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청미래덩굴 잎 및 뿌리 추출물의 항산화, ${\\alpha}$-Glucosidase 억제 및 항염증 활성비교
Comparison of antioxidant, ${\\alpha}$-glucosidase inhibition and anti-inflammatory activities of the leaf and root extracts of Smilax china L. 원문보기

Journal of nutrition and health, v.46 no.4, 2013년, pp.315 - 323  

김경곤 (강원대학교 생명건강공학과) ,  강윤환 (강원대학교 강원웰빙특산물산업화지역혁신센터) ,  김대중 (강원대학교 강원웰빙특산물산업화지역혁신센터) ,  김태우 (강원대학교 강원웰빙특산물산업화지역혁신센터) ,  최면 (강원대학교 생명건강공학과)

초록
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본 연구에서 청미래덩굴 잎과 뿌리의 물추출물을 이용하여 총 폴리페놀과 플라보노이드의 함량을 측정한 결과 잎 추출물에서 더 많은 함량이 확인되었으며, DPPH 및 ABTS radical 소거능, 환원력 측정을 통한 항산화 활성을 비교한 결과도 폴리페놀과 플라보노이드함량 측정 결과와 마찬가지로 잎에서 높은 활성을 명확하게 확인할 수 있었다. 그리고 청미래덩굴 추출물의 항당뇨 효능에 대한 최초의 시도로서 ${\alpha}$-glucosidase 활성억제능을 측정한 결과 뿌리추출물에서는 효소의 억제력을 확인할 수 없었지만 잎 추출물에서는 농도 및 반응시간의 증가에 따라 억제력이 증가하여 물 추출물 상태에서 1 mg/mL 기준으로 acarbose의 ${\alpha}$-glucosidase 활성 억제능과 비교하여 71.8%의 활성을 관찰할 수 있었다. 또한 당뇨와 염증의 관련성이 대두되는 최근의 연구 상황에서 청미래덩굴 잎 추출물의 IL-$1{\beta}$, IL-6, iNOS, COX-2의 mRNA 발현 억제작용을 확인함으로써 염증반응의 개선 가능성도 제시할 수 있었다. 결과적으로 청미래덩굴 잎 추출물의 항산화능, ${\alpha}$-glucosidase 활성억제능 및 항염증효능을 확인함으로써 neutraceuticals 소재로서의 개발가능성을 증명하였고 추가 연구의 필요성을 제시하였다.

Abstract AI-Helper 아이콘AI-Helper

This study was conducted in order to compare the biological activities of leaf and root water extracts of Smilax china L. (SC) by measuring the total polyphenol and flavonoid contents, anti-oxidant activity, inhibitory effect on ${\alpha}$-glucosidase, and anti-inflammatory gene expressio...

주제어

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문제 정의

  • 2,34) 이에 본 실험에서는 청미래덩굴 잎과 뿌리의 항산화 활성, α-glucosidase 활성억제 및 항염증 효능을 확인하고 비교함으로써 청미래덩굴의 활용가능성을 검토하고 활용범위를 넓히고자 본 실험을 진행하였다.
  • 본 연구에서는 청미래덩굴의 생리학적인 유용성이 확인되었음에도 아직 다양한 생리활성에 대한 구체적인 연구결과가 미흡한 것을 확인한 바 청미래덩굴 잎 및 뿌리의 물추출물을 이용하여 항산화 활성, α-glucosidase 활성저해 효과 및 염증인자 발현 저해 효과를 확인함으로써 청미래덩굴의 neutraceuticals 소재로서의 가능성을 확인하고자 한다.
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질의응답

핵심어 질문 논문에서 추출한 답변
당뇨병은 어떻게 분류하는가? 당뇨병은 췌장 β 세포의 파괴성 병변에 의해 인슐린이 결핍되어 생기는 제1형 당뇨병과 인슐린 분비 저하와 인슐린 저항성으로 인해 생기는 제2형 당뇨병으로 분류한다.13,14) 최근연구에서 이런 췌장 β 세포의 기능장애가 산화적 스트레스에 의해 발생하는 것이 알려졌다.
청미래덩굴은 무엇인가? 청미래덩굴은 우리나라뿐만 아니라 중국, 일본 등의 야산에 널리 분포하는 활엽덩굴성 관목으로 한의학에서 그 뿌리를 토복령이라 하여 위암, 식도암, 직장암, 식욕부진 등 소화기질환에 민간요법으로 사용하였으며, 이뇨, 체력증강, 통풍, 류마티즘 등에도 효과가 있는 것으로 보고되었다.1) 그리고 청미래덩굴의 잎은 항균력과 항산화력에 대한 보고가 다수 있으며, 특히 추출물에서 α-tocopherol 수준의 항산화력을 갖는 kaempferol-7-O-α-L-rhamnopyranoside와 kaempferol 3,7-O-α-L-dirhamnopyranoside가 분리된 바 있어 그 활용 가치가 충분한 것으로 평가되고 있다.
α-glucosidase inhibitor에는 acarbose, voglibose 및 miglitol이 판매되고 있으나 이들 제제를 장기 복용할 경우 일부 환자에게서 복부팽만감, 구토, 설사 등 부작용이 나타날 수 있는데, 이러한 부작용을 줄이기 위한 어떤 연구가 진행되고 있는가? 13) 그중 α-glucosidase inhibitor에는 acarbose, voglibose 및 miglitol이 판매되고 있으나 이들 제제를 장기 복용할 경우 일부 환자에게서 복부팽만감, 구토, 설사 등 부작용이 나타날 수 있어 사용이 제한된다.17,18) 이러한 부작용을 줄이고 장기복용이 가능하며 안전한 α-glucosidase inhibition 활성을 통한 혈당조절 효능의 천연물을 찾기 위해 지속적인 천연소재 탐색연구가 진행되고 있다.
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참고문헌 (47)

  1. Song HS, Park YH, Jung SH, Kim DP, Jung YH, Lee MK, Moon KY. Antioxidant activity of extracts from Smilax china root. J Korean Soc Food Sci Nutr 2006; 35(9): 1133-1138 

  2. Cha BC, Lee EH. Antioxidant activities of flavonoids from the leaves of Smilax china Linne. Korean J Pharmacogn 2007; 38 (1): 31-36 

  3. Jeong HJ, Lee SG, Lee EJ, Park WD, Kim JB, Kim HJ. Antioxidant activity and anti-hyperglycemic activity of medicinal herbal extracts according to extraction methods. Korean J Food Sci Technol 2010; 42(5): 571-577 

  4. Kim EJ, Choi JY, Yu M, Kim MY, Lee S, Lee BH. Total polyphenols, total flavonoid contents, and antioxidant activity of Korean natural and medicinal plants. Korean J Food Sci Technol 2012; 44(3): 337-342 

  5. Park MH, Choi C, Bae MJ. Effect of polyphenol compounds from persimmon leaves (Diospyros kaki folium) on allergic contact dermatitis. J Korean Soc Food Sci Nutr 2000; 29(1): 111-115 

  6. Zhu M, Gong Y, Yang Z, Ge G, Han C, Chen J. Green tea and its major components ameliorate immune dysfunction in mice bearing Lewis lung carcinoma and treated with the carcinogen NNK. Nutr Cancer 1999; 35(1): 64-72 

  7. Lee JM, Park JH, Chu WM, Yoon YM, Park E, Park HR. Antioxidant activity and alpha-glucosidase inhibitory activity of stings of Gleditsia sinensis extracts. J Life Sci 2011; 21(1): 62-67 

  8. Park YM, Jeong JB, Seo JH, Lim JH, Jeong HJ, Seo EW. Inhibitory effect of red bean (Phaseolus angularis) hot water extracts on oxidative DNA and cell damage. Korean J Plant Resour 2011; 24(2): 130-138 

  9. Shin JG, Park JW, Pyo JK, Kim MS, Chung MH. Protective effects of a ginseng component, maltol (2-Methyl-3-Hydroxy-4- Pyrone) against tissue damages induced by oxygen radicals. Korean J Ginseng Sci 1990; 14(2): 187-190 

  10. Kwon JW, Lee EJ, Kim YC, Lee HS, Kwon TO. Screening of antioxidant activity from medicinal plant extracts. Korean J Pharmacogn 2008; 39(2): 155-163 

  11. Rubin RR, Peyrot M. Quality of life and diabetes. Diabetes Metab Res Rev 1999; 15(3): 205-218 

  12. Gregg EW, Cadwell BL, Cheng YJ, Cowie CC, Williams DE, Geiss L, Engelgau MM, Vinicor F. Trends in the prevalence and ratio of diagnosed to undiagnosed diabetes according to obesity levels in the U.S. Diabetes Care 2004; 27(12): 2806-2812 

  13. Lee SH, Lee JK, Kim IH. Trends and perspectives in the development of antidiabetic drugs for type 2 diabetes mellitus. Korean J Microbiol Biotechnol 2012; 40(3): 180-185 

  14. Lee EB, Na GH, Ryu CR, Cho MR. The review on the study of diabetes mellitus in oriental medicine journals. J Korean Orient Med 2004; 25(3): 169-179 

  15. Taylor-Fishwick DA. NOX, NOX who is there? The contribution of NADPH oxidase one to beta cell dysfunction. Front Endocrinol (Lausanne) 2013; 4: 40 

  16. Sasaki S, Inoguchi T. The role of oxidative stress in the pathogenesis of diabetic vascular complications. Diabetes Metab J 2012; 36(4): 255-261 

  17. Tsujimoto T, Shioyama E, Moriya K, Kawaratani H, Shirai Y, Toyohara M, Mitoro A, Yamao J, Fujii H, Fukui H. Pneumatosis cystoides intestinalis following alpha-glucosidase inhibitor treatment: a case report and review of the literature. World J Gastroenterol 2008; 14(39): 6087-6092 

  18. Kihara Y, Ogami Y, Tabaru A, Unoki H, Otsuki M. Safe and effective treatment of diabetes mellitus associated with chronic liver diseases with an alpha-glucosidase inhibitor, acarbose. J Gastroenterol 1997; 32(6): 777-782 

  19. Sarkar D, Fisher PB. Molecular mechanisms of aging-associated inflammation. Cancer Lett 2006; 236(1): 13-23 

  20. Fierro IM, Serhan CN. Mechanisms in anti-inflammation and resolution: the role of lipoxins and aspirin-triggered lipoxins. Braz J Med Biol Res 2001; 34(5): 555-566 

  21. Higuchi M, Higashi N, Taki H, Osawa T. Cytolytic mechanisms of activated macrophages. Tumor necrosis factor and L-argininedependent mechanisms act synergistically as the major cytolytic mechanisms of activated macrophages. J Immunol 1990; 144(4): 1425-1431 

  22. Lowenstein CJ, Snyder SH. Nitric oxide, a novel biologic messenger. Cell 1992; 70(5): 705-707 

  23. Sunyer T, Rothe L, Kirsch D, Jiang X, Anderson F, Osdoby P, Collin-Osdoby P. Ca2+ or phorbol ester but not inflammatory stimuli elevate inducible nitric oxide synthase messenger ribonucleic acid and nitric oxide (NO) release in avian osteoclasts: autocrine NO mediates Ca2+-inhibited bone resorption. Endocrinology 1997; 138(5): 2148-2162 

  24. Kim JY, Jung KS, Jeong HG. Suppressive effects of the kahweol and cafestol on cyclooxygenase-2 expression in macrophages. FEBS Lett 2004; 569(1-3): 321-326 

  25. Zarghi A, Arfaei S. Selective COX-2 inhibitors: a review of their structure-activity relationships. Iran J Pharm Res 2011; 10(4): 655-683 

  26. McDaniel ML, Kwon G, Hill JR, Marshall CA, Corbett JA. Cytokines and nitric oxide in islet inflammation and diabetes. Proc Soc Exp Biol Med 1996; 211(1): 24-32 

  27. Chung MJ, Walker PA, Brown RW, Hogstrand C. ZINC-mediated gene expression offers protection against H2O2-induced cytotoxicity. Toxicol Appl Pharmacol 2005; 205(3): 225-236 

  28. Kim JM, Baek JM, Kim HS, Choe M. Antioxidative and antiasthma effect of Morus bark water extracts. J Korean Soc Food Sci Nutr 2010; 39(9): 1263-1269. 

  29. Moreno MI, Isla MI, Sampietro AR, Vattuone MA. Comparison of the free radical-scavenging activity of propolis from several regions of Argentina. J Ethnopharmacol 2000; 71(1-2): 109-114 

  30. Blois MS. Antioxidant determination by the use of a stable free radical. Nature 1958; 181: 1199-1200 

  31. Re R, Pellegrini N, Proteggente A, Pannala A, Yang M, Rice-Evans C. Antioxidant activity applying an improved ABTS radical cation decolorization assay. Free Radic Biol Med 1999; 26(9-10): 1231-1237 

  32. Arabshahi-Delouee S, Urooj A. Antioxidant properties of various solvent extracts of mulberry (Morus indica L.) leaves. Food Chem 2007; 102(4): 1233-1240 

  33. Ryu HW, Lee BW, Curtis-Long MJ, Jung S, Ryu YB, Lee WS, Park KH. Polyphenols from Broussonetia papyrifera displaying potent $\alpha$ -glucosidase inhibition. J Agric Food Chem 2010; 58(1): 202-208 

  34. Ko MS, Yang JB. Antioxidant and antimicrobial activities of Smilax china leaf extracts. Korean J Food Preserv 2011; 18(5): 764-772 

  35. Kim YS, Lee SJ, Hwang JW, Kim EH, Park PJ, Jeong JH. Antiinflammatory effects of extracts from Ligustrum ovalifolium H. leaves on RAW 264.7 macrophages. J Korean Soc Food Sci Nutr 2012; 41(9): 1205-1210 

  36. Kang HW. Antioxidant and anti-inflammatory effect of extracts from Flammulina velutipes (Curtis) Singer. J Korean Soc Food Sci Nutr 2012; 41(8): 1072-1078 

  37. Yoo KH, Jeong JM. Antioxidative and antiallergic effect of persimmon leaf extracts. J Korean Soc Food Sci Nutr 2009; 38(12): 1691-1698 

  38. Oh YL. Protective effect of Smilax china L. extract on the cytotoxicity induced by chromium of environmental pollutant. J Korean Soc Plants People Environ 2011; 14(1): 29-34 

  39. Lee SI, Lee YK, Kim SD, Kang YH, Suh JW. Antioxidative activity of Smilax china L. leaf teas fermented by different strains. Korean J Food Nutr 2012; 25(4): 807-819 

  40. Pryor WA, Houk KN, Foote CS, Fukuto JM, Ignarro LJ, Squadrito GL, Davies KJ. Free radical biology and medicine: it's a gas, man! Am J Physiol Regul Integr Comp Physiol 2006; 291(3): R491-R511 

  41. Matough FA, Budin SB, Hamid ZA, Alwahaibi N, Mohamed J. The role of oxidative stress and antioxidants in diabetic complications. Sultan Qaboos Univ Med J 2012; 12(1): 5-18 

  42. Pratt DE, Miller EE. A flavonoid antioxidant in Spanish peanuts (Arachia hypogoea). 1984; 61(6): 1064-1067 

  43. Joo SY. Antioxidant activities of medicinal plant extracts. J Korean Soc Food Sci Nutr 2013; 42(4): 512-519 

  44. Bischoff H. The mechanism of alpha-glucosidase inhibition in the management of diabetes. Clin Invest Med 1995; 18(4): 303- 311 

  45. Hwang JY, Han JS. Inhibitory effects of Sasa borealis leaves extracts on carbohydrate digestive enzymes and postprandial hyperglycemia. J Korean Soc Food Sci Nutr 2007; 36(8): 989-994 

  46. Xu ML, Wang L, Xu GF, Wang MH. Antidiabetes and angiotensin converting enzyme inhibitory activity of Sonchus asper (L) hill extract. Korean J Pharmacogn 2011; 42(1): 61-67 

  47. Solinas G, Vilcu C, Neels JG, Bandyopadhyay GK, Luo JL, Naugler W, Grivennikov S, Wynshaw-Boris A, Scadeng M, Olefsky JM, Karin M. JNK1 in hematopoietically derived cells contributes to diet-induced inflammation and insulin resistance without affecting obesity. Cell Metab 2007; 6(5): 386-397 

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