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문제 정의
- 하지만 골관절염 진행상태의 연골조직에서는 MMP-1, MMP-2, MMP-3, MMP-8, MMP-9 및 MMP-13 등 특정 MMPs 발현 및 활성이 증가되어 관절조직의 파괴를 가속화시킨다. 따라서 본 실험에서는 IL-1α로 염증이 유도된 토끼 연골조직 세포에서 AGE가 MMP-2 및 MMP-9 활성에 미치는 영향을 알아보고자 하였다. 이를 위해 IL-1α로 염증이 유도된 토끼 연골조직세포에 AGE를 농도별 (0, 10,25 및 50 µg/mL)로 처리하여 24시간 배양한 후, MMP-2 및 MMP-9 활성을 측정하였다.
- 것으로 알려져 있다. 따라서 본 실험에서는 MIA로 관절염이 유발된 흰쥐에서 AGE가 MMP-3, MMP-9 및 MMP-13 유전자 발현 억제에 미치는 영향을 알아보고자 하였다. Fig.
- 또한 aggrecane 연골조직에서 주로 발견되는 proteoglycan 이다. 따라서 본 실험에서는 MIA로 관절염이 유발된 흰쥐에서 AGE가 연골조직 내 collagen type 1, collagen type 2 및 aggrecan 유전자 발현에 미치는 영향을 알아보고자 하였다. 그 결과 Fig.
- 본 연구에서는 IL-1α로 염증이 유도된 토끼 연골조직세포와 monosodium iodoacetate (MIA)로 골관절염이 유도된 흰쥐를 이용하여 참당귀 추출분말(AGE)이 관절연골에 미치는 영향을 알아보고자 하였다.
- 본 연구에서는 토끼 연골로부터 primary culture된 연골조직 세포와 MIA로 골관절염이 유발된 흰쥐 실험모델을 이용하여 당귀 추출분말의 연골보호 효과를 확인하였다. 본격적인 실험에 앞서 AGE의 세포독성 유무를 확인하기 위하여 AGE를 다양한 농도 (0, 5, 10, 25, 50 µg/mL)로 처리한 후, 세포생존률을 측정하였으며, AGE를 처리한 후, MMP-2 및 MMP-9 활성을 측정하였다.
제안 방법
- 12 이를 위해 IL-1α로 염증이 유도된 토끼 연골조직 세포에 AGE를 농도별 (0, 10, 25 및 50 µg/mL)로 처리하여 1시간 배양한 후, NF-κB subunits인 p65와 I-κBα 단백질 발현을 측정하였다. Fig.
- AGE 가 COL-1 (collagen type I), COL-2 (collagen type II), aggrecan, MMP-3, MMP-9 및 MMP-13 유전자 발현에 미치는 영향을 알아보기 위하여 RT-PCR을 수행하였다. AGE를 3주간 투여된 골관절염 유발 흰쥐에서 연골을 적출하여 분쇄한 후, total RNA extraction kit (iNtRON Biotechnology Inc.
- AGE가 MMP-2 및 MMP-9 활성 억제에 미치는 영향을 알아보기 위하여 gelatin zymography를 실시하였다. 토끼 연골조직세포를 6 well plate에 1×105 cells/well로 접종하고 24시간 배양한 다음, IL-1α (5 ng/mL)를 단독 또는 다양한 농도의 AGE (0, 10, 25 및 50 µg/mL)과 함께 처리하여 24시간 배양하였다.
- AGE를 3주간 투여된 골관절염 유발 흰쥐에서 연골을 적출하여 분쇄한 후, total RNA extraction kit (iNtRON Biotechnology Inc., Korea)를 이용하여 연골조직으로부터 total RNA를 분리하였다. Total RNA를 정량하고, RT-PreMix (iNtRON Biote- chnology Inc.
- AGE의 세포내의 농도변화를 관찰하기 위하여 0, 5, 10, 25 그리고 50 µg/mL로 처리하여 추출 후, decursin 및 decursino angelate (m/z 329→211) 및 decursinol (m/z 247→229)을 LC-MS/MS로 모니터링 하였다.
- AGE의 세포독성 유무를 알아보기 위하여 Cell Counting Kit-8(Dojindo, Japan)를 이용하여 WST assay 를 실시하였다. 토끼 연골조직세포를 96 well plate에 1×104 cells/well로 접종하고 12시간 배양한 다음, AGE를 농도별 (0, 5, 10, 25 및 50 µg/mL)로 처리하여 24시간 배양하였다.
- )를 이용하여 1 µg씩 동일한 양의 각 total RNA로부터 각각의 cDNA를 합성하였다. COL- 1, COL-2, aggrecan, MMP-3, MMP-9, MMP-13 및 GAPDH 등 각각의 유전자에 해당되는 프라이머를 사용하여 94 oC 1분, 50~65 oC 45초, 72 oC 1분, 총 30 cycles 조건으로 RT-PCR을 수행하였다(Table 1).
- Decursin과 decursinol angelate 분석은 positive ion mode에서 시행하였으며 decursin과 decursinol angelate의 이온화 monitoringe m/z 329>211로 decursinol m/z 247>229 분석하였다.
- IL-1α로 염증이 유도된 토끼 연골조직세포에 AGE 를 농도별 (0, 5, 10, 25 및 50 µg/mL)로 처리하여 24 시간 배양한 후, decusinol, decursin 및 decusinol angelate를 LC-MS/MS로 분석을 시행하였다. decursinol 은 검출이 되지 않았으며, decursin과 decursinol angelate 는 각각 28.
- 항체의 비특이적 결합을 차단하기 위하여 membrane에 5% 탈지분유를 넣고 1시간 반응시킨 다음, p65 (Cell Signaling, USA), I-kBα (Cell Signaling) 및 β-actin (Sigma) 항체가 첨가된 5% 탈지분유로 교체하여 4 oC에서 12시간 반응시켰다. TBST (50 mM Tris-HCl (pH 7.5), 150 mM NaCl, 0.1% Tween-20)로 5분간 3회 세척하고 각각에 대한 이차항체로 실온에서 1시간 반응시킨 후, ECL 용액 (Amersham Pharmacia Biotech., NJ, USA)을 이용하여 각 단백질의 발현을 확인하였다.
- , Korea)를 이용하여 연골조직으로부터 total RNA를 분리하였다. Total RNA를 정량하고, RT-PreMix (iNtRON Biote- chnology Inc.)를 이용하여 1 µg씩 동일한 양의 각 total RNA로부터 각각의 cDNA를 합성하였다. COL- 1, COL-2, aggrecan, MMP-3, MMP-9, MMP-13 및 GAPDH 등 각각의 유전자에 해당되는 프라이머를 사용하여 94 oC 1분, 50~65 oC 45초, 72 oC 1분, 총 30 cycles 조건으로 RT-PCR을 수행하였다(Table 1).
- 골관절염 유발을 위하여 Zoletile과 Rumpun이 2:1 비율로 희석된 마취제를 흰쥐에 투여하여 마취시킨 후, 양쪽 무릎주변을 깨끗이 제모하고 1 mL 주사기를 이용하여 양쪽 슬관절강 내에 생리식염수로 희석된 MIA (monosodium iodoacetate, 30 mg/mL) 용액 0.1 mL을 주사하였다. 정상군 (N)은 양쪽 슬관절강 내에 각각 주사용 생리식염수 0.
- 1 mL을 주사하고, 증류수 1 mL을 3주간 매일 1회씩 경구 투여하였다. 대조군 (C)은 양쪽 슬관절강 내에 MIA 용액 0.1 mL 을 주사하여 골관절염을 유발시키면서 증류수 1 mL 을 3주간 매일 1회씩 경구 투여하였다. 처리군 (25, 50 및 100)은 양쪽 슬관절강 내에 MIA 용액 0.
- 본격적인 실험에 앞서 AGE의 세포독성 유무를 확인하기 위하여 AGE를 다양한 농도 (0, 5, 10, 25, 50 µg/mL)로 처리한 후, 세포생존률을 측정하였으며, AGE를 처리한 후, MMP-2 및 MMP-9 활성을 측정하였다. 또한 AGE의 골관절염 억제 작용기전을 알아보기 위하여 토끼 연골조직세포에서 염증반응 매개하는 것으로 알려진 NF-κB 활성화 억제기전을 확인하였다. 마지막으로 MIA로 골관절염이 유발된 흰쥐에 AGE를 3주간 경구투여한 후, 흰쥐 무릎관절 연골조직 내 COL-1, COL-2, aggrecan, MMP-3, MMP-9 및 MMP-13 유전자 발현량을 측정하였다.
- 또한 AGE의 골관절염 억제 작용기전을 알아보기 위하여 토끼 연골조직세포에서 염증반응 매개하는 것으로 알려진 NF-κB 활성화 억제기전을 확인하였다. 마지막으로 MIA로 골관절염이 유발된 흰쥐에 AGE를 3주간 경구투여한 후, 흰쥐 무릎관절 연골조직 내 COL-1, COL-2, aggrecan, MMP-3, MMP-9 및 MMP-13 유전자 발현량을 측정하였다.
- 본격적인 실험에 앞서 AGE의 세포독성 유무를 확인하기 위하여 AGE를 다양한 농도 (0, 5, 10, 25, 50 µg/mL)로 처리한 후, 세포생존률을 측정하였으며, AGE를 처리한 후, MMP-2 및 MMP-9 활성을 측정하였다. 또한 AGE의 골관절염 억제 작용기전을 알아보기 위하여 토끼 연골조직세포에서 염증반응 매개하는 것으로 알려진 NF-κB 활성화 억제기전을 확인하였다.
- 사육실에서 1주간 적응을 거친 실험동물의 체중을 측정하여 각 군당 12마리씩 5개군(정상군, 대조군, 처리군 1, 처리군 2 및 처리군 3)으로 고르게 배정하였다. 골관절염 유발을 위하여 Zoletile과 Rumpun이 2:1 비율로 희석된 마취제를 흰쥐에 투여하여 마취시킨 후, 양쪽 무릎주변을 깨끗이 제모하고 1 mL 주사기를 이용하여 양쪽 슬관절강 내에 생리식염수로 희석된 MIA (monosodium iodoacetate, 30 mg/mL) 용액 0.
- 세포 내의 decursin과 decursinol angelate의 분석을 위한 LC-MS/MS는 기기는 API 3000 ESI-MS/MS(ABSCIEX, Toronto, Canada)를 사용하였으며, HPLC 는 Agilent 1100 series (Agilent, USA)를 연결하여 system을 사용하였으며 소프트웨어는 Analyst 1.4.2(ABSCIEX, Toronto, Canada)를 사용하여 분석하였다. 분석에 이용된 컬럼은 KINETEX (2.
- 이동상 조건은 0.1% 개미산 수용액 (A)과 0.1% 개미산을 함유한 아세토니트릴 용액(B)로 구성되어 gradient 분리 방법을 사용하였다. 용매 비율은 0-4 min(30→30, B), 4-33 min(30→70, B), 33-34 min(70→70, B), 34-35 min(70→30, B), 35-40 min(30→30, B)로 설정되었으며, 유속은 0.
- 따라서 본 실험에서는 IL-1α로 염증이 유도된 토끼 연골조직 세포에서 AGE가 MMP-2 및 MMP-9 활성에 미치는 영향을 알아보고자 하였다. 이를 위해 IL-1α로 염증이 유도된 토끼 연골조직세포에 AGE를 농도별 (0, 10,25 및 50 µg/mL)로 처리하여 24시간 배양한 후, MMP-2 및 MMP-9 활성을 측정하였다. Fig.
- 1 mL을 주사하였다. 정상군 (N)은 양쪽 슬관절강 내에 각각 주사용 생리식염수 0.1 mL을 주사하고, 증류수 1 mL을 3주간 매일 1회씩 경구 투여하였다. 대조군 (C)은 양쪽 슬관절강 내에 MIA 용액 0.
- 1 mL 을 주사하여 골관절염을 유발시키면서 증류수 1 mL 을 3주간 매일 1회씩 경구 투여하였다. 처리군 (25, 50 및 100)은 양쪽 슬관절강 내에 MIA 용액 0.1 mL 을 주사하여 골관절염을 유발시키면서 AGE를 각각 25, 50 및 100 ㎎/㎏ 농도로 희석한 시험물질 1 mL 을 3주간 매일 1회씩 경구 투여하였다.
- blot analysis를 수행하였다. 토끼 연골조직 세포를 6 well plate에 1×105 cells/well로 접종하고 24시간 배양한 다음, IL-1α (5 ng/mL)를 단독 또는 다양한 농도의 AGE (0, 10, 25 및 50 µg/mL)과 함께 처리하여 1시간 배양하였다. 배양액을 버리고 세포를 수집하여 PBS (Gibco)로 2회 세척한 후, hypotonic buffer (10 mM HEPES (pH 7.
- 토끼 연골조직세포를 6 well plate에 1×105 cells/well로 접종하고 24시간 배양한 다음, IL-1α (5 ng/mL)를 단독 또는 다양한 농도의 AGE (0, 10, 25 및 50 µg/mL)과 함께 처리하여 24시간 배양하였다. 각각의 배양액을 수집하여 원심분리시켜 상등액을 취한 다음, loading buffer에 섞어 동일한 양씩 10% zymogram gel에 전기영동하였다.
- 실시하였다. 토끼 연골조직세포를 96 well plate에 1×104 cells/well로 접종하고 12시간 배양한 다음, AGE를 농도별 (0, 5, 10, 25 및 50 µg/mL)로 처리하여 24시간 배양하였다. 각 well 당 10 µL의 WST-8 용액을 첨가하여 37 oC, 5% CO2 조건에서 3 시간 반응시킨 후, ELISA reader (BIO-TEK Instruments Inc.
- 토끼 연골조직세포에 AGE를 농도별 (0, 5, 10, 25 및 50 µg/mL)로 처리하여 24시간 배양한 후, 세포생존율을 측정하였다. Fig.
- BCA protein assay reagent kit (Pierce, Rockford, IL, USA)를 이용하여 단백질 농도를 측정한 후, 20 µg씩 동일한 양의 각 단백질을 12% SDS-PAGE gel에 전기영동하고, nitrocellulose membrane(Whatman, Dassel, Germany) 상으로 이동시켰다. 항체의 비특이적 결합을 차단하기 위하여 membrane에 5% 탈지분유를 넣고 1시간 반응시킨 다음, p65 (Cell Signaling, USA), I-kBα (Cell Signaling) 및 β-actin (Sigma) 항체가 첨가된 5% 탈지분유로 교체하여 4 oC에서 12시간 반응시켰다. TBST (50 mM Tris-HCl (pH 7.
대상 데이터
- 골관절염 유발에 사용된 monosodium iodoacetate는 Sigma Chemical Co.(USA)에서, 동물마취제인 Zoletil과 Rompune 바이엘코리아(대한민국)에서 구입하였다.
- 6주령의 수컷 Sprague-Dawley계 흰쥐(오리엔트바이오, 한국) 60마리를 구입하여 충북대학교 동물사육실 내에서 온도 23±2℃, 습도 55±5%, 12시간 주기의 명암 조건에서 1주간 적응시킨 후, 실험에 사용하였다. 실험기간 동안 사료는 실험동물용 사료(삼양유지사료(주), 한국)와 멸균된 음용수를 자유로이 공급하였다.
- Desolvation gas로 질소를 사용하였으며, decursin과 decursinol angelate 분석을 위한 collision energy는 동일하게 23 eV이었으며 decusinole 17eV였으며, ESI source temperature는 400 oC로 설정하였다.
- 본 연구에 사용된 토끼 연골조직세포 (chondrocyte)는 2~3주령 New Zealand white 토끼 관절로부터 연골조직을 분리하여 1차 배양한 후, 사용하였다. 토끼 연골조직세포는 10% 우태아혈청 (fetal bovine serum, Gibco, Grand Island, NY, USA)이 포함된 DMEM (Dulbecco's Modified Eagle's Medium, Gibco) 배지를 사용하여 37 oC, 5% CO2 조건에서 배양하였다.
- 2(ABSCIEX, Toronto, Canada)를 사용하여 분석하였다. 분석에 이용된 컬럼은 KINETEX (2.0 × 100 mm, 2.6 µm, Phenomenex, USA)를 사용하였다.
- 시험물질로 사용된 AGE는 뉴트라젠으로부터 공급받았다. 골관절염 유발에 사용된 monosodium iodoacetate는 Sigma Chemical Co.
- 토끼 연골조직세포는 10% 우태아혈청 (fetal bovine serum, Gibco, Grand Island, NY, USA)이 포함된 DMEM (Dulbecco's Modified Eagle's Medium, Gibco) 배지를 사용하여 37 oC, 5% CO2 조건에서 배양하였다.
데이터처리
- 본 연구에서 얻은 정량적인 결과는 SPSS 11.0의 unpaired student's t-test를 이용하여 통계처리하였으며, 유의성은 *p<0.05 수준에서 검정하였고 그 값은 평균(mean)±표준편차(Standard deviation)로 표기하였다.
이론/모형
- LC/MS/MS 분석 조건으로 MRM(Multiple Reaction Monitoring) mode에서 monitor되었으며, ESI(electrospray ionization source)interface가 사용되었다. Decursin과 decursinol angelate 분석은 positive ion mode에서 시행하였으며 decursin과 decursinol angelate의 이온화 monitoringe m/z 329>211로 decursinol m/z 247>229 분석하였다.
- 염증이 유발된 토끼 연골조직세포에서 AGE가 NF-κB 활성화 억제에 미치는 영향을 알아보기 위하여 western blot analysis를 수행하였다. 토끼 연골조직 세포를 6 well plate에 1×105 cells/well로 접종하고 24시간 배양한 다음, IL-1α (5 ng/mL)를 단독 또는 다양한 농도의 AGE (0, 10, 25 및 50 µg/mL)과 함께 처리하여 1시간 배양하였다.
성능/효과
- AGE는 NF-κB 활성화 또한 억제하였다. AGE는 MIA로 골관절염이 유발된 흰쥐 무릎관절 연골조직 내 COL-1, COL-2, aggrecan 유전자 발현은 증가시키는 반면 MMP-3, MMP-9, MMP-13 유전자 발현은 억제시키는 것을 확인할 수 있었다. 또한 AGE를 세포에 투여시 주성분인 decursin 및 decursinol angelate는 농도 의존적으로 세포내에 흡수가 잘되는 것으로 확인된다.
- 이를 위해 IL-1α로 염증이 유도된 토끼 연골조직세포에 AGE를 농도별 (0, 10,25 및 50 µg/mL)로 처리하여 24시간 배양한 후, MMP-2 및 MMP-9 활성을 측정하였다. Fig. 3에 나타낸 바와 같이, 토끼 연골조직세포에서 IL-1α 처리 시 MMP-9 활성이 크게 증가되는 것을 확인할 수 있었다. 하지만 AGE를 처리할 시 MMP-9 활성은 점차 감소되었으며, 최고처리농도인 50 µg/mL에서는 거의 정상 수준까지 감소되었으나, MMP-2 활성에는 크게 영향을 주지 않는 것을 확인할 수 있었다.
- 따라서 본 실험에서는 MIA로 관절염이 유발된 흰쥐에서 AGE가 MMP-3, MMP-9 및 MMP-13 유전자 발현 억제에 미치는 영향을 알아보고자 하였다. Fig. 5에 나타낸 바와 같이, 골관절염이 유발된 대조군은 그렇지 않은 정상군에 비해 MMP-3, MMP-9 및 MMP-13 유전자 발현이 크게 증가되었다. 하지만 AGE 100 ㎎/㎏ 투여 시 MMP- 3, MMP-9 및 MMP-13 유전자 발현이 모두 유의적으로 억제되었으며, MMP-9과 MMP-13 유전자 발현은 AGE 저농도 (25 ㎎/㎏) 투여시에도 유의적으로 감소되는 것을 확인할 수 있었다.
- 6). IL-1α 로 염증이 유도된 토끼 연골조직세포내에 잔존하는 decursin과 decursinol angelate는 5, 10, 25 및 50 µg/ mL의 AGE를 처리 시 decursin의 경우 0.47±0.05, 0.81±0.06, 1.94±0.11 및 3.62±0.47 µg/mg protein으로 검출 되었으며 decursinol angelate는 0.23±0.03, 0.47±0.07, 1.09±0.17 및 2.14±0.36 µg/mg protein 으로 검출됨을 확인하였다(Table 2).
- 하지만, AGE 100 mg/ kg 투여군은 골관절염 유발군인 대조군에 비해 collagen type 1 유전자 발현이 유의적으로 증가되었으며, collagen type 2 유전자 발현 또한 100 ㎎/㎏ 투여군에서 유의적으로 증가되는 것을 확인할 수 있었다. 게다가 Aggrecan 유전자 발현은 모든 AGE 투여군에서 유의적으로 증가되는 것을 확인할 수 있었다. 따라서 AGE가 연골조직의 동화작용에 관여하는 collagen type 1, collagen type 2 및 aggrecan 발현 증가에 효과적임을 알 수 있었다.
- 따라서 본 실험에서는 MIA로 관절염이 유발된 흰쥐에서 AGE가 연골조직 내 collagen type 1, collagen type 2 및 aggrecan 유전자 발현에 미치는 영향을 알아보고자 하였다. 그 결과 Fig. 4에 나타낸 바와 같이, 골관절염이 유발된 대조군은 그렇지 않은 정상군에 비해 collagen type 1, collagen type 2 및 aggrecan 유전자 발현이 크게 감소되었다. 하지만, AGE 100 mg/ kg 투여군은 골관절염 유발군인 대조군에 비해 collagen type 1 유전자 발현이 유의적으로 증가되었으며, collagen type 2 유전자 발현 또한 100 ㎎/㎏ 투여군에서 유의적으로 증가되는 것을 확인할 수 있었다.
- 그 결과, 실험에 사용된 모든 농도의 AGE에서 토끼 연골조직세포 독성은 관찰되지 않았으며, MMP-9 활성은 AGE의 농도에 의존적으로 감소되는 것을 확인할 수 있었다. AGE는 NF-κB 활성화 또한 억제하였다.
- 하지만 AGE 100 ㎎/㎏ 투여 시 MMP- 3, MMP-9 및 MMP-13 유전자 발현이 모두 유의적으로 억제되었으며, MMP-9과 MMP-13 유전자 발현은 AGE 저농도 (25 ㎎/㎏) 투여시에도 유의적으로 감소되는 것을 확인할 수 있었다. 따라서 AGE가 연골조직의 동화작용 인자뿐만 아니라 이화작용 인자에도 효과적으로 작용하여 연골조직을 보호하는 것을 알 수 있었다.
- 게다가 Aggrecan 유전자 발현은 모든 AGE 투여군에서 유의적으로 증가되는 것을 확인할 수 있었다. 따라서 AGE가 연골조직의 동화작용에 관여하는 collagen type 1, collagen type 2 및 aggrecan 발현 증가에 효과적임을 알 수 있었다.
- AGE는 MIA로 골관절염이 유발된 흰쥐 무릎관절 연골조직 내 COL-1, COL-2, aggrecan 유전자 발현은 증가시키는 반면 MMP-3, MMP-9, MMP-13 유전자 발현은 억제시키는 것을 확인할 수 있었다. 또한 AGE를 세포에 투여시 주성분인 decursin 및 decursinol angelate는 농도 의존적으로 세포내에 흡수가 잘되는 것으로 확인된다.
- 상기의 결과를 근거로 AGE는 토끼 연골조직세포는 물론 MIA로 골관절염이 유발된 흰쥐의 무릎관절 연골조직에서 연골조직의 동화인자 (COL-1, COL-2 및 aggrecan)의 생성은 촉진시키는 한편, 이화인자 (MMP-3, MMP-9 및 MMP-13)의 활성 및 생성을 억제하여 골관절염 진행 억제효과를 나타내었다.
- 5에 나타낸 바와 같이, 골관절염이 유발된 대조군은 그렇지 않은 정상군에 비해 MMP-3, MMP-9 및 MMP-13 유전자 발현이 크게 증가되었다. 하지만 AGE 100 ㎎/㎏ 투여 시 MMP- 3, MMP-9 및 MMP-13 유전자 발현이 모두 유의적으로 억제되었으며, MMP-9과 MMP-13 유전자 발현은 AGE 저농도 (25 ㎎/㎏) 투여시에도 유의적으로 감소되는 것을 확인할 수 있었다. 따라서 AGE가 연골조직의 동화작용 인자뿐만 아니라 이화작용 인자에도 효과적으로 작용하여 연골조직을 보호하는 것을 알 수 있었다.
- 3에 나타낸 바와 같이, 토끼 연골조직세포에서 IL-1α 처리 시 MMP-9 활성이 크게 증가되는 것을 확인할 수 있었다. 하지만 AGE를 처리할 시 MMP-9 활성은 점차 감소되었으며, 최고처리농도인 50 µg/mL에서는 거의 정상 수준까지 감소되었으나, MMP-2 활성에는 크게 영향을 주지 않는 것을 확인할 수 있었다.
- 2에 나타낸 바와 같이, 토끼 연골조직세포에서 IL-1α 처리 시 p65 단백질의 핵 내 이동이 증가된 반면 세포질 내 I-κBα 단백질은 크게 감소되었다. 하지만 AGE를 처리할 시 p65 단백질의 핵으로의 이동은 억제되었으며, 세포질 내 I-κBα 단백질 양이 다시 증가되는 것을 확인할 수 있었다.
- 4에 나타낸 바와 같이, 골관절염이 유발된 대조군은 그렇지 않은 정상군에 비해 collagen type 1, collagen type 2 및 aggrecan 유전자 발현이 크게 감소되었다. 하지만, AGE 100 mg/ kg 투여군은 골관절염 유발군인 대조군에 비해 collagen type 1 유전자 발현이 유의적으로 증가되었으며, collagen type 2 유전자 발현 또한 100 ㎎/㎏ 투여군에서 유의적으로 증가되는 것을 확인할 수 있었다. 게다가 Aggrecan 유전자 발현은 모든 AGE 투여군에서 유의적으로 증가되는 것을 확인할 수 있었다.
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