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배추 SSR 마커를 이용한 무의 육성 계통 및 수집종의 유전적 다양성 분석
Analysis of the Genetic Diversity of Radish Germplasm through SSR Markers Derived from Chinese Cabbage 원문보기

원예과학기술지 = Korean journal of horticultural science & technology, v.31 no.4, 2013년, pp.457 - 466  

박수형 (국립원예특작과학원 채소과) ,  최수련 (충남대학교 원예학과) ,  이정수 (국립원예특작과학원 채소과) ,  뉴엔 반단 (충남대학교 원예학과) ,  김성길 (전남대학교 식물생명공학과) ,  임용표 (충남대학교 원예학과)

초록
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국립원예특작과학원에서는 무의 품종 육성 기반 확장을 위해 다양한 무 품종을 수집하여 재배한 후 원예적 특성이 양호한 자원을 선발하여 계통으로 육성하는 작업을 1980년대 초반부터 지속적으로 수행하여 왔다. 유전적 다양성은 작물의 개량에 있어 주요 소재이기에 자원의 수집을 통한 변이의 확보는 매우 중요하다. 자원 수집과 더불어 확보한 자원간의 다양성 정도를 측정함으로써 자원의 활용도를 높이고 자원확보의 방향성을 재고하는데 도움을 줄 수도 있다. 이런 연구를 위하여 이미 배추에서 개발된 SSR 마커를 이용하여 계통분류학상 가까운 관계에 있는 무에 적용이 가능한지를 검토하기 위해 본 실험을 실시하였다. 무 육성 계통과 도입자원 중에서 44점의 보유 유전자원을 재료로 하여 22종의 선발한 마커유전형을 분석하였으며, 이 중에서 'cnu_m139'와 'cnu_m289' 등이 다형성 검증에 유용한 마커임을 확인할 수 있었다. 무 유전자원의 유전적 유연관계 분석 결과, 무는 지역적 유래에 따라 차이를 보였으며, 품종 육성 연도에 따라 일부 그룹을 형성함을 알 수 있어, 최근 육성되고 있는 품종들과 기존의 품종과의 차이를 보여주는 것으로 나타났다. 또한 각 그룹에 해당하는 계통들의 특성을 제시함으로써 차후 연구결과의 활용도를 높이고자 하였다. 비교적 적은 수의 마커로 분석했음에도 30년 이전에 육성종과 근래에 육성한 2000년대에 육성종을 구분하고, 한 그룹 내에서 비교적 형태적으로 유사한 개체들이 그룹을 구성하는 대부분을 나타낸 결과는 SSR 마커가 무에 성공적으로 적용 가능함을 시사한다고 할 수 있다. 본 연구결과를 통해 배추에서 개발한 SSR 마커를 이용하여 무에 대한 유전적 다양성 및 유연관계 분석(유전자원 식별)에 적용이 가능한 것으로 판단된다.

Abstract AI-Helper 아이콘AI-Helper

Since the early 1980s, the National Institute of Horticultural & Herbal Sciences has been breeding and collecting diverse radish breeds to select those samples with better horticultural characteristics, to ultimately expand and develop as good radish produce. Genetic diversity is a crucial factor in...

주제어

AI 본문요약
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문제 정의

  • 국립원예특작과학원에서는 무의 품종 육성 기반 확장을 위해 다양한 무 품종을 수집하여 재배한 후 원예적 특성이 양호한 자원을 선발하여 계통으로 육성하는 작업을 1980년대 초반부터 지속적으로 수행하여 왔다. 30년 이전에 육성된 계통과 최근 육성된 계통 및 수집된 품종은 유전적으로 거리가 있을 것으로 예상되나 보다 객관적 지표를 설정하고자 하였다.
  • 44개 식물재료 집단에서 다형성(polymorphism)을 나타내는 유전자좌의 유전자형(genotype)을 분석하여 품종간 유전적 유연관계를 분석하기 위한 기본 자료로 사용하였다. PCR 수행결과 밴드가 증폭된 것은 1, 증폭되지 않은 것은 0으로 기록하여 자료를 변환하여 기초자료 행렬을 작성하고 이를 NTSYS-pc 프로그램을 이용하여 유전적 유연관계를 분석하였다.
  • , 2011). 따라서 이미 발표된 배추의 SSR 마커가 계통분류학상 가까운 관계에 있는 무에 적용이 가능한지를 검정하고자 하였다. 실험재료로는 70년대 초반부터 국립원예특작과학원에서 수집해온 육성 계통과 도입자원을 이용하였다.
  • 무 유전자원을 SSR(simple sequence repeats) 마커를 이용하여 유전적 다양성을 분석하고자 하였다. 유전적 다양성은 작물의 개량에 있어 주요 소재이기에 자원의 수집을 통한 변이의 확보하는 것이 매우 중요하다.
  • 총 50쌍의 프라이머를 이용한 다형성 검정에서 재현성을 가지고 뚜렷하게 증폭되며 다형성을 나타내는 프라이머쌍을 선발하여 유전적 다양성(genetic diversity)을 알아보기 위해 사용하였다.
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질의응답

핵심어 질문 논문에서 추출한 답변
유전자원 평가의 전통적인 방법은 무엇인가? 유전자원의 평가는 재배종의 형태에 따른 검정과 분자 생물학적인 방법으로 나뉜다. 유전자원 평가의 전통적인 방법은 형태적 또는 생태적인 특성을 검정하거나 생화학적인 차이, 즉 동위효소 변이, 저장 단백질 변이 등을 이용하는 것이다. 또한 분자 생물학적인 방법으로는 RAPD(random amplified polymorphic DNA), AFLP(amplified fragment length polymorphism), SSR(simple sequence repeats) 등의 다양한 분자마커를 이용하여 생육 환경에 영향을 받지 않고 유전자원의 유전적 다양성 및 유연관계 분석을 수행하고 있다(Powell et al.
무란 무엇인가? 무(Raphanus sativus L.)는 배추과(십자화과)에 속한 작물로 한국에서는 10대 주요 채소 중 하나이며, 동북 아시아권역에서 국, 탕, 나물 및 초절임의 형태로 다양하게 소비되는 채소이다. 국내 채소종자 시장 및 해외 수출에서도 작목별 매출액 비교에서 고추, 양배추 다음으로 높았다(Ministry for food, agriculture, forestry and fisheries, 2012).
작목별 매출액을 비교할 때, 국내 채소종자 시장 및 해외 수출에서 무는 어떠한 작물 다음으로 높은가? )는 배추과(십자화과)에 속한 작물로 한국에서는 10대 주요 채소 중 하나이며, 동북 아시아권역에서 국, 탕, 나물 및 초절임의 형태로 다양하게 소비되는 채소이다. 국내 채소종자 시장 및 해외 수출에서도 작목별 매출액 비교에서 고추, 양배추 다음으로 높았다(Ministry for food, agriculture, forestry and fisheries, 2012). 그러나 농업에서 중요한 채소 작물임에도 불구하고 배추, 양배추, 유채 등의 다른 배추과 작물에 비해 유전학적, 분자생물학적인 연구가 미진하다.
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참고문헌 (40)

  1. Barrett, B.A. and K.K. Kidwell. 1998. AFLP-based genetic diversity assessment among wheat cultivars from the Pacific Northwest. Corp Sci. 38:1261-1271. 

  2. Choi, W.J., S.A. Lee, S.M. Yoo, S.S. Lee, J.H. Kang, and H.C. Ko. 2008. Genetic relationship by RAPD analysis of Korean wild radish and local cultivars in radish. Kor. J. Hort. Sci. Technol. 26:427-431. 

  3. Chowdhury, M.A., B. Vandenberg, and T. Warkentin. 2002. Cultivar identification and genetic relationship among selected breeding lines and cultivars in chickpea (Cicer arietinum L.). Euphytica 127:317-325. 

  4. Cooke, R.J., G.M.M. Bredencijer, M.W. Ganal, R. Peeters, P. Issac, S. Randell, J. Jacson, M.S. Roder, V. Kozun, K. Wendehake, T. Areschchenkova, M. Dijcks, D. Laboric, L. Bertrand, and B. Vosman. 2003. Assessment of the uniformity of wheat and tomato varieties at DNA microsatellite loci. Euphytica 132: 331-341. 

  5. Dillmann, C., A. Bar-Hen, D. Guerin, A. Characosset, and A. Murigneux. 1997. Comparison of RFLP and morphological distances between Zea Mays L. inbred lines. Consequences for germplasm protection purposes. Theor. Appl. Cenet. 95: 92-102. 

  6. Huh, M.K. and O. Ohnishi. 2002. Genetic diversity and genetic relationships of East Asian natural populations of wild radish revealed by AFLP. Breeding Sci. 52:79-88. 

  7. Ishii, T., Y. Xu, and S.R. McCouch. 2001. Nuclear-and chloroplast microsatellite variation in A-genome species of rice. Genome 44:658-666. 

  8. Jewell, E., A. Robinson, D. Savage, T. Erwin, C.G. Love, G.A. Lim, X. Li, J. Batley, G.C. Spangenberg, and D. Edwards. 2006. SSR Primer and SSR taxonomy tree: biome SSR discovery. Nucleic Acids Res. 34:W656-W659. 

  9. Kim, H., S.R. Choi, J. Bae, C.P. Hong, S.Y. Lee, M. Hossain, V.D. Nguyen, M. Jin, B.S. Park, J. Bang, I. Bancroft, and Y.P. Lim. 2009. Sequenced BAC anchored reference genetic map that reconciles the ten individual chromosomes of Brassica rapa. BMC Genomics 10:432-446. 

  10. Kim, J.S., T.Y. Chung, G.J. King, M. Jin, T.J. Yang, Y.M. Jin, H.I. Kim, and B.S. Park. 2006. A sequence-tagged linkage map of Brassica rapa. Genetics 174:29-39. 

  11. Kwon, S.J., D.H. Kim, M.H. Lim, Y. Long, J.L. Meng, K.B. Lim, J.A. Kim, J.S. Kim, M. Jin, H.I. Kim, S.N. Ahn, S.R. Wessler, T.J. Yang, and B.S. Park. 2007. Terminal repeat retrotransposon in miniature (TRIM) as DNA markers in Brassica relatives. Mol. Genet. Genomics 278:361-370. 

  12. Kwon, S.J., S.N. Ahn, H.C. Hong, Y.K. Kim, H.G. Hwang, H.C. Choi, and H.P. Moon. 1999. Genetic diversity of Korean japonica rice cultivars. Korean J. Breed Sci. 21:268-275. 

  13. Kwon, Y.S., J.Y. Mun, Y.S. Kwon, D.Y. Park, H.M. Yun, I.H. Song, and S.I. Seung. 2003. AFLP analysis for cultivar discrimination in radish and Chinese cabbage. Kor. J. Breed. Sci. 35:319-328. 

  14. Lefebvre, V., B. Goffinet, J.C. Chauvet, B. Caromel, P. Signoret, R. Brand, and A. Palloix. 2001. Evaluation of genetic distances between pepper inbred lines for cultivar protection purposes: comparison of AFLP, RAPD, and phenotypic data. Theor. Appl. Genet. 102:741-750. 

  15. Li, M., C. Zhang, W. Qian, and J. Meng. 2007. Genetic diversity of Brassica species revealed by amplified fragment length polymorphism and simple sequence repeat markers. Hort. Environ. Biotechnol. 48:9-15. 

  16. Li X., N. Ramchiary, S.R. Choi, D. Van Nguyen, M.J. Hossain, H.K. Yang, and Y.P. Lim. 2010. Development of a high density integrated reference genetic linkage map for the multinational Brassica rapa genome sequencing project. Theor. Appl. Genet. 53:939-947. 

  17. Lu, N., K. Yamane, and O. Ohnishi. 2008. Genetic diversity of cultivated and wild radish and phylogenetic relationships among Raphanus and Brassica species revealed by the analysis of trnK/matK sequence. Breeding Sci. 58:15-22. 

  18. Ministry for food, agriculture, forestry and fisheries (MIFAFF). 2012, Production and status of greenhouse and open-field in vegetables. MIFAFF, Gwacheon, Korea. 

  19. McCouch, S.R., X. Chen, O. Panaud, S. Temnykh, Y. Xu, Y.G. Cho, N. Huang, T. Lshii, and M.W. Blair. 1997. Microsatellite marker development, mapping and applications in rice genetics and breeding. Plant Mol. Biol. 35:89-99. 

  20. Mun, J.H., S.J. Kwon, and B.S. Park. 2010. The strategy and current status of Brassica rapa genome project. Plant Biotechnol. 37:153-165. 

  21. Mun, J.H., S.J. Kwon, T.J. Yang, Y.J. Seol, M. Jin, J.A. Kim, M.H. Lim, J.S. Kim, S. Baek, B. Choi, H.J. Yu, D.S. Kim, N. Kim, K. Lim, S.I. Lee, Y. Lim, I. Bancroft, J.H. Hahn, and B. Park. 2009. Genome-wide comparative analysis of the Brassica rapa gene space reveals genome shrinkage and differential loss of duplicated genes after whole genome triplication. Genome Biol. 10:R111.1-R111.18. 

  22. Ohsako, T., M. Hirai, and M. Yamabuki. 2010. Spatial structure of microsatellite variability within and among populations of wild radish Raphanus sativus L. var. hortensis Backer f. raphanistroides Makino (Brassicaceae) in Japan. Breeding Sci. 60:195-202. 

  23. Powell, W., C.M. Gordon, and J. Provan. 1996. Polymorphism revealed by simple sequence repeats. Trends Plant Sci. 1:215-222. 

  24. Riaz, A., G. Li, Z. Quresh, M.S. Swati, and C.F. Quiros. 2001. Genetic diversity of oilseed Brassica napus inbred lines based on sequence-related amplified polymorphism and its relation to hybrid performance. Plant Breeding 120:411-415. 

  25. Richards, R. and G.R. Sutherland. 1994. Simple repeat DNA is not replicated simply. Nat. Genet. 6:114-116. 

  26. Rohlf, E.J. 1993. NTSYS-pc: Numerical taxonomy and multivariate analysis system, version 1.80. Applied Biostatistics Inc., Setauket, New York, USA. 

  27. Sneath, P.H.A. and R.R. Sokal. 1973. Numerical taxonomy. W. H. Freeman and Company, San Francisco, USA. 

  28. Swabe, K., H. Iketani, T. Nunome, T. Kage, and M. Hirai. 2002. Isolation and characterization of microsatellite in Brassica rapa L. Theor. Appl. Genet. 104:1092-1098. 

  29. Tam, S.M., C. Mhiri, A. Vogelaar, M. Kerkveld, S.R. Pearce, and M.A. Grandbastien. 2005. Comparative analyses of genetic diversities within tomato and pepper collections detected by retrotransposon-based SSAP, AFLP and SSR. Theor. Appl. Genet. 110:819-831. 

  30. Ramchiary, N., V.D. Nguyen, X. Li, C.P. Hong, V. Dhandapani, S.R. Choi, G. Yu, Z.Y. Piao, and Y.P. Lim. 2011. Genic microsatellite markers in Brassica rapa: Development, characterization, mapping, and their utility in other cultivated and wild Brassica relatives. DNA Res. 18:305-320. 

  31. Tommasini, L., J. Bately, G.M. Arnold, R.J. Cooke, P. Monini, D. Lee, J.R. Law, C. Lowe, C. Moule, M. Trick, and K.J. Edwardw. 2003. The development of multiplex simple sequense repeat markers to complement distinctness, uniformity and stability testing of rape (Brassica napus L.) varieties. Theor. Appl. Genet. 2003:1091-1101. 

  32. Vos, P., R. Hogers, M. Bleeker, M. Reijans, T. Lee, M. Hornes, A. Friters, J. Pot, J. Paleman, M. Kuiper, and M. Zabeau. 1995. AFLP: a new technique for DNA fingerprinting Nucl. Acids Res. 23:4407-4414. 

  33. Wang, X., H. Wang, J. Wang, R. Sun, J. Wu, S. Liu, Y. Bai, J.H. Mun, I. Bancroft, F. Cheng, S. Huang, X. Li, W. Hua, J. Wang, X. Wang, M. Freeling, J.C. Pires, A.H. Paterson, B. Chalhoub, B. Wang, A. Hayward, A.G. Sharpe, B.S. Park, B. Weisshaar, B. Liu, B. Li, B. Liu, C. Tong, C. Song, C. Duran, C. Peng, C. Geng, C. Koh, C. Lin, D. Edwards, D. Mu, D. Shen, E. Soumpourou, F. Li, F. Fraser, G. Conant, G. Lassal, G.J. King, G. Bonnema, H. Tang, H. Wang, H. Belcram, H. Zhou, H. Hirakawa, H. Abe, H. Guo, H. Wang, H. Jin, I.A. Parkin, J. Batley, J.S. Kim, J. Just, J. Li, J. Xu, J. Deng, J.A. Kim, J. Li, J. Yu, J. Meng, J. Wang, J. Min, J. Poulain, J. Wang, K. Hatakeyama, K. Wu, L. Wang, L. Fang, M. Trick, M.G. Links, M. Zhao, M. Jin, N. Ramchiary, N. Drou, P.J. Berkman, Q. Cai, Q. Huang, R. Li, S. Tabata, S. Cheng, S. Zhang, S. Zhang, S. Huang, S. Sato, S. Sun, S.J. Kwon, S.R. Choi, T.H. Lee, W. Fan, X. Zhao, X. Tan, X. Xu, Y. Wang, Y. Qiu, Y. Yin, Y. Li, Y. Du, Y. Liao, Y. Lim, Y. Narusaka, Y. Wang, Z. Wang, Z. Li, Z. Wang, Z. Xiong, and Z. Zhang. 2011. The genome of the mesopolyploid crop species Brassica rapa. Nat. Genet. 43:1035-1038. 

  34. Warwick, S.I., R.K. Gugel, T. Mcdonald, and K.C. Falk. 2006. Genetic variations of Ethiopian mustard (Brassica carinata A. Braun) germ plasm in western Canada. Genetic Res. Crop Evolution 53:297-312. 

  35. Williams, J., A. Kubelik, K. Livak, J. Rafalski, and S. Tingey. 1990. DNA polymorphisms amplified by arbitrary primers are useful as genetic markers. Nucl. Acids Res. 15:6531-6535. 

  36. Yamagishi, H. and T. Terachi. 2003. Multiple origins of cultivated radishes as evidenced by a comparison of the structural variations in mitochondrial DNA of Raphanus. Genome 46:89-94. 

  37. Yamane, K. 2004. Assessment of cytoplasmic polymorphisms by PCR-RFLP of the mitochondrial orfB region in wild and cultivated radishes. Plant Breeding 123:141-144. 

  38. Yamane, K., N. Lu, and O. Ohnishi. 2005. Chloroplast DNA variations of cultivated radish and its wild relatives. Plant Sci. 168:627-634. 

  39. Zhang, J.F., Y. Lu, H. Adragna, and E. Hughs, 2005. Genetic improvement of New Mexico acala cotton germ plasm and their genetic diversity. Crop Sci. 45:2363-2373. 

  40. Zhao, J., X. Wang, B. Deng, P. Lou, J. Wu, R. Sun, Z. Xu, J. Vromans, M. Koornneef, and G. Bennema. 2005. Genetic relationship within Brassica rapa as inferred from AFLP fingerprints. Theor. Appl. Genet. 110:1301-1314. 

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