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[국내논문] 액체배양 시 탄소원의 종류에 따른 외생균근균의 균사생장 특성
Mycelial Growth of Ectomycorrhizal Fungi by Different Carbon Sources in Liquid Culture 원문보기

한국균학회지 = The Korean journal of mycology, v.42 no.2, 2014년, pp.150 - 158  

전성민 (국립산림과학원 화학미생물과) ,  전하샘 (국립산림과학원 화학미생물과) ,  가강현 (국립산림과학원 화학미생물과)

초록
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4종의 외생균근균MMN 배지상에서 7종 단소원에 대한 이용능력을 조사하였다. 60일간 순수배양한 결과, 다색벚꽃버섯(KFRI 1987), 향버섯, 접시껄껄이그물버섯(KFRI 1194), 송이(KFRI 1256)는 dextrin에서 균사 생장이 우수하였다. 다색벚꽃버섯, 향버섯(KFRI 1676), 접시껄껄이그물버섯은 pectin에서 균사 생장이 가장 낮았다. 송이(KFRI 1256)를 제외한 7개의 균주들은 heteroglycan(pectin)보다 homoglycan계 탄소원(starch, dextrin)의 이용률이 더 높은 것으로 조사되었다. 균 배양 후 배지의 pH 값은 배양 전보다 최소 1.1~최대 3.0 범위까지 감소하였다. 외생균근균 배양체의 형태적 특징을 조사한 결과, 모든 탄소원 시험배지에서 백색 균사체가 우세하였으나 탄소원의 종류에 따라 황색, 갈색, 자주색 계열의 다양한 균사체가 관찰되었다. 접시껄껄이그물버섯은 4~5종류의 탄소원에서 single colony의 형태로 생장한 반면, 이외 대부분의 균주들은 6종의 탄소원에서 multiple colony의 형태로 생장하였다.

Abstract AI-Helper 아이콘AI-Helper

Four ectomycorrhizal fungi were tested for their ability to utilize seven carbon sources in modified Melin-Norkrans medium. After 60 days of mycelial culture, the highest mycelial growth in Hygrophorus russula (KFRI 1987), Sarcodon aspratus, Leccinum extremiorientale (KFRI 1194), and Tricholoma mats...

Keyword

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문제 정의

  • 본 연구에서는 식용 및 약용 가치가 있는 것으로 알려진 외생균근균을 탄소원이 서로 다른 MMN 액체배지에 각각 배양하여 균사 생장에 적합한 탄소원을 조사하고, 동일종 내 균주 간 탄소원 이용력을 비교하였으며, 균사체의 형태학적 생장 특성을 기술하였다.
  • 탄소원 시험배지에 외생균근균을 접종하여 회분식 배양(batch culture)을 할 경우, 시간이 경과함에 따라 배지 내에는 균의 각종 대사산물들이 존재하게 되며, 이들이 수소이동 농도의 변화를 가져와 균사 생장에 영향을 끼칠 것으로 생각된다. 이에 본 연구에서는 60일간 균을 배양하고 회수한 7종류의 탄소원 배지를 대상으로 final pH를 측정하여 initial pH (pH 5.5)와의 차이가 있는 지를 조사하였다.
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질의응답

핵심어 질문 논문에서 추출한 답변
기주식물이 없이도 탄소원이 풍부하면, 자실체 생산이 가능한 것은? 식물 뿌리와 상리공생관계를 유지하면서 식물이 제공하는 당류에 전적으로 의존하며 살아가는 외생균근균의 이러한 특성 때문에 과거 많은 연구자들은 기주식물 없이 실험실 내에서 자실체를 얻기란 매우 어려운 일로 여겨왔다. 그러나 졸각버섯류(Laccaria spp.)와 같은 몇몇 외생균근균들은 기주식물 없이도 실험실 내 탄소원이 풍부한 배지에서 자실체 생산이 가능함이 확인되어[1], 외생균근균의 인공재배기술 개발에 있어 균사 생장이 가장 우수한 탄소원을 찾는 일은 매우 중요하다고 볼 수 있다. 또한 유기물 분해력이 매우 높은 외생균근성 균류와 전적으로 유기물의 동화에만 의존하여 탄소원을 획득하는 진정한 의미의 부생성 균류를 구별하는 것도 중요하게 여겨지고 있다[1].
외생균근균은 어떤 생활사를 갖는가? 지구상에 존재하는 외생균근균의 수는 명확히 알려져 있지 않으나, 1990년대 초부터 외생균근에 존재하는 균류를 직접 동정하기 위해 분자마커를 이용하면서 상당수의 분류군이 알려지게 되었고 부생성 균류로 여겨지던 균류들의 일부가 외생균근성 균류(ectomycorrhizal fungi, ECM fungi)임이 밝혀지면서 전세계적으로 약 7,000~10,000종이 분포하는 것으로 추정된다[1]. 외생균근균은 식물 뿌리 내부에서 식물과 함께 살아가는 공생자인 동시에 때로는 토양에서 부생형으로 살아가는 이중적인 생활사를 갖는다[2]. 식물 뿌리와 상리공생관계를 유지하면서 식물이 제공하는 당류에 전적으로 의존하며 살아가는 외생균근균의 이러한 특성 때문에 과거 많은 연구자들은 기주식물 없이 실험실 내에서 자실체를 얻기란 매우 어려운 일로 여겨왔다.
산림으로부터 수집한 외생균근균의 순수분리나 균사 생장을 촉진하기 위해, 반합성 배지인 MMN 배지와 같은 특정 배지를 사용해야 하는 이유는? 대부분의 외생균근성 버섯들은 일반적인 버섯 배양용 인공배지에서 배양 시 균사체가 매우 느리게 자라는 특성이 있다. 따라서 산림으로부터 수집한 외생균근균의 순수분리나 균사 생장을 촉진하기 위해서는 특정 배지를 사용해야 하며, 반합성 배지인 MMN (modified Melin-Norkran) 배지[3]가 가장 널리 사용되고 있다.
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참고문헌 (13)

  1. Taylor AFS, Alexander I. The ectomycorrhizal symbiosis: life in the real world. Mycologist 2005;19:102-12. 

  2. Nehls U, Gohringer F, Wittulsky S, Dietz S. Fungal carbohydrate support in the ectomycorrhizal symbiosis: a review. Plant Biol 2010;12:291-302. 

  3. Marx DH. The influence of ectotrophic mycorrhizal fungi on the resistance of pine roots to pathogenic infections. I. Antagonism of mycorrhizal fungi to root pathogenic fungi and soil bacteria. Phytopathology 1969;59:153-63. 

  4. Harvey LM. Cultivation techniques for the production of ectomycorrhizal fungi. Biotech Adv 1991;9:13-29. 

  5. Ka KH, Jeon SM, Ryoo R, Ryu SH, Kim MG, Bak WC, Park JW, Koo CD, Eom AH. Management of genetic resources of forest microorganisms. Research report 434: Korea Forest Research Institute; 2011. 

  6. Barr J, Comini B, Elferink MO, Kuyper TW. Performance of four ectomycorrhizal fungi on organic and inorganic nitrogen sources. Mycol Res 1997;101:523-9. 

  7. Jeon SM, Ka KH. Nitrogen source-requirement and preference of ectomycorrhizal fungi in pure culture. Kor J Mycol 2013;41:149-50. 

  8. Ohta A. Ability of ectomycorrhizal fungi to utilize starch and related substrates. Mycoscience 2001;38:403-8. 

  9. Lee WY, Ahn JK, Ka KH, Park EJ. Liquid culture of mushroom mycelia and production of valuable compounds. Research report 08-07: Korea Forest Research Institute; 2008. 

  10. Kim IY, Jung GR, Han SK, Cha JY, Sung JM. Favorable condition for mycelial growth of Tricholoma matsutake. Kor J Mycol 2005;33:22-9. 

  11. Daza A, Manjon JL, Camacho M, Osa LR, Aguilar A, Santamaria C. Effect of carbon and nitrogen sources, pH and temperature on in vitro culture of several isolates of Amanita caesarea (Scop.: Fr.) Pers. Mycorrhiza 2006;16:133-6. 

  12. Terashima Y. Carbon and nitrogen utilization and acid production by media of the ectomycorrhizal fungus Tricholoma bakamatsutake in vitro. Mycoscience 1999;40:51-6. 

  13. Srivastava P, Malviya R. Sources of pectin, extraction and its applications in pharmaceutical industry-An overview. Ind J Nat Pro Res 2011;2:10-8. 

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