyte Differentiation and Adipogenesis in 3T3-L1 Preadipocytes원문보기
본 연구에서는 톳 분획물의 항비만 효과 및 그에 따른 생화학적 기전의 해석을 위하여 톳 분획물이 비만유도인자에 의하여 인위적으로 유발된 adipogenesis 과정에 있어서 어떠한 영향을 미치는 지를 조사하였고, 이때 $PPAR{\gamma}$, C/$EBP{\alpha}$ 및 C/$EBP{\beta}$ 등과 같은 adipogenic transcription factor들의 발현에 어떠한 변화가 유발되었는지를 조사하였다. 각각의 톳 분획물들이 성숙한 지방세포에서 나타나는 lipid droplet 및 TG 생성에 어떠한 영향을 미치는 지를 확인한 결과, 모든 분획물에서 lipid droplet 및 TG 생성억제가 나타났지만 특히 WFHF 처리군에서 이러한 현상이 가장 강하게 나타났다. 또한 lipid droplet 및 TG 생성에 중요한 역할을 하는 것으로 알려진 adipogenic transcription factor들의발현에각각의분획물들이 어떠한영향을미치는지를확인한결과,WFHF 처리군에서 $PPAR{\gamma}$, C/$EBP{\alpha}$ 및 C/$EBP{\beta}$의 발현이 현저하게 감소하였음을 확인하였다. 이상의 결과를 종합해 보면 다섯 종류의 톳 분획물 모두 비만억제 효과가 있는 것으로 나타났고 특히 WFHF의 비만억제 효과가 강하게 나타났음을 알 수 있었다. 본 연구 결과는 톳의 비만억제 가능성을 제시하는 것으로서 항비만 기전에 대한 생화학적 해석 및 이를 활용한 향후 지속적인 연구를 위한 자료로서 그 가치가 매우 높을 것으로 생각된다.
본 연구에서는 톳 분획물의 항비만 효과 및 그에 따른 생화학적 기전의 해석을 위하여 톳 분획물이 비만유도인자에 의하여 인위적으로 유발된 adipogenesis 과정에 있어서 어떠한 영향을 미치는 지를 조사하였고, 이때 $PPAR{\gamma}$, C/$EBP{\alpha}$ 및 C/$EBP{\beta}$ 등과 같은 adipogenic transcription factor들의 발현에 어떠한 변화가 유발되었는지를 조사하였다. 각각의 톳 분획물들이 성숙한 지방세포에서 나타나는 lipid droplet 및 TG 생성에 어떠한 영향을 미치는 지를 확인한 결과, 모든 분획물에서 lipid droplet 및 TG 생성억제가 나타났지만 특히 WFHF 처리군에서 이러한 현상이 가장 강하게 나타났다. 또한 lipid droplet 및 TG 생성에 중요한 역할을 하는 것으로 알려진 adipogenic transcription factor들의발현에각각의분획물들이 어떠한영향을미치는지를확인한결과,WFHF 처리군에서 $PPAR{\gamma}$, C/$EBP{\alpha}$ 및 C/$EBP{\beta}$의 발현이 현저하게 감소하였음을 확인하였다. 이상의 결과를 종합해 보면 다섯 종류의 톳 분획물 모두 비만억제 효과가 있는 것으로 나타났고 특히 WFHF의 비만억제 효과가 강하게 나타났음을 알 수 있었다. 본 연구 결과는 톳의 비만억제 가능성을 제시하는 것으로서 항비만 기전에 대한 생화학적 해석 및 이를 활용한 향후 지속적인 연구를 위한 자료로서 그 가치가 매우 높을 것으로 생각된다.
The present study was conducted to evaluate the effects of various extracts of Hizikia fusiforme on the anti-obesity effects in 3T3-L1 preadipocytes. We used H. fusiforme extracts from ethanol (EEHF), dichloromethane (CFHF), ethyl acetate (EAFHF), butanol (BFHF), and water (WFHF). Treatment with the...
The present study was conducted to evaluate the effects of various extracts of Hizikia fusiforme on the anti-obesity effects in 3T3-L1 preadipocytes. We used H. fusiforme extracts from ethanol (EEHF), dichloromethane (CFHF), ethyl acetate (EAFHF), butanol (BFHF), and water (WFHF). Treatment with these extracts significantly suppressed terminal differentiation of 3T3-L1 preadipocytes in a dose-dependent manner as confirmed by a decrease in lipid droplet content through Oil Red O staining; this effect was higher in WFHF than in other extracts. The concentrations of cellular triglyceride were also reduced in 3T3-L1 cells by exposure with these extracts, especially when compared with the controls. Treatment with 200 ${\mu}g/ml$ of WFHF and CFHF caused approximately 42.6% and 23.7% reduction, respectively. In addition, the extracts of H. fusiforme significantly reduced the expression levels of key pro-adipogenic transcription factors, including peroxisome proliferator-activated receptor ${\gamma}$ ($PPAR{\gamma}$) and CCAAT/enhancer binding proteins ${\alpha}$ (C/$EBP{\alpha}$) and C/$EBP{\beta}$ as compared with controls. Accordingly, our data indicated that WFHF has a preeminent effect on inhibition of adipocyte differentiation among various extracts, and H. fusiforme extracts may be an ideal candidate for obesity relief.
The present study was conducted to evaluate the effects of various extracts of Hizikia fusiforme on the anti-obesity effects in 3T3-L1 preadipocytes. We used H. fusiforme extracts from ethanol (EEHF), dichloromethane (CFHF), ethyl acetate (EAFHF), butanol (BFHF), and water (WFHF). Treatment with these extracts significantly suppressed terminal differentiation of 3T3-L1 preadipocytes in a dose-dependent manner as confirmed by a decrease in lipid droplet content through Oil Red O staining; this effect was higher in WFHF than in other extracts. The concentrations of cellular triglyceride were also reduced in 3T3-L1 cells by exposure with these extracts, especially when compared with the controls. Treatment with 200 ${\mu}g/ml$ of WFHF and CFHF caused approximately 42.6% and 23.7% reduction, respectively. In addition, the extracts of H. fusiforme significantly reduced the expression levels of key pro-adipogenic transcription factors, including peroxisome proliferator-activated receptor ${\gamma}$ ($PPAR{\gamma}$) and CCAAT/enhancer binding proteins ${\alpha}$ (C/$EBP{\alpha}$) and C/$EBP{\beta}$ as compared with controls. Accordingly, our data indicated that WFHF has a preeminent effect on inhibition of adipocyte differentiation among various extracts, and H. fusiforme extracts may be an ideal candidate for obesity relief.
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문제 정의
Phospholipid monolayer에 의하여 둘러싸여진 중성지방으로 구성된 비활성 소낭인 lipid droplet은 precursor fibroblast에서부터 지방세포로의 분화과정에서 나타나며, 이렇게 생성된 lipid droplet은 lipoprotein lipase (LPL)에 의한 TG 유입과 adipose triglyceride lipase (ATGL) 및 hormone sensitive lipase (HSL)에 의한 TG 유출에 의하여 조절되는 것으로 알려져 있다[11,24]. 따라서 본 연구에서는 3T3-L1 지방전구세포가 지방세포로의 분화과정에 나타나는 lipid droplet 생성에 톳 분획물이 어떠한 영향을 미치는지를 확인하기 위하여 각각의 분획물을 적정 농도로 처리하여 분화를 유도한 후 Oil Red O 염색 전후로 구분하여 lipid droplet 생성정도를 관찰하였다. Fig.
따라서 본 연구에서는 3T3-L1 지방전구세포의 adipogenesis 과정에 있어서 톳 분획물이 유발하는 항비만 효과와 함께 그에 따른 생화학적 기전의 해석을 위하여 insulin, dexamethasone 및 3-isobutyl-1-methylxanthine (IBMX) 등의 비만유도인자에 의하여 인위적으로 유발된 adipogenesis 과정에 있어서 어떠한 영향을 미치는지를 조사하였고, 지방세포분화에 관여하는 PPARγ, C/EBPα 및 C/EBPβ 등과 같은 adipogenic transcription factor들의 발현 변화 여부를 비교하였다.
이렇게 분화된 세포는 lipid droplet 생성 및 세포의 크기 증가 등과 같은 형태적 특징과 더불어 특이적인 유전자의 발현을 유발함으로서 지방세포의 특징을 지니게 된다. 따라서 본 연구에서는 톳 분획물들이 adipogenic transcription factor들의 발현에 어떠한 영향을 미치는 지를 mRNA 및 단백질 수준에서 확인하였다. Fig.
제안 방법
3T3-L1 지방전구세포를 세포 배양용 6 well plate에서 confluent 상태까지 배양한 후 10 μg/ml insulin, 0.1 μM dexamethasone 및 0.5 mM IBMX이 포함된 분화배지로 교환하여 2일간 배양하였으며, 그 후 매 2일마다 10 μg/ml insulin이 포함된 배지로 교환하였다.
3T3-L1 지방전구세포에서 톳 추출물들의 세포독성을 조사하기 위해서 50~250 μg/ml의 농도에서 MTT assay 실험을 수행하였다.
5 mM IBMX이 포함된 분화배지로 교환하여 2일간 배양하였으며, 그 후 매 2일마다 10 μg/ml insulin이 포함된 배지로 교환하였다. Adipogenesis의 진행과정에서 톳 분획물의 영향을 확인하기 위해, 첫 번째 분화유도를 할 때 톳 분획물을 함께 처리하였다.
분리된 RNA를 DEPC water를 이용하여 녹이고 정량한 후, 각각의 primer, DEPC water 그리고 ONE-STEP RT-PCR PreMix Kit (Intron, Korea)를 넣고 Mastercycler gradient (Eppendorf, Hamburg, Germany)를 이용하여 역전사 및 증폭하였다. 각 PCR 산물들의 양적 차이를 확인하기 위하여 1X TAE buffer로 1% agarose gel을 만들고 well 당 각각의 primer에 해당하는 PCR 산물에 DNA gel loading solution을 섞어서 loading 한 후 100 V에서 전기영동을 하였다. 전기영동으로 DNA 분리가 끝난 gel을 ethidium bromide (EtBr, Sigma-Aldrich)을 이용하여 염색한 후 UV 하에서 확인하였으며, housedeeping 유전자인 glyceraldegyde-3-phosphate dehydrogenase (GAPDH)를 internal control로 사용하였다.
또한 정량적 분석을 위하여 100% isopropanol을 이용하여 지방을 추출한 후 96 well plate에 200 μl씩 옮겨서 ELISA reader로 500 nm에서 흡광도를 측정하였고 대조군의 흡광도 값에 대한 백분율로 나타내었다.
분리된 단백질이 전이된 nitrocellulose membrane에 5% skim milk를 처리하여 비특이적인 단백질들에 대한 blocking을 실시하고 1차 항체를 처리하여 상온에서 2시간 이상 또는 4℃에서 over night 시킨 다음 PBS-T로 세척하고 처리된 1차 항체에 맞는 2차 항체를 사용하여 상온에서 1시간 정도 반응시켰다. 반응이 끝난 후 암실에서 Enhanced Chemiluminoesence (ECL) solution (Amersham Life Science Corp.)을 적용시킨 다음 X-ray film에 감광시켜 특정 단백질의 발현 양을 분석하였다.
14,000 rpm, 4℃에서 15분간 원심분리시켜 400 μl의 상층액을 분리하고 동량의 isopropanol을 첨가하여 4℃에서 30분 동안 반응시킨 후 14,000 rpm, 4℃에서 30분간 원심분리시켜 total RNA를 분리하였다. 분리된 RNA를 DEPC water를 이용하여 녹이고 정량한 후, 각각의 primer, DEPC water 그리고 ONE-STEP RT-PCR PreMix Kit (Intron, Korea)를 넣고 Mastercycler gradient (Eppendorf, Hamburg, Germany)를 이용하여 역전사 및 증폭하였다. 각 PCR 산물들의 양적 차이를 확인하기 위하여 1X TAE buffer로 1% agarose gel을 만들고 well 당 각각의 primer에 해당하는 PCR 산물에 DNA gel loading solution을 섞어서 loading 한 후 100 V에서 전기영동을 하였다.
톳 추출물 처리에 의한 3T3-L1 지방전구세포의 분화 및 droplet 생성 정도를 확인하기 위하여 세포 배양용 6 well plate에 3T3-L1 지방전구세포를 분주하여 confluent 상태까지 배양한 후 톳 추출물을 적정농도로 희석 처리하면서 분화를 유도하였다. 분화가 끝난 후 톳 추출물 처리농도에 따른 분화 및 droplet 생성 정도를 도립 현미경을 이용하여 200배의 배율로 관찰하였다.
5), 250 mM NaCl, 5 mM EDTA, 1% NP-40, 1 mM phenymethylsulfonyl fluoride(PMSF), 5 mM dithiothreitol (DTT)]를 첨가하여 4℃에서 1시간 동안 반응시킨 후, 14,000 rpm으로 30분간 원심분리하여 상층액에 있는 총 단백질을 분리하였다. 상층액의 단백질 농도는 Bio-Rad 단백질 정량 시약(Bio-Rad, Hercules, CA, USA)과 그 사용방법에 따라 정량 한 다음 동량의 Laemmli sample buffer (Bio-Rad)를 섞어서 sample을 만들었다. 동량의 sample을 sodium dodecyl sulphate (SDS)-polyacrylamide gel을 이용하여 전기영동으로 분리한 후, nitrocellulose membrane(Schleicher and Schuell, Keene, NG, USA)으로 electroblotting에 의해 전이시켰다.
세포 내 droplet 생성을 확인하기 위하여 Oil Red O 염색을 실시하였다. 준비된 3T3-L1 지방전구세포를 PBS로 세척한 후 3.
조건 하에서 배양하였다. 세포수의 증식에 따른 과밀도 현상을 해소하기 위하여 성장배지의 교환을 매 48시간마다 실시하여 적정 수의 세포를 유지하였다.
건조된 톳을 80% 에탄올에 24시간 동안 침지시킨 후 환류 냉각시키면서 80℃ 수욕상에서 3시간씩 3회 반복 추출한 후 감압 추출 농축장치(EYELA, Japan)로 에탄올 추출물을 얻었다. 에탄올 추출물을 증류수에 현탁하고, 분액깔때기에서 dichloromethane, ethyl acetate, butanol, water를 순차적으로 계층 분획한 뒤 여과 후 회전진공농축기로 45℃에서 감압 농축하여 각각의 분획물을 얻었다(Fig. 1).
7% formalin으로 10분간 고정하고 60% isopropanol을 이용하여 세척한 다음 Oil Red O solution을 처리하여 실온에서 20분 간 염색하였다. 염색 후 Oil Red O solution을 제거하고 증류수로 4회 세척한 다음 염색된 세포를 위상차 현미경을 이용하여 관찰하였다. 또한 정량적 분석을 위하여 100% isopropanol을 이용하여 지방을 추출한 후 96 well plate에 200 μl씩 옮겨서 ELISA reader로 500 nm에서 흡광도를 측정하였고 대조군의 흡광도 값에 대한 백분율로 나타내었다.
각 PCR 산물들의 양적 차이를 확인하기 위하여 1X TAE buffer로 1% agarose gel을 만들고 well 당 각각의 primer에 해당하는 PCR 산물에 DNA gel loading solution을 섞어서 loading 한 후 100 V에서 전기영동을 하였다. 전기영동으로 DNA 분리가 끝난 gel을 ethidium bromide (EtBr, Sigma-Aldrich)을 이용하여 염색한 후 UV 하에서 확인하였으며, housedeeping 유전자인 glyceraldegyde-3-phosphate dehydrogenase (GAPDH)를 internal control로 사용하였다.
톳 추출물 처리에 의한 3T3-L1 지방전구세포의 분화 및 droplet 생성 정도를 확인하기 위하여 세포 배양용 6 well plate에 3T3-L1 지방전구세포를 분주하여 confluent 상태까지 배양한 후 톳 추출물을 적정농도로 희석 처리하면서 분화를 유도하였다. 분화가 끝난 후 톳 추출물 처리농도에 따른 분화 및 droplet 생성 정도를 도립 현미경을 이용하여 200배의 배율로 관찰하였다.
대상 데이터
(Santa Cruz, CA, USA) 및 Cell Signaling Technology (Beverly, Ma, USA)에서 구입하였다. Immunoblotting을 위해 2차 항체로 사용된 peroxidase-labeled donkey anti-rabbit 및 peroxidase-labeled sheep anti-mouse immunoglobulin은 Amersham Life Science Corp. (Arlington Heights, IL, USA)에서 구입하였다. 또한 3T3-L1 지방전구세포의 분화를 위하여 사용된 insulin, dexamethasone 및 IBMX와 지방세포 내 triglyceride (TG) 생성을 확인하기 위하여 사용된 Oil Red O는 Sigma-Aldrich (St.
mRNA 발현 양 분석을 위하여 사용된 Bioneer (Taejeon, Korea)에서 구입한 primer 염기서열은 Table 1에 나타내었으며, 단백질 분석을 위하여 사용된 PPARγ, C/EBPα, C/EBPβ 및 actin 항체는 Santa Cruz Biotechnology Inc. (Santa Cruz, CA, USA) 및 Cell Signaling Technology (Beverly, Ma, USA)에서 구입하였다.
(Arlington Heights, IL, USA)에서 구입하였다. 또한 3T3-L1 지방전구세포의 분화를 위하여 사용된 insulin, dexamethasone 및 IBMX와 지방세포 내 triglyceride (TG) 생성을 확인하기 위하여 사용된 Oil Red O는 Sigma-Aldrich (St. Luis, MO, USA)에서 구입하였다.
본 실험에 사용된 톳은 2009년 기장군에서 채집된 것으로, 추출물을 얻기 위하여 흐르는 물로 24시간 동안 세척하여 염분과 불순물을 제거하고 깨끗한 물로 수 회 세척한 후 그늘에서 건조시켜 사용하였다. 건조된 톳을 80% 에탄올에 24시간 동안 침지시킨 후 환류 냉각시키면서 80℃ 수욕상에서 3시간씩 3회 반복 추출한 후 감압 추출 농축장치(EYELA, Japan)로 에탄올 추출물을 얻었다.
실험에 사용된 3T3-L1 지방전구세포는 90%의 Dulbecco‘s Modified EaDCRT Media (DMEM, Gibco BRL, Grand Island, NY, USA), 10%의 bovine calf serum (BCS, Gibco BRL) 및 1%의 penicillin 및 streptomycin (Gibco BRL)이 포함된 배지를 사용하여 37℃, 5% CO2 조건 하에서 배양하였다.
데이터처리
5 mg/ml 농도의 tetrazolium bromide salt (MTT, Amresco, Solon, OH, USA)를 200 μl씩 분주하고 2시간 동안 CO2 incubator에서 배양시킨 다음 배지와 MTT 시약을 깨끗하게 제거하고 DMSO를 1 ml 씩 분주하여 well에 생성된 formazan을 모두 녹인 후 96 well plate에 200 μl씩 옮겨서 ELISA reader(Molecular Devices, Sunnyvale, CA, USA)로 540 nm에서 흡광도를 측정하였다. 각 세포에 대한 독성은 각각의 대조군의 평균 흡광도 값을 구하여 평균 흡광도 값에 대한 백분율로 나타내었다.
각 실험군의 분석 항목별 통계의 유의성은 Student t-test를 이용하여 p<0.05 수준에서 검증하였다.
모든 실험 결과는 Statistical Package for the Social Sciences(SPSS) 통계 프로그램을 이용하여 평균(mean) ± 표준편차(S.D.)로 나타냈다.
성능/효과
따라서 본 연구에서는 3T3-L1 지방전구세포가 지방세포로의 분화과정에 나타나는 lipid droplet 생성에 톳 분획물이 어떠한 영향을 미치는지를 확인하기 위하여 각각의 분획물을 적정 농도로 처리하여 분화를 유도한 후 Oil Red O 염색 전후로 구분하여 lipid droplet 생성정도를 관찰하였다. Fig. 3 및 4에서 볼 수 있듯이 톳 분획물을 처리하지 않고 분화를 유도하였을 경우에 세포질 내 lipid droplet의 형성이 활발하게 유발되었으며, 톳 분획물 처리에 의하여 lipid droplet의 형성이 전체적으로 현저히 억제되는 것을 확인하였는데, 특히 WFHF 처리군에서 lipid droplet 억제 현상이 강하게 나타났다.
Fig. 6에 나타난 바와 같이 분화유도인자인 insulin, dexamethasone 및 IBMX를 처리하여 분화를 유발하였을 경우 PPARγ, C/EBPα 및 C/EBPβ의 발현이 현저하게 증가하는 것으로 나타났으며, 이러한 분화유도 과정에서 여러 종류의 톳 분획물들을 처리하였을 경우 100 μg/ml의 농도보다 200 μg/ml의 처리군에서 PPARγ, C/EBPα 및 C/EBPβ의 발현이 mRNA 및 단백질 수준에서 감소하였으며, 특히 WFHF 처리군에서 PPARγ, C/EBPα 및 C/EBPβ의 발현이 현저하게 감소되는 것을 확인할 수 있었다.
2에 나타낸 바와 같다. 결과에서 알 수 있듯이 WFHF 및 EAFHF 분획물 처리군의 경우 전체적으로 생존율의 변화가 거의 나타나지 않은 반면에 BFHF, EEHF 및 CFHF 분획물 처리군의 경우에는 세포증식 변화율이 증가하는 경향을 보였다. 이상의 결과를 살펴볼 때 3T3-L1 지방전구세포에서 250 μg/ml 이하의 톳 분획물들에 의한 세포독성은 거의 나타나지 않는 것으로 나타났다.
따라서 본 연구에서는 3T3-L1 지방전구세포에 각각의 톳 분획물을 처리하였을 경우 유발되는 TG의 생성억제 효과를 직접 확인한 결과, Fig. 5에 나타난 바와 같이 정상배지에서 분화된 지방세포에 비교해서 WFHF 100 μg/ml 및 200 μg/ml 처리군에서 각각 26.8%와 42.6%의 TG 생성 억제효과가 나타났다.
또한 BFHF, EAFHF, EEHF 및 CFHF 200 μg/ml 처리군의 경우에는 각각 13%, 18%, 17.4% 및 23.7%의 TG 생성 억제효과를 보였다.
7%의 TG 생성 억제효과를 보였다. 이상의 결과를 살펴 볼 때 다섯 종류의 톳 분획물 모두 TG 생성 억제효과가 있는 것으로 나타났고, 특히 WFHF의 TG 생성 억제효과가 큰 것으로 나타났다.
이상의 결과를 살펴볼 때 3T3-L1 지방전구세포에서 250 μg/ml 이하의 톳 분획물들에 의한 세포독성은 거의 나타나지 않는 것으로 나타났다.
6에 나타난 바와 같이 분화유도인자인 insulin, dexamethasone 및 IBMX를 처리하여 분화를 유발하였을 경우 PPARγ, C/EBPα 및 C/EBPβ의 발현이 현저하게 증가하는 것으로 나타났으며, 이러한 분화유도 과정에서 여러 종류의 톳 분획물들을 처리하였을 경우 100 μg/ml의 농도보다 200 μg/ml의 처리군에서 PPARγ, C/EBPα 및 C/EBPβ의 발현이 mRNA 및 단백질 수준에서 감소하였으며, 특히 WFHF 처리군에서 PPARγ, C/EBPα 및 C/EBPβ의 발현이 현저하게 감소되는 것을 확인할 수 있었다. 이상의 결과를 살펴볼 때 다섯 종류의 톳 분획물 중, 특히 WFHF 처리군이 3T3-L1 지방전구세포에서 adipogenic transcription factor인 PPARγ, C/EBPα 및 C/EBPβ의 발현을 효과적으로 억제하여 lipid droplet 및 TG 생성을 감소시킴으로서 지방세포로의 분화를 억제시킨다는 것을 알 수 있었다.
질의응답
핵심어
질문
논문에서 추출한 답변
톳은 바다의 어느 부분에 서식하는가?
또한 해조류는 소화율이 낮아서 열량원으로서의 가치는 적지만 포만감과 통변을 조절하는 효과 뿐 만 아니라 필수아미노산 및 불포화지방산의 함량이 높으며, 수용성 다당류로 구성되어 있는 식이섬유소가 다량으로 함유되어 있으므로 면역력 증강, 항산화, 항돌연변이, 항혈액응고 및 항암 효과와 함께 인체에서의 지방 대사 완화에 중요한 역할을 하는 것으로 보고되어 있다[14,18]. 이러한 해조류 중에서 갈조식물문(Heterokontophyta), 모자반과(Sargassaceae)에 속하는 다년생 해조류인 톳(Hizikia fusiforme)은 평균 수면에서 저조선 약 30 cm 위쪽의 조간대 하부에 서식하며, 20-100 cm까지 성장한다. 다른 해조류에 비해 톳은 칼슘, 철, 요오드 같은 무기질, 비타민 등이 풍부하고 지방 함량이 낮으며, 필수아미노산 함량과 불포화지방산의 함량이 높다.
비만은 일반적으로 어떻게 유발된다고 알려져 있는가?
따라서 이러한 비만억제를 위하여 세포 내 지방의 축적을 예방하거나 축적된 지방을 분해하도록 자극하는 방안에 대한 연구가 최근 많은 관심을 끌고 있다. 일반적으로 비만은 지방전구세포의분화와 같은 adipogenesis (지방세포 분화) 과정을 통하여 새롭게 생성되는 지방세포의 비대 및 과형성에 의한 지방조직의 축적에 의하여 유발되는 것으로 알려져 있다[1,6]. 지방세포의 비대는 음식물에 포함되어 있는 triglyceride의 축적에 의하여 유발되며, 지방세포의 과형성은 세포증식 및 분화에 의해서 유발되는 것으로 알려져 있다[15].
본 연구에서 lipid droplet 생성에 톳 분획물이 어떠한 영향을 미치는지를 알아본 실험 결과는 어떠한가?
Fig. 3 및 4에서 볼 수 있듯이 톳 분획물을 처리하지 않고 분화를 유도하였을 경우에 세포질 내 lipid droplet의 형성이 활발하게 유발되었으며, 톳 분획물 처리에 의하여 lipid droplet의 형성이 전체적으로 현저히 억제되는 것을 확인하였는데, 특히 WFHF 처리군에서 lipid droplet 억제 현상이 강하게 나타났다.
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