$\require{mediawiki-texvc}$

연합인증

연합인증 가입 기관의 연구자들은 소속기관의 인증정보(ID와 암호)를 이용해 다른 대학, 연구기관, 서비스 공급자의 다양한 온라인 자원과 연구 데이터를 이용할 수 있습니다.

이는 여행자가 자국에서 발행 받은 여권으로 세계 각국을 자유롭게 여행할 수 있는 것과 같습니다.

연합인증으로 이용이 가능한 서비스는 NTIS, DataON, Edison, Kafe, Webinar 등이 있습니다.

한번의 인증절차만으로 연합인증 가입 서비스에 추가 로그인 없이 이용이 가능합니다.

다만, 연합인증을 위해서는 최초 1회만 인증 절차가 필요합니다. (회원이 아닐 경우 회원 가입이 필요합니다.)

연합인증 절차는 다음과 같습니다.

최초이용시에는
ScienceON에 로그인 → 연합인증 서비스 접속 → 로그인 (본인 확인 또는 회원가입) → 서비스 이용

그 이후에는
ScienceON 로그인 → 연합인증 서비스 접속 → 서비스 이용

연합인증을 활용하시면 KISTI가 제공하는 다양한 서비스를 편리하게 이용하실 수 있습니다.

배추 작물에 이원적 전사유도 시스템 도입을 위한 조기 검증방법 확립
Establishment of Early Verification Method for Introduction of the Binary Trans-activation System in Chinese Cabbage (Brassica rapa L. ssp. Pekinensis) 원문보기

원예과학기술지 = Korean journal of horticultural science & technology, v.31 no.1, 2013년, pp.95 - 102  

김수윤 (국립원예특작과학원 채소과) ,  유희주 (가톨릭대학교 생명과학과) ,  김정호 (국립원예특작과학원 채소과) ,  조명철 (국립원예특작과학원 채소과) ,  박미희 (국립원예특작과학원 채소과)

초록
AI-Helper 아이콘AI-Helper

이원적 전사유도 시스템(binary trans-activation system)은 도입유전자의 발현을 조절하는 기작(mechanism) 중에 하나로, 목적 유전자의 발현이 전사활성 인자를 가지고 있는 식물체와의 교배를 통해서만 발현되는 시스템이다. 본 연구에서는 이원적 전사유도 시스템을 원예 작물의 우수한 유전자원 및 신품종 보호 방법으로 이용하고자, 배추에서 이 시스템의 기능을 검정하였다. 배추작물에서 이원적 전사유도 시스템의 이용가능성을 검정하기 위하여 activator construct(35SLhGBart)와 reporter construct(pOpGUS1300)를 작성하였고 공동형질전환방법으로 배추에 형질전환하였다. 두 종류의 카세트가 도입된 형질전환체는 항생제를 이용하여 선발하였으며, 재분화된 신초의 GUS 유전자 발현으로 이 시스템의 활성을 확인하였다. 또한 이 시스템을 조직 특이적으로 유도하기 위하여 애기장대의 자성 배우체 특이적 프로모터를 이용하여 activator construct(795LhGBart)를 작성하여 애기장대에 형질전환 하였다. 공동형질전환된 애기장대는 자성 배우체에서 조직 특이적인 발현을 나타냈다. 이러한 결과는 이원적 전사유도 시스템이 목적유전자의 발현을 배추의 $F_1$ 종자에서 선택적으로 유도하는 방법으로써 우수한 유전자원 및 신품종 보호에 이용될 수 있다는 것을 보여주는 것이라고 생각된다.

Abstract AI-Helper 아이콘AI-Helper

Binary trans-activation (pOp/LhG4) system is one of the regulatory systems of transgene expression. The target gene expression is achieved by crossing the reporter plants with an activator in this system. In this study, we used the features of this system in Chinese cabbage as a way to protect genet...

주제어

AI 본문요약
AI-Helper 아이콘 AI-Helper

* AI 자동 식별 결과로 적합하지 않은 문장이 있을 수 있으니, 이용에 유의하시기 바랍니다.

문제 정의

  • , 2006). 그러므로 본 연구에서는 배추 작물의 불임성 소재 개발과 우수한 유전자원 및 신품종 보호를 위해 이원적 전사유도 시스템의 기능을 공동형질전환 방법을 통해 조기 검정하고자 하였다. 또한 자성 배우체 특이적 발현 프로모터를 이원적 전사유도 시스템에 도입하여 조직 특이적으로 발현을 유도하는 이원적 전사유도 시스템의 기능을 검정하고자 하였다.
  • 그러므로 본 연구에서는 배추 작물의 불임성 소재 개발과 우수한 유전자원 및 신품종 보호를 위해 이원적 전사유도 시스템의 기능을 공동형질전환 방법을 통해 조기 검정하고자 하였다. 또한 자성 배우체 특이적 발현 프로모터를 이원적 전사유도 시스템에 도입하여 조직 특이적으로 발현을 유도하는 이원적 전사유도 시스템의 기능을 검정하고자 하였다.
본문요약 정보가 도움이 되었나요?

질의응답

핵심어 질문 논문에서 추출한 답변
공동형질전환이란? 이러한 방법으로 이 시스템의 기능을 검정하는 것은 긴 시간이 필요하므로 조기에 검정할 수 있는 새로운 방법이 요구된다. 공동형질전환은 형질전환을 위해 2개 이상의 T-DNA를 이용하는 방법으로 서로 다른 위치에 도입된 T-DNA는 멘 델의 유전 법칙에 따라 독립적으로 분리하게 된다(Park et al., 2004).
이원적 전사유도 시스템이란? 이원적 전사유도 시스템(binary trans-activation system) 은 식물의 성장과 분화, 번식과 같은 기본 생존에 관련한 연 구를 위한 형질전환체 생산기술로 각각 독립된 reporter construct와 activator construct가 하나의 시스템으로 작동된다(Moore et al., 1998).
이원적 전사유도 시스템에서 LhG4 유전자는 무엇으로 구성되어 있는가? , 1998). Reporter construct의 pOp 프로모터 는 35S 프로모터의 lac operator의 반복 염기서열로 이루어 져 있으나 고유한 전사 활성이 없으며, activator construct의 activator, LhG4 유전자는 yeast의 GAL4 단백질의 변형체로 서 전사유도 도메인과 lac repressor와 친화성이 높은 DNA 결합부위로 구성되어 있다. pOp 프로모터의 상위 부분은 전 사 활성 인자를 특이적으로 인식하는 DNA 결합부위를 가 지고 있어 결합 부위에 activator가 결합하는 방법으로 유전 자의 발현을 제어한다(Fig.
질의응답 정보가 도움이 되었나요?

참고문헌 (30)

  1. Baroux, C., R. Blanvillain, and P. Gallois. 2001. Paternally inherited transgenes are down-regulated but retain low activity during early embryogenesis in Arabidopsis. FEBS Lett. 509:11-16. 

  2. Block, M.D., D. Debrouwer, and T. Moens. 1997. The development of a nuclear male sterility system in wheat. Expression of the barnase gene under the control of tapetum specific promoters. Theor. Appl. Genet. 95:125-131. 

  3. Drews, G.N. and R. Yadegari. 2002. Development and function of the angiosperm female gametophyte. Annu. Rev. Genet. 36:99-124. 

  4. Dutt, M., Z.T. Li, S.A. Dhekney, and D.J. Gray. 2008. A co-transformation system to produce transgenic grapevines free of marker genes. Plant Sci. 175:423-430. 

  5. Gleave, A.P. 1992. A versatile binary vector system with a T-DNA organisational structure conducive to efficient integration of cloned DNA into the plant genome. Plant Mol. Biol. 20: 1203-1207 

  6. Goldberg, R.B., T.P. Beals, and P.M. Sanders. 1993. Anther development: Basic principles and practical applications. Plant Cell 5:1217-1229. 

  7. Gowik, U., J. Burscheidt, M. Akyildiz, U. Schlue, M. Koczor, M. Streubel, and P, Westhoff. 2004. cis-Regulatory elements for mesophyll-specific gene expression in the C4 plant Flaveria trinervia, the promoter of the C4 phosphoenolpyruvate carboxylase gene. Plant Cell 16:1077-1090. 

  8. Jefferson, R.A., T.A. Kavanagh, and M.W. Bevan. 1987. GUS fusions: $\beta$ -glucuronidase as a sensitive and versatile gene fusion marker in higher plants. Plant Cell Physiol. 6:3901-3907. 

  9. Kang, B.K. and Y.D. Park. 2001. Effect of antibiotics and herbicide on Shoot regeneration from cotyledon and hypocotyl explants of Chinese cabbage. Kor. J. Hort. Sci. Technol. 19:17-21. 

  10. Kim, K.H., J.E. Lee, S.H. Ha, B.S. Hahn, J.S. Park, M.H. Lee, C.S. Jung, and Y.H. Kim. 2008. Perilla transformation using selection markers containing antibiotics and basta. J. Plant Biotechnol. 35:299-306. 

  11. Kim, S.Y., J.S. Kim, J.A. Kim, B.S. Park, J.K. Hong, Y.D. Part, and Y.H. Lee. 2011. Induction of Brassica rapa transgenic plant line showing delayed bolting time using over expression of BrFLC genes. Korean J. Intl. Agri. 23:218-225. 

  12. Koltunow, A.M., J. Truettner, K.H. Cox, M. Wallroth, and R.B. Goldberg. 1990. Different temporal and spatial gene expression patterns occur during anther development. Plant Cell 2:1201-1224. 

  13. Komari, T., Y. Hiei, Y. Saito, N. Murai, and T. Kumashiro. 1996. Vectors carrying two separate T-DNAs for co-transformation of higher plants mediated by Agrobacterium tumefaciens and segregation of transformants free from selection markers. Plant J. 10:165-174. 

  14. Korean Seed Association. 2011. Current extent of vegetable seed's exports in 2011. http://www.kosaseed.or.kr/html/mu4_sub02_view.asp?bbs_num1222. 

  15. Lee Y.H., S.B. Lee, S.C. Suh, M.O. Byun, and H.I. Kim. 2000. Herbicide-resistant cabbage (Brassica oleracea ssp. capitata) plants by Agrobacterium-meidated transformation. J. Plant Biotechnol. 2:35-41. 

  16. Lee Y.H., K.H. Chung, H.U. Kim, Y.M. Jin, H.I. Kim, and B.S. Park. 2003. Induction of male sterile cabbage using a tapetum-specific promoter from Brassica campestris L. ssp. pekinensis. Plant Cell Rep. 22:268-273. 

  17. Lexa, M,, T. Genkov, J. Malbeck, I. Machackova, and B. Brzobohaty. 2003. Dynamics of endogenous cytokinin pools in tobacco seedlings: A modeling approach. Ann Bot. 91: 585-597. 

  18. McCormac, A.C., M.R. Fowler, D.F. Chen, and M.C. Elliott. 2001. Efficient co-transformation of Nicotiana tabacum by two independent T-DNAs, the effect of T-DNA size and implications for genetic separation. Transgenic Res. 10:143-155. 

  19. Mariani, C., M.D. Beuckeleer, J. Truettner, J. Leemans, and R.B. Goldberg. 1990. Induction of male sterility in plants by a chimaeric ribonuclease gene. Nature 347:737-741. 

  20. Meinke, D.W. 1994. Seed development in Arabidopsis, p. 253-295. In: E.M. Meyerowitz and C.R. Somerville (eds.). Arabidopsis. Cold Spring Harbor Laboratory Press, N.Y. 

  21. Moore, I., L. Galweiler, D. Grosskopf, J. Schell, and K. Palme. 1998. A transcription activation system for regulated gene expression in transgenic plants. Proc. Natl. Acad. Sci. 95:376-381. 

  22. Moore, I., M. Samalova, and S. Kurup. 2006. Transactivated and chemically inducible gene expression in plants. Plant J. 45:651-83. 

  23. Park, J., Y.K. Lee, B.K. Kang, and W.I. Chung. 2004. Co-transformation using a negative selectable marker gene for the production of selectable marker gene-free transgenic plants. Theor. Appl. Genet. 109:1562-1567. 

  24. Raz, V. and J. Ecker. 1997. Analyzing DNA: A laboratory manual. Cold Spring Harbor, New York. 

  25. Rogers, H.J., N. Bate, J. Combe, J. Sullivan, J. Sweetman, C. Swan, D.M. Lonsdale, and D. Twell. 2001. Functional analysis of cis-regulatory elements within the promoter of the tobacco late pollen gene g10. Plant Mol Biol. 45:577-585. 

  26. Sambrook. J., E.F. Fritsch, and T. Maniatis. 1989. Molecular cloning: A laboratory manual. Cold Spring Harbor Laboratory Press, N.Y. 

  27. Segal, G., R. Song, and J. Messing. 2003. A new opaque variant of maize by a single dominant RNA-interference-inducing transgene. Genetics 165:387-397. 

  28. Sreeramanan, S., M. Maziah, N.M. Rosli, M. Sariah, and R. Xavier. 2006. Particle bombardment-mediated co-transformation of chitinase and $\beta$ -1, 3 glucanase genes in Banana. Biotechnology 5:203-216. 

  29. Yamamoto, Y.T., C.G. Taylor, G.N. Acedo, C.L. Cheng, and M.A. Conkling. 1991. Characterization of cis-acting sequences regulating root-specific gene expression in tobacco. Plant Cell 3:371-382. 

  30. Yu, H.J., P. Hogan, and V. Sundaresan. 2005. Analysis of the female gametophyte transcriptome of Arabidopsis by comparative expression profiling. Plant Physiol. 139:1853-1869. 

저자의 다른 논문 :

LOADING...

관련 콘텐츠

오픈액세스(OA) 유형

FREE

Free Access. 출판사/학술단체 등이 허락한 무료 공개 사이트를 통해 자유로운 이용이 가능한 논문

저작권 관리 안내
섹션별 컨텐츠 바로가기

AI-Helper ※ AI-Helper는 오픈소스 모델을 사용합니다.

AI-Helper 아이콘
AI-Helper
안녕하세요, AI-Helper입니다. 좌측 "선택된 텍스트"에서 텍스트를 선택하여 요약, 번역, 용어설명을 실행하세요.
※ AI-Helper는 부적절한 답변을 할 수 있습니다.

선택된 텍스트

맨위로