[논문]Aspergillus oryzae 발효 청미래덩굴잎 분말차의 관능적 품질 및 항산화능과 xanthine oxidase 및 aldehyde oxidase 저해활성

이상일; 이예경; 김순동; 양승환; 서주원

doi:10.11002/kjfp.2014.21.1.129

Aspergillus oryzae 발효 청미래덩굴잎 분말차의 관능적 품질 및 항산화능과 xanthine oxidase 및 aldehyde oxidase 저해활성
Sensory quality, antioxidant, and inhibitory activities of XO and AO of Smilax china leaf tea fermented by Aspergillus oryzae 원문보기

한국식품저장유통학회지 = Korean journal of food preservation, v.21 no.1, 2014년, pp.129 - 139

이상일 (계명문화대학교 식품영양조리학부) , 이예경 (명지대학교 생명과학정보학부) , 김순동 (명지대학교 생명과학정보학부) , 양승환 (명지대학교 생명과학정보학부) , 서주원 (명지대학교 생명과학정보학부)

초록
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A. oryzae로 발효한 청미래덩굴(Smilax china L.)잎 발효차의 적정 발효기간을 확립하고자 비 발효(NF) 및 10, 20 및 30일간 발효(F10, F20, F30)시킨 차 1% 열수추출물(1 tea bag 기준)의 색상, 관능검사 및 total polyphenol(TP), total flavonoid(TF), 전자공여능(EDA), 철환원력(FRAP), 과산화물 생성 억제능(LPOIA)을 조사하였다. 또, 체내 활성산소(ROS) 생성계 효소인 동시에 요통과 음주로 인한 간손상유도 및 이로 인한 복부비만에 직간접적으로 관여하는 xanthine oxidase(XO) 및 aldehyde oxidae(AO)의 저해활성에 미치는 영향을 조사하였다. 색상과 spectrum(400~700nm)의 변화를 조사한 결과, NF는 연한 황색을 띠는 반면 F10∼F30에서는 엷은 적색을 띠었으며 F10의 색상이 가장 선명하였다. 향(aroma)과 밝기(brightness)에 대한 기호도는 비발효차와 발효차간의 유의차를 보이지 않았으나 맛(taste)과 입에 닿는 감각(mouth feel) 및 종합적인 기호도(overall acceptability)는 F10, F20 및 F30 간의 뚜렷한 차이를 보이지 않아 발효 10일이 이상적인 발효기간이라 사료된다. TP 함량은 NF에서 41.55 mg/g(dry basis)이었으나 발효에 따라 거의 비례적으로 감소하였으며 그 감소율은 발효 10일째 24.91%, 20일째 56.92%, 30일째 64.41%를 나타내었다. TF의 함량은 NF에서 27.33 mg을 나타내었으나 발효에 점차적으로 감소하여 F10 24.30 mg/g, F20 17.32 mg/g, F30 13.22 mg/g으로 감소하였다. 그러나 TP의 감소율이 TF의 경우에 비하여 커서 TF/TP 비율(%)은 발효에 따라 증가하는 경향을 나타내었다. EDA는 NF에서는 29.01%이었으나 F10에서는 NF에 비하여 17.14%가 감소하였으며, F20 및 F30에서는 각각 18.79% 및 23.20%가 감소하였다. FRAP(${\mu}M$ $Fe^{2+}$)는 NF 4.63, F10 4.30, F20 및 F30에서는 각각 3.77 및 3.47로 발효에 따라 감소하는 경향을 보였다. LPOIA는 NF에서는 39.86%이었으나 F10의 경우는 31.92%로 NF에 비하여 19.92%가 감소하였고 F20 및 F30는 NF에 비하여 각각 23.61% 및 28.38%가 감소하였다. NF 및 F10∼30의 1% 열수추출액이 생유 및 토끼 간 조직으로부터 부분정제한 XO와 AO의 활성에 미치는 영향을 조사한 결과, XO활성에는 비발효, 발효 모두에서 뚜렷한 영향을 미치지 않았다. 그러나 AO의 활성은 비발효, 발효 관계없이 38.09∼41.70%범위로 억제하였으며, 이러한 억제는 경쟁적 저해현상에 기인되어 나타난 것으로 생각된다.

Abstract ▼ AI-Helper

This study was conducted in order to investigate the optimal fermentation periods of the Smilax china L. leaves as a fermented tea via Aspergillus oryzae for 0 (non-fermented), and 10, 20, and 30 days (NF, F10, F20, F30). It was also observed for its quality characteristics. In the color and spectrum (400~700nm) of 1% tea water extract, NF was light yellow, whereas fermented tea (F10~F30) was light red color, and the F10 among F10~F30 has the clearest color and spectrum. Furthermore, acceptabilities of aroma and brightness were insignificantly different between NF and F10~30, while the mouth feel and overall acceptabilities were insignificantly distinct among all of the fermented teas. Therefore, these results suggest that the appropriate fermentation period for tea fermentation is 10 days. On the other hand, the total polyphenol and flavonoid content in the NF was the highest among all of the fermented teas. In the antioxidant parameters, EDA (electron donating ability), FRAP (ferric reducing antioxidant power), and LPOIA (lipid peroxidation inhibitory activity) in the NF were the highest among all fermented teas. Meanwhile, the XOI (xanthine oxidase inhibitory activity) was low, as well as insignificantly different from NF and F10~F30, whereas the AOI (aldehyde oxidase inhibitory activity) was markedly higher (38.09~41.70%) by the hot water tea extract (with or without fermentation), particularly the AOI that has increased via fermentation. In conclusion, the overall antioxidant activity tended to be reduced by fermentation; however, the EDA, FRAP and LPOIA in the fermented tea for 10 days was higher than the activities during 20~30 days of fermentation. There was a similar result in the color and acceptability of fermented tea for 10 days, which was remarkably better than those of 20-30 days. Therefore, fermented tea from the leaves of Smilax china L. could be expected to be used as a functional tea without the loss of inhibitory activity of both the XO and AO via fermentation.

주제어

AI 본문요약
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문제 정의

본 연구는 청미래덩굴의 뿌리인 토복령이 통풍을 완화하고 해독작용을 한다는 많은 보고들이 있음에도 잎에 대하여는 이와 관련된 연구가 없다는 점을 고려하여 청미래덩굴잎 열수추출액이 통풍과 해독, 알코올성 간질환 유도와 비만 등에 관여하는 XO 및 AO의 활성에 미치는 영향을 조사하였다. 또한 세계적으로 비발효차에 비하여 발효차의 기호도가 높고 그 이용률이 현저하게 높음(26)을 고려하여 청미래덩굴잎의 기호성 증진을 위하여 우리나라의 전통메주 발효에 이용되는 Aspergillus oryzae로 발효시킨 후, 적정 발효기간의 설정과 발효에 따른 열수추출액의 주요 항산화 지표항목들의 변화를 조사하였다.

가설 설정

2)NS: not significant.

제안 방법

, Anyang, Korea)를 이용하여 90℃의 열수(수돗물)에 청미래덩굴잎 발효차를 1%(w/v) 농도로 하여 5분간 우려내어 50℃의 보온 통에 보관하면서 시료로 사용하였다. 관능요원은 차를 연구 교육하는 (사)우리차문화연합회의 40～60세의 여성 회원 25명으로 주 1회 4시간씩 4주간 관능항목에 대한 강도와 기호도에 대한 훈련을 행하였으며, 5주째에 4종의 시료에 대하여 향(aroma), 맛(taste), 색상 (color), 밝기(brightness) 및 입에 닿는 감각(mouth feel)에 대한 기호도와 및 종합적인 기호도(overall acceptability)를 5점 측도법(27)으로 아주 나쁘다(1점), 나쁘다(2점), 보통이다(3점), 좋다(4점), 아주 좋다(5점)로 평가하였다.
대조구는 추출액 대신에 증류수를 사용하였으며 활성도는 건조시료 g당 Fe3+이 Fe2+로 환원된 량을 µmole로 나타내었다.
3203이었다. 또, spectrophotograms은 동일 시료를 사용하여 recording spectrophometer(Cary Winuv, Varian, Seoul, Korea)를 사용하여 400～700 nm에서의 흡광도를 측정하였다.
본 연구는 청미래덩굴의 뿌리인 토복령이 통풍을 완화하고 해독작용을 한다는 많은 보고들이 있음에도 잎에 대하여는 이와 관련된 연구가 없다는 점을 고려하여 청미래덩굴잎 열수추출액이 통풍과 해독, 알코올성 간질환 유도와 비만 등에 관여하는 XO 및 AO의 활성에 미치는 영향을 조사하였다. 또한 세계적으로 비발효차에 비하여 발효차의 기호도가 높고 그 이용률이 현저하게 높음(26)을 고려하여 청미래덩굴잎의 기호성 증진을 위하여 우리나라의 전통메주 발효에 이용되는 Aspergillus oryzae로 발효시킨 후, 적정 발효기간의 설정과 발효에 따른 열수추출액의 주요 항산화 지표항목들의 변화를 조사하였다.
색상은 관능검사용의 1% 열수추출액을 시료로 하여 colorimeter(CR-200, Minolta Co., Osaka, Japan)로 밝기를 나타내는 L*값(lightness), 적색도를 나타내는 a*값(redness) 및 황색도를 나타내는 b*값(yellowness) 및 H°값(hue angle)을 측정하였다.
여기에 n-butanol 5 mL을 가하여 3,000×g로 10분간 원심분리하여 얻은 상층액의 흡광도를 532 nm에서 측정하였으며, 저해율(%)=[1-(test blank의 OD/blank의 OD)]×10 계산식에 의하여 지질과산화 저해활성을 측정하였다.
열수추출은 tea extractor(Damian Tea Co., Anyang, Korea)를 이용하여 90℃의 열수(수돗물)에 청미래덩굴잎 발효차를 1%(w/v) 농도로 하여 5분간 우려내어 50℃의 보온 통에 보관하면서 시료로 사용하였다. 관능요원은 차를 연구 교육하는 (사)우리차문화연합회의 40～60세의 여성 회원 25명으로 주 1회 4시간씩 4주간 관능항목에 대한 강도와 기호도에 대한 훈련을 행하였으며, 5주째에 4종의 시료에 대하여 향(aroma), 맛(taste), 색상 (color), 밝기(brightness) 및 입에 닿는 감각(mouth feel)에 대한 기호도와 및 종합적인 기호도(overall acceptability)를 5점 측도법(27)으로 아주 나쁘다(1점), 나쁘다(2점), 보통이다(3점), 좋다(4점), 아주 좋다(5점)로 평가하였다.
1에서와 같이 제조하였다. 즉, 4℃에서 보존중인 분말 청미래덩굴잎 1 kg에 malt extract에서 배양한 종균 100 mL를 증류수 900 mL과 혼합한 액을 골고루 섞어 25℃에서 10, 20 및 30일간 발효시켰다. 발효가 완료된 후는 polypropylene bag에 담아 121℃에서 60분간 가압멸균 하였으며, 이어서 40℃에서 건조시켜 청미래덩굴 증차를 제조하였다.
지질과산화 저해능(lipid peroxidation inhibitory activity: LPOIA)은 Banerjee 등(32)의 방법을 일부 변형하여 신선한 계란 노른자 10%(w/v)를 함유하는 50 mM Na-phosphate buffer(pH 7.4)로 균질화한 액 0.25 mL에 1% 열수추출액과 증류수를 각각 0.20 mL 및 0.55 mL을 가하였다. 여기에 70 mM FeSO₄ 용액 0.
청미래덩굴잎과 그 발효차에 의한 AO의 활성저해 현상이 어떠한 작용에 의해 나타나는지를 조사할 목적으로 비발효차(NF)와 발효차(F10)의 열수추출물(tea 300 μg/mL)을 각각 첨가한 다음 기질인 NMN의 농도를 변화시켜가면서 AO의 활성을 측정하여 LB plot 하였다(Fig. 7).

대상 데이터

발효용 균주는 한국식품연구원에서 분양받은 Aspergillus oryzae KFRI 995를 malt extract(Bacto^TM, Becton, Dickinson and Co., Sparks, MD, USA)를 사용하여 25℃에서 7일간 진탕배양하여 10⁸cells/mL로 균수를 조정하여 종균으로 사용하였다.
실험에 사용한 청미래덩굴(Smilax china L.)잎은 2012년 7월10일에 경기도 용인시의 야산에서 채취한 후 40℃의 열풍건조기에서 충분히 건조시킨 후 food mixer(HNF-1710, Hanil Electric Co., Ltd., Seoul, Korea)를 사용하여 40 mesh 입도로 분쇄하였으며, polyethylene film으로 밀봉하여 4℃에서 보관하면서 시료로 사용하였다.
청미래덩굴잎 시료는 비발효(NF), 10일 발효차(F10), 20일 발효차(F20) 및 30일 발효차(F30)의 건조 분말화한 시료의 1% 열수추출액을 사용하였다. 효소원은 Rajagopalan 등(33)의 방법에 따라 토끼의 간 조직으로부터 xanthin oxidase(XO) 및 aldehyde oxidase(AO)를 추출, ammonium sulfate 분획, 투석 및 원심분리를 행하여 부분 정제한 후 -70℃에서 보관하면서 공시하였다.

데이터처리

분석은 3회 반복으로 실험하여 평균치와 표준편차로 나타내었고, 관능검사는 관능요원 25명의 평균값과 표준편차로 나타내었다. 유의성 검증은 SPSS version 12(SPSS Inc.
유의성 검증은 SPSS version 12(SPSS Inc., Chicago, IL, USA) software package program을 이용하여 Duncan's multiple range test를 행하였다.

이론/모형

1% 열수추출액을 시료로 사용하여 polyphenol(TP) 함량은 Minussi 등(28)의 방법에 따라 열수추출액 100 μL에 2% sodium carbonate 2 mL와 50% Folin-Ciacalteu reagent 100 μL를 가한 후 720 nm에서 흡광도를 측정하였으며, gallic acid(Sigma-Aldrich Co., St. Louis, MO, USA)의 표준검량선에 의하여 함량을 산출하였다.
효소원은 Rajagopalan 등(33)의 방법에 따라 토끼의 간 조직으로부터 xanthin oxidase(XO) 및 aldehyde oxidase(AO)를 추출, ammonium sulfate 분획, 투석 및 원심분리를 행하여 부분 정제한 후 -70℃에서 보관하면서 공시하였다. XO 활성도는 Stirpe와 Della Corte(34)의 방법에 따라 기질 xanthine을 uric acid로의 전환정도를 대조구에 대한 %로 나타내었으며, AO 활성도는 Rajagopalan 등(33)의 방법에 따라 기질 NMN(N¹-methyl nicotinamide)으로부터 산화된 pyridone을 300 nm에서 흡광도를 측정한 다음 시료대신에 증류수를 첨가한 대조구에 대한 %로 나타내었다.
전자공여능(electron donating ability: EDA)은 Blois(30)의 방법에 따라 시료 1% 열수추출액 0.2 mL에 0.4 mM DPPH(1,1-diphenyl-2-picryl-hydrazyl) 용액 0.8 mL를 가하여 10분간 방치한 다음 525 nm에서 흡광도를 측정하였으며 전자공여능(%) = [1 - (시료흡광도/대조구 흡광도)] × 100의 계산식에 의하여 활성도를 산출하였다.
철 환원력(ferric reducing antioxidant power: FRAP)은 Benzie와 Strain(31)의 방법에 따라 시료의 1% 열수추출액 0.05 mL에 증류수 0.05 mL을 가하여 혼합한 후 0.3 M sodium acetate buffer(pH 3.60)와 10 mM 2,4,6-tris(2-pyridyl)-s-triazine을 함유하는 40 mM HCl 용액 및 20 mM FeCl₃ 용액(10:1:1, v/v)의 혼합용액 1.9 mL를 가하여 37℃에서 30분간 반응시킨 후 593 nm에서 흡광도를 측정하였다. 대조구는 추출액 대신에 증류수를 사용하였으며 활성도는 건조시료 g당 Fe³⁺이 Fe²⁺로 환원된 량을 µmole로 나타내었다.
Louis, MO, USA)의 표준검량선에 의하여 함량을 산출하였다. 총 flavonoid(TF) 함량은 Meda 등(29)의 방법에 따라 열수추출액 1 mL에 2% aluminum chloride 1 mL와 50% 에탄올 1 mL를 혼합하여 실온에서 10분간 반응시킨 다음 415 nm에서 흡광도를 측정하였으며, 표준품 quercetin(Sigma-Aldrich Co.)의 표준검량선에 의하여 함량을 산출하였다.
청미래덩굴잎 시료는 비발효(NF), 10일 발효차(F10), 20일 발효차(F20) 및 30일 발효차(F30)의 건조 분말화한 시료의 1% 열수추출액을 사용하였다. 효소원은 Rajagopalan 등(33)의 방법에 따라 토끼의 간 조직으로부터 xanthin oxidase(XO) 및 aldehyde oxidase(AO)를 추출, ammonium sulfate 분획, 투석 및 원심분리를 행하여 부분 정제한 후 -70℃에서 보관하면서 공시하였다. XO 활성도는 Stirpe와 Della Corte(34)의 방법에 따라 기질 xanthine을 uric acid로의 전환정도를 대조구에 대한 %로 나타내었으며, AO 활성도는 Rajagopalan 등(33)의 방법에 따라 기질 NMN(N¹-methyl nicotinamide)으로부터 산화된 pyridone을 300 nm에서 흡광도를 측정한 다음 시료대신에 증류수를 첨가한 대조구에 대한 %로 나타내었다.

성능/효과

3)Values are mean±standard deviation of 25 panels evaluated from very poor (1 point) to very good (5 points).
5와 같다. NF의 LPOIA는 39.86%이었으나 F10의 경우는 31.92%로 NF에 비하여 7.94%가 감소하였고 F20 및 F30의 경우는 NF에 비하여 각각 9.41% 및 11.31%가 감소하였다. LPOIA는 생체막에 존재하는 불포화지방산이 산화, 분해되어 독성을 나타내는 aldehyde, ketone 및 lactone 과 같은 물질의 생성(47)을 차단하는 힘으로 발효에 의하여도 잔존 활성이 비교적 높게 유지되어 산화적 스트레스로 인한 세포조직의 손상을 경감시킬 수 있는 기능성 차로서의 활용성이 기대된다.
41%를 나타내었다. TF의 함량도 TP의 경우와 같이 NF에서 27.33 mg을 나타내었으나 발효 기간이 길어짐에 점차적으로 감소하여 F10에서는 24.30 mg, F20에서는 17.32 mg, F30에서는 13.22 mg으로 감소하였다. 그러나 TP의 감소율이 TF의 감소율에 비하여 커서 F20과 F30에서의 TF/TP 비율(%)은 각각 97.
그러나 AO의 저해활성은 여타 항산화 지표들에서와는 달리 비 발효차인 NF(31.71%)에서 보다 발효차(38.80∼47.34%)에서 전반적으로 높은 경향을 보였으며, 발효 10일째인 F10에서의 저해활성은 47.34%로 NF에 비하여 49.29%가 높았다.
01%로 이러한 차이는 청미래덩굴잎의 채취시기와 채취 장소 및 처리방법에 기인되어 나타난 결과로 생각한다. 그리고 EDA를 포함한 항산화능은 polyphenol의 함량이 높을수록 높은 것으로 알려져 있으나(46), 본 실험에서는 발효기간에 따라 polyphenol의 함량이 발효 10일째는 24.91%, 20일째는 56.92%, 30일째는 64.41%로 감소함에도 불구하고 EDA와 FRAP의 감소율은 polyphenol의 감소율에는 미지지 않을 정도로 그 감소율이 비교적 낮았다. 따라서 이러한 현상은 발효에 따라 항산화능을 지니는 새로운 물질이 생성됨을 나타낸다.
67로 유의적으로 높았다. 또, 황색도를 나타내는 b^*값은 a^*값과 반대의 현상을 나타내었으며 L^*, a^* 및 b^*값 모두 발효차와 비발효차 간에는 유의적인 차이를 보였으나 발효기간에 따른 뚜렷한 차이는 없었다. 이러한 현상은 hue angle(H°)의 값에서 보여주듯이 NF는 68.
맛에 대한 기호도는 10∼30일간 발효시킨 F10, F20, F30상호간에는 유의적인 차이를 보이지 않았으나 발효시킨 경우가 발효시키지 않은 NF에 비하여는 양호한 것으로 나타났다.
2와 같다. 밝기를 나타내는 L^*값은 10～30일간 발효시킨 F10, F20 및 F30에서는 32.78～35.72로 발효시키지 않은 NF의 51.09보다 현저하게 낮았으나 적색도를 나타내는 a^*값은 이와 반대로 NF의 경우는 9.15이었으나 F10, F20 및 F30에서는 19.34～19.67로 유의적으로 높았다. 또, 황색도를 나타내는 b^*값은 a^*값과 반대의 현상을 나타내었으며 L^*, a^* 및 b^*값 모두 발효차와 비발효차 간에는 유의적인 차이를 보였으나 발효기간에 따른 뚜렷한 차이는 없었다.
실험결과, EDA는 비 발효차(NF)에는 29.01%이었으나 발효 10일째(F10)의 EDA 감소율은 17.14%였으며, 발효 20일째(F20)와 30일째(F30)의 감소율은 각각 18.79% 및 23.20%를 나타내었고 F10, F20, F30상호간의 유의차는 없었다. 그러나 FRAP는 NF 4.
3과 같다. 열수추출액으로부터 환산한 차 건물 g당의 TP 함량은 NF에서 41.55 mg이었으나 발효기간이 길어짐에 따라 거의 비례적으로 감소하였으며 그 감소율은 발효 10일째는 24.91%, 20일째는 56.92%, 30일째는 64.41%를 나타내었다. TF의 함량도 TP의 경우와 같이 NF에서 27.
29%가 높았다. 이러한 결과는 청미래덩굴 뿌리인 토복령 추출물이 XO의 활성을 억제함으로서 통풍과 관련이 있는 뇨산의 생성을 억제한다는 보고(10)와 차이를 보였으나 1% 열수추출액에서 비 발효(NF) 및 발효(F10)에서 각각 31.71% 및 47.34%의 비교적 높은 저해활성을 나타냄으로서 이와 관련되는 기능적인 효과가 기대된다.
이러한 현상은 발효에 의하여 청미래덩굴잎에 존재하는 청색을 띠는 chlorophyll이 소실되면서 F10∼F30의 열수추출액은 맑고 깨끗해 보이는 색상으로 변화된 때문으로 생각된다. 입에 닿은 감각과 종합적인 기호도도 발효시킨 경우가 발효시키지 않은 경우에 비하여 유의적으로 높은 값을 나타내었으나 F10, F20 및 F30 상호간의 차이는 없어 관능적인 평가에 의한 적정 발효기간은 10일이 적당한 것으로 사료된다. 향(aroma), 맛(taste), 밝기(brightness) 및 입에 닿는 감각(mouth feel)에 대한 기호도는 특히 발효차의 주요 품질 평가 항목으로 알려져 있다(35,36).
청미래덩굴잎의 성분에 의한 AO의 활성 억제 현상은 Vmax치에는 별다른 차이가 없었으나 Km 값에는 대조구(control), 비발효(NF) 및 발효차(F10) 열수추출물을 첨가한 경우 각각 54.27, 144.16 및 109.21 μM로 대조구에 비하여 NF 및 F10에서 현저하게 증가하고 있어, 청미래덩굴잎 성분에 의한 AO의 활성억제는 효소에 대한 기질인 NMN과의 경쟁적 저해현상을 나타내었다.

후속연구

이상의 결과, 발효에 의하여 항산화 활성과 관련이 있는 TP, TF, EDA, FRAP, LPOIA이 다소 감소하는 경향을 보이지만 한편으로는 열수로 추출한 1% 농도의 차 음료로써 음주로 인한 간 손상유도와 이로 인한 복부비만 등에 관여하는 AO의 저해활성을 높임으로서 마시는 기능성 차로서의 활용이 기대된다.

질의응답

핵심어	질문	논문에서 추출한 답변
	통풍은 어떤 질환인가?	청미래덩굴의 잎은 예로부터 망개떡 제조에 사용해 왔으나 이에 대한 연구는 항균 및 항산화능 등 단편적인 연구(6,9)가 있을 뿐이며 다른 기능적 특성에 관한 연구는 없는 실정이다. 통풍은 관절염의 원인이 되는 대사성질환의 일종으로 뇨산(uric acid)의 과잉생성 또는 배설저하로 유발된 고뇨산 혈증으로 인하여 관절부위에 뇨산의 결정체가 축적되어 발생하는 염증으로 통증을 일으키는 질환이다(10). 또한 뇨산은 purine의 최종 대사산물로 xanthine oxidoreductase(XOR)에 의하여 xanthine으로부터 생성된다.
	청미래덩굴 뿌리에 함유된 성분은?	청미래덩굴(Smilax china L.)은 우리나라 산야에 널리 분포하는 활엽덩굴성 관목으로 뿌리에는 triterpenoid saponins, flavones, stilbenes 및 organic acids 등이 함유되어 있으며(5), 한의학에서는 통풍치료(6,7)와 해독(5). 항염, 항암 및 항산화(7,8) 등의 효과가 있는 것으로 알려져 있다.
	xanthine oxidoreductase은 무엇으로 구분되는가?	또한 뇨산은 purine의 최종 대사산물로 xanthine oxidoreductase(XOR)에 의하여 xanthine으로부터 생성된다. XOR은 xanthine dehydrogenase(XD)와 xanthine oxidase(XO)로 구분되며 정상생리상태에서는 XD로 작용하나 병리적인 상태에서는 XO로 작용 한다(11). 한편, AO는 XO와 분자량이 유사하고 FAD, molybdenum 및 철-유황과 같은 보결분자단을 가지고 있으며 생체 내 작용에 있어서 상호 밀접한 관련이 있으나 기질의 특이성에는 차이가 있는 것으로 보고되고 있다(12).

참고문헌 (57)

Carr MC (2003) The emergence of the metabolic syndrome with menopause. J Clin Endocrinol Metab, 88, 2404-2411

상세보기
Halliwell B (2006) Reactive oxygen species and the central nervous system. J Neurochem, 59, 1609-1623
Jeon SM, Bok SH, Jang MK, Lee MK, Nam KT, Park YB, Rhee SJ, Choi MS (2001) Antioxidative activity of naringin and lovastatin in high cholesterol-fed rabbits. Life Sci, 69, 2855-2866

상세보기
Moon SH, Lee MK, Chae KS (2001) Inhibitory effects of the solvent fractions from persimmon leaves on xanthine oxidase activity. Korean J Food Nutr, 14, 120-125
Cheng DS, Hua XL (2006) Today's research of Smilax china. J Chin Med Mater, 29, 90-93
Song HS, Park YH, Jung SH, Kim DP, Jung YH, Lee MK, Moon KY (2006) Antioxidant activity of extracts from Smilax china root. J Korean Soc Food Sci Nutr, 35(9), 1133-1138

원문보기 상세보기
Shu XS, Gao ZH, Yang XL (2006) Anti-inflammatory and anti-nociceptive activities of Smilax china L. aqueous extract. J Ethnopharmacol, 103, 327-332

상세보기
Li YL, Gan GP, Zhang HZ, Wu HZ, Li CL, Huang YP, Liu YW, Liu JW (2007) A flavonoid glycoside isolated from Smilax china L. rhizome in vitro anticancer effects on human cancer cell lines. J Ethnopharmacol, 113, 115-124

상세보기
Choi HY (2004) Antimicrobial effect of ethanol extract of Smilax china leaf. Korean J Sanitation, 19, 22-30
Chena L, Yina H, Lanb Z, Maa S, Zhanga C, Yanga Z, Li P, Linc B (2011) Anti- hyperuricemic and nephroprotective effects of Smilax china L. J Ethnopharmacol, 135, 399-405

상세보기
Ham YK and Kim SW (2004) Protective effects of plant extract on the hepatocytes of rat treated with carbon tetrachloride. J Korean Soc Food Sci Nutr, 33, 1246-1251

원문보기 상세보기
Beedham C (1987) Molybdenum hydroxylases: biological distribution and substrate- inhibitor specificity. Prog Med Chem, 24, 85-121

상세보기
Al-Salmy HS (2001). Individual variation in hepatic aldehyde oxidase activity. IUBMB Life, 51, 249-253

상세보기
Kitamura S, Nakatani K, Sugihara K, Ohta S (1999) Strain differences of the ability to hydroxylate methotrexate in rats. Comp Biochem Physiol, 122C, 331-336
Hirao Y, Kitamura S, Tatsumi, K (1994) Epoxide reductase activity of mammalian liver cytosols and aldehyde oxidase. Carcinogenesis, 15, 739-743

상세보기
Sugihara K, Kitamura S, Tatsumi K (1996) Involvement of mammalian liver cytosols and aldehyde oxidase in reductive metabolism of zonisamide. Drug Metab Dispos, 24, 199-202

상세보기
McCrystal M, Evans B, Harvey V, Thompson P, Porter D, Baguley B (1999) Phase 1 study of the cytotoxic agent N-w2-(dimethylamino)ethylxacridine-4-carboxamide. Cancer Chemother Pharmacol, 44, 39-44

상세보기
Kundu TK, Hille R, Velayutham M, Zweier JL (2007) Characterization of superoxide production from aldehyde oxidase: an important source of oxidants in biological tissues. Arch Biochem Biophys, 460, 113-121

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Shaw S, Jayatilleke E (1990) The role of aldehyde oxidase in ethanol-induced hepatic lipid peroxidation in the rat. Biochem J, 268, 579-583

상세보기
Conklin D, Prough R, Bhatanagar A (2007) Aldehyde metabolism in the cardiovascular system. Mol Biosyst, 3, 136-150

상세보기
Weigert J, Neumeier M, Bauer S, Mages W, Schnitzbauer AA, Obed A, Grooschl B, Hartmann A, Schaaffler A, Aslanidis C, Schoolmerich J, Buechler C (2008) Small-interference RNA-mediated knock-down of aldehyde oxidase 1 in 3T3-L1 cells impairs adipogenesis and adiponectin release. FEBS Lett, 582, 2965-2972

상세보기
Mercader J, Ribot J, Murano I, Felipe F, Cinti S, Bonet ML. and Palou A (2006). Remodeling of white adipose tissue after retinoic acid administration in mice. Endocrinol, 147, 5325-5332

상세보기
Neumeier M, Weigert J, Schaaffler A, Weiss TS, Schmidl C, Buuttner R, Bollheimer C, Aslanidis C, Schoolmerich J, Buechler C (2006) Aldehyde oxidase 1 is highly abundant in hepatic steatosis and is downregulated by adiponectin and fenofibric acid in hepatocytes in vitro. Biochem Biophys Res Commun, 350, 731-735

상세보기
Pryde DC, Dalvie D, Hu Q, Jones P, Obach RS, Tran TD (2010). Aldehyde oxidase: an enzyme of emerging importance in drug discovery. J Med Chem, 53, 8441-8460

상세보기
Garattini E, Terao M (2011) Increasing recognition of the importance of aldehyde oxidase in drug development and discovery. Drug Metab Rev, 43, 374-386

상세보기
Halder B, Pramanick S, Mukhopadhyay S, Giri AK (2006) Anticlastogenic effects of black tea polyphenols theaflavins and thearubigins in human lymphocytes in vitro. Toxicol In Vitro, 20, 608-613

상세보기
Herbert A, Jeol LS (1993) Sensory evaluation practices. 2nd ed. Academic Press, New York, USA, p 68-94
Minussi RC, Rossi M, Bologna L, Cordi L, Rotilio D, Pastore GM, Duran N (2003) Phenolic compounds and total antioxidant potential of commercial wines. Food Chem, 82, 409-416

상세보기
Meda A, Lamien CE, Romito M, Millogo J, Nacoulma OG (2005) Determination of the total phenolic, flavonoid and proline contents in burkina fasan honey, as well as their radical scavenging activity. Food Chem, 91, 571-577

상세보기
Blois MS (1958) Antioxidant determination by the use of a stable free radical. Nature, 181, 1199-1200

상세보기
Benzie IF, Strain JJ (1996) The ferric reducing ability of plasma(FRAP) as a measure of antioxidant power: the FRAP assay. Anal Biochem, 239, 70-76

상세보기
Banerjee A, Dasgupta N, De B (2005) In vitro study of antioxidant activity of Syzygium cumini fruit. Food Chem, 90, 727-733

상세보기
Rajagopalan KV, Fridovich I, Handler P (1962) Hepatic aldehyde oxidase: I. Purification and properties. J Biol Chem, 237, 922-928
Stirpe F, Della Corte E (1969) The regulation of rat liver xanthine oxidase. Conversion in vitro of the enzyme activity from dehydrogenase (type D) to oxidase (type O). J Biol Chem, 244, 3855-3863
Chen YS, Liu BL, Chang YN (2010) Effects of bacterial strains on sensory quality of Pu-erh tea in an improved pile-fermentation process. J Biosci Bioehg, 109, 557-563

상세보기
Owuor PO, Obanda M, Nyirenda HE, Mphangwe NIK, Wright LP, Apostolides Z (2006) The relationship between some chemical parameters and sensory evaluations for plain black tea (Camellia sinensis) produced in Kenya and comparison with similar teas from Malawi and South Africa. Food Chem, 97, 644-653

상세보기
Lee YK, Lee SI, Kim JS, Yang SH, Lee IA, Kim SD, Suh JW (2012) Antioxidant activity of green tea fermented with Monascus pilosus. J Appl Biol Chem, 55, 19-25

원문보기 상세보기
Angayarkanni J, Palaniswamy M, Murugesan S, Swaminathan K (2002) Improvement of tea leaves fermentation with Aspergillus spp. pectinase. J Biosci Bioeng, 94, 299-303

상세보기
Zhong X, Peng L, Zheng S, Sun Z, Ren Y, Dong M, Xu A (2004) Secretion, purification, and characterization of a recombinant Aspergillus oryzae tannase in Pichia pastoris. Protein Expr Purif, 36, 165-169

상세보기
Osawa T (1994) Novel natural antioxidant for utilization in food and biological system. In Postharvest Biochemistry of Plant Food Material in the Tropics. Uritani I, Garcia VV, Mendoza EM, eds. Japan Scientific Societies Press, Tokyo, Japan. p 241-251
Angioloni A, Collar C (2011) Buckwheat the source of antioxidant activity in functional foods. J Sci Food Agric, 91, 1283-1292

상세보기
Arakawa H, Maeda M, Okubo S, Shimamura T (2004) Role of hydrogen peroxide in bactericidal action of catechin. Biol Pharm Bull, 27, 277-281

상세보기
Choi CH, Song ES, Kim SJ, Kang MH (2003) Antioxidative activities of Castanea crenata Flos. methanol extracts. Korean J Food Sci Technol, 35, 1216-1220
Kang YH, Park YK, Oh SR, Moon KD (1995) Studies on the physiological functionality of pine needle and mugwort extracts. Korean J Food Sci Technol, 27, 978-984
Ko MS, Yang JB (2011) Antioxidant and antimicrobial activities of Smilax china leaf extracts. Korean J Food Preserv, 18, 764-772

원문보기 상세보기
Torel J, Gillard J, Gillard P (1986) Antioxidant activity of flavonoids and reactivity with peroxy radical. Phytochem, 25, 383-385

상세보기
Hur SJ, Ye BW, Lee JL, Ha YL, Park GB, Joo ST (2004) Effect of conjugated linoleic acid on color and lipid oxidation of beef patties during cold storage. Meat Sci, 66, 771-775

상세보기
Yasuhara A, Akiba-Goto M, Fujishiro I, Uchida H, Uwajima T, Aisaka K (2002) Production of aldehyde oxidases by microorganisms and their enzymatic properties. J Biosci Bioeng, 94, 124-129

상세보기
Yamaguchi Y, Matsumura T, Ichida K, Okamoto K, Nishino T (2007) Human xanthine oxidase changes its substrate specificity to aldehyde oxidase type upon mutation of amino acid residues in the active site: roles of active site residues in binding and activation of purine substrate. J Biochem, 141, 513-524

상세보기
Garattini E, Fratelli M, Terao M (2009) The mammalian aldehyde oxidase gene family. Human Genomics, 4, 119-130

상세보기
Krenitsky TA (1978) Aldehyde oxidase and xanthine oxidase-functional and evolutionary relationships. Biochem Pharmacol, 27, 2763-2764

상세보기
Stoddart AM, Levine WG (1992) Azoreductase activity by purified rabbit liver aldehyde oxidase. Biochem Pharmacol, 43, 2227-2235

상세보기
Itoh K (2009) Individual and strain differences of aldehyde oxidase in the rat. Yakugaku Zasshi, 129, 1487-1493

상세보기
Dambrova M, Uhle'n S, Welch CJ, Wikberg JES (1998) Identification of an N-hydroxyguanidine reducing activity of xanthine oxidase. Eur J Biochem, 257, 178-184

상세보기
Moriwaki Y, Yamamoto T, Nasako Y, Takahashi S, Suda M, Hiroishi K, Hada T, Higashino K (1993) In vitro oxidation of pyrazinamide and allopurinol by rat liver aldehyde oxidase. Biochem Pharmacol, 46, 975-981

상세보기
Ali S, Pawa S, Naime M, Prasad R, Ahmad T, Farooqui H, Zafar H (2008) Role of mammalian cytosolic molybdenum Fe-S flavin hydroxylases in hepatic injury. Life Sci, 82, 780-788

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Rashidi MR, Nazemiyeh H (2010) Inhibitory effects of flavonoids on molybdenum hydroxylases activity. Expert Opin Drug Metab Toxicol, 6, 133-152

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표제어: PCR

동의어: Packet Collision Rate

용어 설명 출처 목록 (6)

용어 설명: PCR은 세균 특이성이 있는 primer를 이용하여 적은 수의 세균이 있을지라도 쉽게 검출할 수 있는 유용한 방법이며, 이를 이용하여 구강 내 치면세균막이나 타액에서 직접 세균을 검출할 수 있게 되었다[8].

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