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다양한 버섯 수확 후 배지로부터 목질섬유소 분해효소의 최적 추출 및 특성
Optimal Extraction and Characteristics of Lignocellulytic Enzymes from Various Spent Mushroom Composts 원문보기

한국균학회지 = The Korean journal of mycology, v.41 no.3, 2013년, pp.160 - 166  

임선화 (한경대학교 미래융합기술대학원) ,  이윤혜 (경기도농업기술원 버섯연구소) ,  강희완 (한경대학교 미래융합기술대학원)

초록
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느타리버섯(Pleurotus ostreatus), 큰느타리버섯(Pleurotus eryngii), 팽이버섯(Flammulina velvtipes)과 노루궁뎅이버섯(Hericium erinaceum), 느티만가닥버섯(Lyophyllum ulmarium), 노랑느타리버섯(Pleurotus cornucopiae), 잣버섯(Lentinus lepideus), 버들송이버섯(Agrocybe cylindracea)의 수확 후 배지 (spent mushroom compost, SMC)로부터 ${\alpha}$-amylase (EC 3.2.1.1), lignin peroxidase (EC 1.11.1.14), laccase (EC 1.10.3.2), xylanase (EC 3.2.1.8), ${\beta}$-xylosidase (EC 3.2.1.37), ${\beta}$-glucosidase (EC 3.2.1.21) 및 cellulase (EC 3.2.1.4)의 활성을 추출 buffer별로 조사하였다. 물과 0.25% Triton X-100가 효소 회수율이 높았으며 xylanase는 팽이버섯 SMC에서 153 U/g으로 가장 많이 생산되었으며 laccase는 큰느타리버섯 SMC에서 8.0 U/g로 가장 높았다. ${\alpha}$-amylase (3.6 U/g)와 cellulase (3.2 U/g)는 버들송이 SMC에서 가장 많이 생산되었다. 큰느타리버섯 SMC 추출물의 laccase와 cellulase 활성은 상용 효소와 필적하는 효소활성을 보여 산업적 이용 가능성을 시사하였다.

Abstract AI-Helper 아이콘AI-Helper

Recovery of ${\alpha}$-amylase (EC 3.2.1.1), lignin peroxidase (EC 1.11.1.14), laccase (EC 1.10.3.2), xylanase (EC 3.2.1.8), ${\beta}$-xylosidase (EC 3.2.1.37), ${\beta}$-glucosidase (EC 3.2.1.21) and cellulase (EC 3.2.1.4) from spent mushroom composts (SMCs) of Pleu...

주제어

AI 본문요약
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문제 정의

  • 본 연구에서는 노루궁뎅이버섯(H. erinaceum), 느티만가닥버섯(L. ulmarium), 노랑느타리버섯(P. cornucopiae), 잣버섯(L. lepideus), 버들송이버섯(A. cylindracea)버섯 등의 SMC로부터 다양한 추출 buffer를 이용하여 목질분해효소의 회수율을 조사하였으며 이의 산업적 이용성을 검토하였다.
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질의응답

핵심어 질문 논문에서 추출한 답변
담자균류은 수목에 기생하며 어떤 과정을 통해 목질 분해 효소를 영양원으로 이용하는가? 담자균류는 수목에 기생하며 xylanase, cellulase, lignin 분해효소 등 목질분해효소를 다량 분비하여 고분자의 목질섬유소를 수용성 저분자의 당으로 분해하여 균사의 영양 흡수과정을 거처 영양원으로 이용한다(Scarse, 1995). 버섯의 인공재배는 발전을 거듭하여 아시아, 유럽, 미주 등 전세계 각 지역에서 다양한 버섯이 식용으로 재배되고 있다.
버섯의 인공재배에 사용되는 배지 재료는 어떤 목질 섬유소로 구성되어 있는가? 특히, 버섯은 친환경 기능성 농산물로서 항암, 항산화 효과 등 약리기능 및 건강보호 효과가 커서 건강식품으로도 수요가 증가하고 있다. 버섯인공 재배 시에 사용되는 배지재료는 면실박, 비트펄프, 콘코브, 톱밥 등 농업 잔여 폐자원이 주로 이용되고 있으며 이들은 cellulose, hemicellulose, lignin 등 목질섬유소로 구성되어 있다. 느타리버섯의 인공재배는 봉지 또는 병 재배형태로 종균을 접종한 후 30~40일의 균사 생장 과정과 10여일의 자실체 유도 과정을 거쳐 자실체를 수확하는데, 자실체를 수확하고 남은 배지를 수확 후 배지(spent mushroom compost, 이하 SMC로 약칭)라고 한다.
국내에서 SMC(수확 후 배지)는 어떻게 활용되고 있는가? 따라서 SMC 내에는 균사체가 생산하는 목질분해효소가 다량 잔존해 있을 것으로 추정된다. 국내에서는 SMC를 동물사료, 퇴비 등으로 활용하고 있으며 일부 농가에서는 배지로 가공하여 재사용하기도 한다. 버섯 SMC로부터 효소추출연구는 표고버섯, 여름느타리, 양송이, 표고버섯, 느타리버섯, 팽이버섯 등에서 수행되었다(Ayala et al.
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참고문헌 (22)

  1. Ayala, M., Gonzalez-Munoz, S. S., Pinos-Rodriguez, J. M., Vazquez, C., Meneses, M., Loera, O. and Mendoza, G. D. 2011. Fibrolytic potential of spent compost of Agaicus birsporus to degrade forages for ruminants. African J. Microbiol. Res. 5: 643-650. 

  2. Ball, A. S and Jacson, A. M. 1995. The recovery of lignocelluloseo- degrading enzymes from spent mushroom compost. Biores. Technol. 54:311-314. 

  3. Bradford, M. M. 1976. A rapid and sensitive method for the quantitation of microgram quantities of protein utilizing the principle of protein-dye binding. Analytic. Biochem. 72: 248-254. 

  4. Claus, H., Faber, G. and Konig, H. 2002. Redox mediated decolorization of synthetic dyes by fungal laccases. Appl. Microb. Biotech. 59: 672-678. 

  5. Couto, S. R. and Toca Herrera, J. L. 2006. Industrial and biotechnological applications of laccases: A review. Biotechnol. Adv. 24: 500-513. 

  6. Devi, V. M., Inbathamizh, L., Ponnu, T. M., Premalatha, S and Divya, M. 2012. Dye decolorization using fungal laccase. Bull. Environ. Pharmacol. Life Sci. 1:67-71. 

  7. Eggert, C, U., Temp, J. F., Dean and Eriksson, K. E. 1996. A fungal metabolite mediates degradation of nonphenolic lignin structures and synthetic lignin by laccase. FEBS Lett. 391:144-148. 

  8. Field, J. A., E. De Jong, G. Feijoo-Costa, and DeBont, J. A. M. 1993. Screening for ligninolytic fungi applicable to the biodegradation of xenobiotics. Trends Biotechnol. 11:44-49. 

  9. Gasecka, M., Drzewiecka, K., Stachowiak, J., Siwulski, M., Golin'ski, P., Sobieralski, K. and Golak, I. 2012. Degradation of polycyclic aromatic hydrocarbons (PAHs) by spent mushroom substrates of Agaricus bisporus and Lentinula edodes. Acta Scientiarum Polonorum - Hortorum Cultus 11:39-46. 

  10. Gianluca, B., Chiara L., Giovanni, M., Patrizia, R., Carla, P., Luciano, V. and Francesco, G. 2008. Molecular cloning and heterologous expression of a laccase gene from Pleurotus eryngii in free and immobilized Saccharomyces cerevisiae cells. Appl. Microbiol. Biotechnol. 79:731-741. 

  11. Guo, M., Lu, F., Pu, J., Bai, D. and Du, L. 2005. Molecular cloning of the DNA encoding laccase from Trametes versicolor and heterologous expression in Pichia methanolica. Appl. Microbiol. Biotechnol. 69:178-183. 

  12. Hideno, A., Aoyagi, H., Isobe, S. and Tanaka, H. 2007. Utilization of spent sawdust matrix after cultivation of Grifola frondosa as substrate for ethanol production by simultaneous saccharification and fermentation. Food Sci. Technol. Res. 13:111-117. 

  13. Ko, H. K., Park, S. H., Kim, S. H., Park, H. G and Park, W. M. 2005. Detection and recovery of hydrolytic enzymes from spent compost of four mushroom species. Folia Microbiol. 50:103-106. 

  14. Kunamneni, A., Ballesteros A., Plou, F. J. and Alcade, M. 2007. "Fungal laccases. a versatile enzyme for biotechnological applications," in Communicating Current Research and Educational Topics and Trends in Applied Microbiology, A. Mendez- Vilas, Ed., pp. 233-245, Formatex, Badajoz, Spain, 

  15. Lim,. S. H., Kim, J. K., Lee, Y. H. and Kang, H. W. 2012. Production of lignocellulytic enzymes from spent mushroom compost of Pleurotus eryngii. Kor. J. Mycol. 40: 152-158. (in Korean). 

  16. Matcham, S. E. and Wood, D. A. 1992. Purification of Agaricus bisporus extracellular laccase from mushroom compost. Biotechnol. Lett. 14: 297-300. 

  17. Ministry of Agriculture, Food and Rural Affairs, 2011. [cited 2013 sep] Available from: http://library.mafra.go.kr/skyblueimage/17767.pdf 

  18. Papinutti, L and Forchiassin, F. 2010. Adsorption and decolorization of dyes using solid residues from Pleurotus ostreatus mushroom production. Biotechnol. Bioprocess Eng. 15:1102-1109. 

  19. Saranyu, K. and Rakrudee, S. 2007. Laccase from spent mushroom compost of Lentinus polychrous Lev. and its potential for remazol brilliant blue R decolourisation. Biotechnology 6: 408-413. 

  20. Scarse, R. 1995. Cultivating mushrooms-the potential. Mycologist 9:18-19. 

  21. Singh, A. D., Abdullah N. and Vikineswary, S. 2003. Optimization of extraction of bulk enzymes from spent mushroom compost. J. Chem. Technol. Biotechnol. 78:743-752. 

  22. Shin, K, S, Oh, I. K. and Kim, C. J. 1997. Production and purification of remazol brilliant blue R. decolorizing peroxidase from the culture filtrate of Pleurotus ostreatus. Appl. Environ. Microbiol. 63:1744-1748. 

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