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멧돼지 대장으로부터 Bacillus atrophaeus MPL-01의 분리 및 항진균 활성의 특성
Isolation of Bacillus atrophaeus MPL-01 from A Wild Boar and Characterization of Its Antifungal Activity 원문보기

Korean journal of microbiology = 미생물학회지, v.49 no.2, 2013년, pp.195 - 199  

윤성조 (엠피엘) ,  노재영 (단국대학교 생명과학부)

초록
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멧돼지 대장에서 MPL-01 균주를 분리하여 균주의 형태학적, 생리 생화적 특성 및 지방산 조성을 분석하여 Bacillus임을 확인하였다. 16S rRNA 유전자 서열 분석 결과 MPL-01 균주는 Bacillus atrophaeus와 거의 일치하므로(99.99%) B. atrophaeus MPL-01로 명명하였다. MPL-01 균주는 고추 탄저병을 일으키는 Colletotrichum acutatum에 대하여 가장 강한 항진균 활성을 나타내었다. 배양액의 ethyl acetate 추출액에서 항진균 활성은 물론이고 계면활성도 확인하였다. 그러므로 B. atrophaeus MPL-01은 농작물 병원성 곰팡이 제어를 위한 bio-control 개발에서 유용하게 사용될 것이다.

Abstract AI-Helper 아이콘AI-Helper

A bacterial strain MPL-01 was isolated from the large intestine of a wild boar. The strain was shown to have morphological, physiological and biochemical characteristics, fatty acids composition typical of Bacillus. The 16S rRNA gene sequence showed that the isolate formed distinct phyletic line tha...

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문제 정의

  • 본 연구는 식물 병원성 진균에 항균 활성을 나타내는 Bacillus 속을 야생멧돼지에서 분리·동정하고 식물병원균에 대한 생물농약으로서의 가능성을 알아보고자 하였다.
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질의응답

핵심어 질문 논문에서 추출한 답변
Bacillus 속이 만드는 항진균 물질은 무엇이 있습니까? 특히 Bacillus 속은 가장 많이 연구된 근권 세균으로 내생포자를 형성 보존성이 우수하고 제형화가 용이하여 화학 농약을 대체할 수 있는 주요한 미생물이며, 식물 병원균과 영양적 경쟁을 하거나, 항생물질을 생산하여 저항성을 유도한다(Punja and Utkhede, 2003). 이들이 생산하는 항진균 물질들이 다양하게 있으며 iturin (Besson et al., 1990; Maget-Dana and Peypoux, 1994), bacillomycin (Tenoux et al., 1991; Eshita et al., 1995), mycosubtilin (Peypoux et al., 1986; Besson and Michel, 1990), surfactin 등 약 10여 종류가 보고 되고 있다. 주요 생산균들로는 B.
미생물에 의한 생물학적 방제의 장점은? , 2002; Jang and Kim, 2011). 미생물에 의한 생물학적 방제는 환경 친화성, 낮은 독성, 저렴한 비용, 높은 선별성 및 특이성 등 여러 가지 장점을 가지고 있다(Tuleva et al., 2002).
항진균 물질을 만드는 Bacillus 속은 무엇이 있습니까? , 1986; Besson and Michel, 1990), surfactin 등 약 10여 종류가 보고 되고 있다. 주요 생산균들로는 B. subtilis, B. cereus, B. polymixa, B. amyloliquefaciens, B. thuringiensis 등이 있다. 이들은 생물계면활성제(biosurfactant)로 양친매성 물질이며 농업, 화장품, 의약품, 세제, 식품, 환경복원 등에 많이 이용되고 있다.
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참고문헌 (17)

  1. Besson, F., Hourdou, M.L., and Michel, G. 1990. Studies on the biosynthesis of iturin, an antibiotic of Bacillus subtilis, and a lipopeptide containing beta-hydroxy fatty acids. Biochim. Biophys. Acta. 1036, 101-106. 

  2. Besson, F. and Michel, G. 1990. Mycosubtilins B and C: minor antibiotics from mycosubtilin producer Bacillus subtilis. Microbios 62, 93-99. 

  3. Bodour, A.A. and Miller-Maier, R.M. 1998. Application of a modified drop-collapse technique for surfactant quantitation and screening of biosurfactant producing microorganisms. J. Microbiol. Methods 32, 273-280. 

  4. Chun, J. and Bae, K.S. 2000. Phylogenetic analysis of Bacillus subtilis and related taxa based on partial gyrA gene sequences. Antonie van Leeuwenhoek 78, 123-127. 

  5. Eshita, S.M., Roberto, N.H., Beale, J.M., Mamiya, B.M., and Workman, R.F. 1995. Bacillomycin Lc, a new antibiotic of the iturin group: isolations, structures, and antifungal activities of the congeners. J. Antibiot. 48, 1240-1247. 

  6. Hotta, K. 1996. Mechanism of multiple aminoglycoside resistance of kasugamycin-producing Streptomyces kasugaensis MB273 : involvement of two types of acetyltransferases in resistance to astromicin group antibiotics. J. Antibiot. (Tokyo) 49, 682-688. 

  7. Jang, Y.L. and Kim, Y.H. 2011. Biocontrol efficacies of Bacillus species against Cylindrocarpon destructans causing ginseng root rot. Plant Pathol. J. 27, 333-341. 

  8. Kermanshahi, R.K. and Peymanfar, S. 2012. Isolation and identification of Lactobacilli from cheese, yoghurt and silage by 16S rDNA gene and study of bacteriocin and biosurfactant production. Jundishapur J. Microbiol. 5, 528-532. 

  9. Larsen, S.H., Berry, D.M., Paschal, J.W., and Gilliam, J.M. 1989. 5-Hydroxymethyl blasticidin S and blasticidin S from Streptomyces setonii culture A 83094. J. Antibiot. 42, 470-471. 

  10. Maget-Dana, R. and Peypoux, F. 1994. Iturins, a special class of pore-forming lipopeptides: biological and physicochemical properties. Toxicology 87, 151-174. 

  11. Nakamura. L.K. 1989.Toxonomic relationship of black-pigmented Bacillus subtilis strains and a proposal for Bacillus atrophaeus sp. nov.. Int. J. Syst. Bacteriol. 39, 295-300. 

  12. Peypoux, F., Pommier, M.T., Marion, D., Ptak, M., Das, B.C., and Michel, G. 1986. Revised structure of mycosubtilin, a peptidolipid antibiotic from Bacillus subtilis. J. Antibiot. 39, 636-641. 

  13. Tenoux, I., Besson, F., and Michel, G. 1991. Studies on the antifungal antibiotics: bacillomycin D and bacillomycin D methylester. Microbios 67, 187-193. 

  14. Tuleva, B.K., Ivanov, G.R., and Christovam N.E. 2002. Biosurfactant production by new Pseudomonas putida strain. Z. Naturforsch. 57, 356-360. 

  15. Yu, G., Sinclair, J.B., Hartman, G.L., and Bertagnolli, B.L. 2002. Production of iturin A by Bacillus amyloliquefaciens suppressing Rhizoctonia solani. Soil Biol. Biochem. 34, 955-963. 

  16. Punja, Z.K. and Utkhede, R. 2003. Using fungi and yeasts to manage vegetable crop disease. Trends Biotechnol. 21, 400-407. 

  17. Zaragoza, A., Aranda, F.J., Espuny, M.J., Teruel, J.A., Marques, A., Manresa, A., and Ortiz, A. 2010. Hemolytic activity of a bacterial trehalose lipid biosurfactant produced by Rhodococcus sp.: evidence for a colloid-osmotic mechanism. Langmuir 26, 8567-8572. 

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