유채 종자에서 기름을 착유한 후 부산물인 유채박을 토양에 처리하여 토양 내 선충을 친환경적으로 방제하기 위하여 실험한 결과를 보면, 유채박을 혼합한 토양이 OM, $Av.P_2O_5$, Ca, Mg, CEC 등의 수치가 증가하였으며, 유기물함량은 무처리 토양보다 3배가량 높게 나타났다. 또한 유채박의 glucosinolate 함량은 제주재래종 유채박이 $199.97{\mu}mol/g$로 선망 유채박의 함량보다 $76.62{\mu}mol/g$ 더 많았으며, 특히 progoitrin, gluconapin, glucobrassicanapin, 및 sinigrin 등의 함량이 높게 나타나기 때문에 유채박의 선충밀도 감소에 효과가 있으며 '선망' 유채박보다 제주재래종 유채박이 선충밀도를 더 줄여주었지만 유의적인 차이는 아니었다.
유채 종자에서 기름을 착유한 후 부산물인 유채박을 토양에 처리하여 토양 내 선충을 친환경적으로 방제하기 위하여 실험한 결과를 보면, 유채박을 혼합한 토양이 OM, $Av.P_2O_5$, Ca, Mg, CEC 등의 수치가 증가하였으며, 유기물함량은 무처리 토양보다 3배가량 높게 나타났다. 또한 유채박의 glucosinolate 함량은 제주재래종 유채박이 $199.97{\mu}mol/g$로 선망 유채박의 함량보다 $76.62{\mu}mol/g$ 더 많았으며, 특히 progoitrin, gluconapin, glucobrassicanapin, 및 sinigrin 등의 함량이 높게 나타나기 때문에 유채박의 선충밀도 감소에 효과가 있으며 '선망' 유채박보다 제주재래종 유채박이 선충밀도를 더 줄여주었지만 유의적인 차이는 아니었다.
The objective of this study was to determine the effectiveness of rapeseed meal in controlling soil nematode. Two different rapeseed meals (Jeju local rape varieties and 'Sunmang' variety) were mixed with the soil to control nematodes environmentally. When soil physical properties in the rapeseed me...
The objective of this study was to determine the effectiveness of rapeseed meal in controlling soil nematode. Two different rapeseed meals (Jeju local rape varieties and 'Sunmang' variety) were mixed with the soil to control nematodes environmentally. When soil physical properties in the rapeseed meal-mixed soils were analyzed, OM (organic matter), $P_2O_5$, Ca, Mg, CEC (Cation Exchange Capacity) value increased. Especially, the level of OM was 3-fold higher than control soil. Glucosinolate content of rapeseed meal was higher in Jeju local rape varieties than 'Sunmang' variety. The major components of glucosinolates were consisted of progoitrin, gluconapin, glucobrassiaca napin, and sinigrin. These components were likely to be involved in reducing nematode density.
The objective of this study was to determine the effectiveness of rapeseed meal in controlling soil nematode. Two different rapeseed meals (Jeju local rape varieties and 'Sunmang' variety) were mixed with the soil to control nematodes environmentally. When soil physical properties in the rapeseed meal-mixed soils were analyzed, OM (organic matter), $P_2O_5$, Ca, Mg, CEC (Cation Exchange Capacity) value increased. Especially, the level of OM was 3-fold higher than control soil. Glucosinolate content of rapeseed meal was higher in Jeju local rape varieties than 'Sunmang' variety. The major components of glucosinolates were consisted of progoitrin, gluconapin, glucobrassiaca napin, and sinigrin. These components were likely to be involved in reducing nematode density.
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문제 정의
, 2000). 이에 본 실험에서는 유채종자로부터 기름을 착유하여 식용으로 쓰고 착유 후 얻어진 유채박을 선충방제에 이용하고자 기주식물로 토마토(cv. Rutgers)를 선정하여 농촌진흥청 국립식량과학원 바이오에너지작물센터 내 유리온실에서 재배하여 유채박의 뿌리 및 토양에 기생하는 뿌리혹선충에 대한 밀도억제 효과를 알아보기 위해 수행하였다.
제안 방법
6 × 150 ㎜)을 이용한 HPLC system (Agilent 1200 series, Agilent Technologie)과 mass spectrometry (MS) module (Applied Biosystem 4000 Q TRAP, Applied Biosystems, Darmstadt, Germany)이 연결된 장치를 사용하였다. Mobile phase는 5 mM ammonium acetate와 acetonitrile을 사용하며, gradient mode (0-5분: 2% acetonitrile, 25분: 25%acetonitrile)를 사용하고, positive ion mode를 사용하여 electro spray ionization을 처리하고, ion spray 조건은 4500 volts spray gas pressure, 50 V의 declusterin potential, 10 V의 enhanced potential 조건에서 분석하였다.
incognita)의 난낭과 유충을 뿌리주변에 2~3 ㎝ 깊이로 구멍을 파서 1000~1500 마리 접종하였다. 그 후 7~8주간 토마토를 육묘하였다. 물 관리 및 기타 재배법은 농촌진흥청 토마토 재배법(2001)에 따라 관리하였다.
보다 구체적으로 유채박의 선충방제 효과를 구명하기 위해 식양토:모래의 비율을 1:1로 하여 멸균한 토양을 무처리로 하고 멸균토양에 제주산 재래종과 ‘선망’ 유채의 박을 50 g씩 혼합한 토화분에 토마토를 이식하고 선충을 접종하여 농촌진흥청 국립식량과학원 바이오에너지작물센터 유리온실 내에서 8주정도 재배한 후 처리별로 토양에 포함되어 있거나 뿌리에 기생하고 있는 선충의 밀도는 토양에서 바로 체에 걸러서 선충을 포집하는 방법, 감염된 뿌리를 잘게 썰어서 분리해 내는 방법 및 토양을 물에 혼합한 후 깔때기에 선충을 분리해 내는 방법으로 선충 밀도를 조사하였다.
시설하우스에 연작 재배한 작물별로 연작횟수에 따른 토양 중 선충밀도를 깔때기법을 이용하여 조사하였다. 전체적으로는 연작 횟수가 많을수록 선충의 발생밀도가 높았음을 나타내었고, 재배된 작물별 차이보다는 연작 횟수가 선충발생의 증가에 크게 영향을 미치고 있음을 보여주었다(Table 1).
유채박에 종류에 따라서 선충발생에 차이를 보이고 있었던 원인을 알아보고자 선충방제에 사용했던 제주재래종 유채박 및 ‘선망’ 유채박의 glucosinolate 함량 및 성분을 분석하였다.
유채박의 선충방제 효과 구명을 위해 기주식물로 사용할 토마토(cv. Rutgers) 종자를 페트리디쉬에 치상 후 실온에서 발아시켜 포트에 심어서 20일 육묘한 토마토를 식양토와 모래를 1:1로 혼합하여 고압멸균기(Sanyo, Japan)로 120℃에서 1시간 멸균한 토양 1 ㎏과 제주산 재래종 유채박, 선망 유채박을 각각 50 g씩을 혼합하여 채운 토화분(직경 19 ㎝ × 높이 19 ㎝)에 이식하고 1주일 뒤 고구마뿌리혹선충(M. incognita)의 난낭과 유충을 뿌리주변에 2~3 ㎝ 깊이로 구멍을 파서 1000~1500 마리 접종하였다.
질량분석은 C18 column (Zorbax Eclips X DB C18, 4.6 × 150 ㎜)을 이용한 HPLC system (Agilent 1200 series, Agilent Technologie)과 mass spectrometry (MS) module (Applied Biosystem 4000 Q TRAP, Applied Biosystems, Darmstadt, Germany)이 연결된 장치를 사용하였다.
채집한 토양 30 g을 집게로 막은 고무호스를 연결한 깔때기(Baermann’s Funnel)에 철망과 여과용 필터를 깔고 시료와 물을 채워준 다음 24시간 경과 후에 중력에 의해 아래 모인 선충들을 모아 Cyracuse watchglass 위에 두고 현미경 하에서 40배로 확대해 관찰하였다.
18)을 2/3정도 채워 설탕물과 흙이 잘 섞이도록 저어주고 3000 rpm에서 2 분간 다시 원심 분리한다. 튜브의 상층액을 500mesh 체에 모아 2 ㎖의 용액을 Cyracuse watchglass (Fujiwara Scientific Company, Japan) 위에 두고 현미경(Carl Zeiss, Germany) 하에서 40배로 확대해 관찰하였다(Southey, 1986).
식물체로부터 선충을 분리하기 위해 토마토의 뿌리를 1 ㎝ 정도 되게 잘라 플라스크에 넣고 sodium hypochlorite (DaeJung,Korea)를 5%로 희석하여 뿌리가 잠길 만큼 채운 후 4분간 세게 흔들어 준다. 플라스크의 용액 및 뿌리를 200 mesh 체를 통하여 물통에 붇고 체 위에 걸린 뿌리를 제거 한 다음 물통에 모인 용액을 500 mesh 체에 모아 2 ㎖의 용액을 Cyracuse watchglass 위에 두고 현미경 하에서 40배로 확대해 관찰하였다(Southey, 1986).
대상 데이터
뿌리혹선충의 시설하우스 연작지에 대한 피해실태를 알아보기 위해 2013년 3월~4월 사이에 연작횟수가 5년 이상인 광주, 나주, 순천의 시설하우스 재배 농가 한곳을 선정하여 고추, 가지, 주키니호박, 오이, 토마토 등을 재배한 토양샘플을 3반복 채집 후 조사하였다. 채집한 토양 30 g을 집게로 막은 고무호스를 연결한 깔때기(Baermann’s Funnel)에 철망과 여과용 필터를 깔고 시료와 물을 채워준 다음 24시간 경과 후에 중력에 의해 아래 모인 선충들을 모아 Cyracuse watchglass 위에 두고 현미경 하에서 40배로 확대해 관찰하였다.
이론/모형
그 후 7~8주간 토마토를 육묘하였다. 물 관리 및 기타 재배법은 농촌진흥청 토마토 재배법(2001)에 따라 관리하였다.
Glucosinolate 함량은 제주재래종 유채박이 199.97 μmol/g로 무안잡종박의 123.35 μmol/g 보다 76.62 μmol/g 더 많았으며, 특히 유채박의 glucosinolate의 성분 중에 progoitrin, gluconapin, glucobrassicanapin, 및 sinigrin 등이 높았다(Table 5).
결과적으로 유채박을 혼합한 토양이 OM, Av.P205 등의 수치가 증가하여 하였으며, 특히 유기물함량은 무처리 토양보다 3배가량 높게 나타났다. 채종유박, 맥주오니 등의 산업활동에서 나오는 부산물 또한 물리성 개선 효과가 있는 것으로 보고하였으며(Hur et al.
유채 종자에서 기름을 착유한 후 부산물인 유채박을 토양에 처리하여 토양 내 선충을 친환경적으로 방제하기 위하여 실험한 결과를 보면, 유채박을 혼합한 토양이 OM, Av.P205, Ca, Mg, CEC 등의 수치가 증가하였으며, 유기물함량은 무처리 토양보다 3배가량 높게 나타났다. 또한 유채박의 glucosinolate 함량은 제주재래종 유채박이 199.
5으로, Av.P2O5은 297 ㎎/㎏에서 540으로, Ca는 4.0 cmol+/㎏에서 12.3, Mg는 2.2 cmol+/㎏에서 4.1, CEC는 6.5 cmol+/㎏에서 20.5으로 증가되었으나, OM은 62 g/㎏에서 31, K는 1.24 cmol+/㎏에서 0.39, EC는 1.58 dS/m에서 0.76으로 감소된 경향을 보였다(Table 4). 결과적으로 유채박을 혼합한 토양이 OM, Av.
또한 유채박의 glucosinolate 함량은 제주재래종 유채박이 199.97 μmol/g로 선망 유채박의 함량보다 76.62 μmol/g 더 많았으며, 특히 progoitrin, gluconapin, glucobrassicanapin, 및 sinigrin 등의 함량이 높게 나타나기 때문에 유채박의 선충밀도 감소에 효과가 있으며 ‘선망’ 유채박보다 제주재래종 유채박이 선충밀도를 더 줄여주었지만 유의적인 차이는 아니었다.
(2010)은 유채종자를 으깨어서 시설오이연작재배지에 살포한 후 선충방제 효과를 시험한 결과 토양 중에 선충밀도가 경감되었고, 특히 유채종자에 함유된 양분이 공급되어 오이재배에 synergy 효과가 있었다고 보고한 결과와 일치하는 경향임을 알 수 있었다. 또한 접종한 뿌리혹선충의 밀도가 토마토 생육에 영향을 주는바 유채박이 혼합된 토화분의 토마토 재배가 유채박이 혼합되지 않은 경우보다 생육이 양호한 것을 보여주었다(Fig. 3). 이는 Collins et al.
토마토를 유채박이 혼합된 토화분에 재배한 바 이식 후 4주가 지나면서 유채박이 혼합되지 않은 토화분의 토마토는 생육이 다소 저조하고 잎색이 옅은 노란색을 띠면서 양분이 부족한 상태로 자라고 있는 것을 볼 수 있었다. 반면에 유채박이 혼합된 토화분에서 자라고 있는 토마토는 잎색이 짙은 녹색을 띠면서 식물체 내에 양분이 충분한 상태임을 보여주고 있었다. 이것은 유채박이 분해되면서 유기물 공급이 충분히 이루어진 결과라고 사료되었다(Fig.
뿌리로부터 선충분리의 경우에도 유채박 무처리 3,764 마리에 비교하여 제주 재래종 유채박이 1,041 마리로 3.61배, ‘선망’ 유채박이 1,355 마리로 2.77배 선충발생밀도가 줄었다.
연작지에서 선충발생이 있었던 토양을 채취하여 제주재래종 유채박과 ‘선망’ 유채박을 50 g씩 혼합한 후 기주식물로 토마토(cv. Rutgers)를 화분에 이식하여 농촌진흥청 국립식량과학원 바이오에너지작물센터 유리온실에서 8주 정도 재배한 후 토양 중에 선충발생 밀도를 조사한 결과, 채집해 온 연작지 선충오염 토양의 선충 밀도는 토양 500 g 당 고추에서 2,029, 가지에서 9,690, 주키니에서 11,021 마리를 나타냈으며, 제주재래종 유채박을 혼합한 경우는 고추에서 207 마리, 가지에서 950 마리, 주키니에서 2,149 마리를 보여주었고, ‘선망’ 유채박을 혼합한 경우는 고추에서 316 마리, 가지에서 1,783 마리, 주키니에서 3,179 마리를 보여주었는데, 이는 유채박을 처리하지 않은 선충 오염 토양이 유채박을 처리한 토양에 비해 5~10배 많이 발생하였다.
시설하우스에 연작 재배한 작물별로 연작횟수에 따른 토양 중 선충밀도를 깔때기법을 이용하여 조사하였다. 전체적으로는 연작 횟수가 많을수록 선충의 발생밀도가 높았음을 나타내었고, 재배된 작물별 차이보다는 연작 횟수가 선충발생의 증가에 크게 영향을 미치고 있음을 보여주었다(Table 1). 연작을 할 경우 토양의 이화학적 변화 및 전염성 병균증가, 토양 미생물의 변화, 토양선충 피해로 인하여 작물생육불량, 잎의 황화 현상, 뿌리부패, 지상부 위조, 수량 및 품질저하 등 전반적인 경제적 손실을 초래한다고 알려져 있다(Jun & Park, 2001).
토마토를 유채박이 혼합된 토화분에 재배한 바 이식 후 4주가 지나면서 유채박이 혼합되지 않은 토화분의 토마토는 생육이 다소 저조하고 잎색이 옅은 노란색을 띠면서 양분이 부족한 상태로 자라고 있는 것을 볼 수 있었다. 반면에 유채박이 혼합된 토화분에서 자라고 있는 토마토는 잎색이 짙은 녹색을 띠면서 식물체 내에 양분이 충분한 상태임을 보여주고 있었다.
토양깔대기법의 경우는 유채박 무처리 131 마리에 비교하여, 제주재래종 유채박이 50마리로 2.62배, ‘선망’ 유채박이 1.89배 선충발생밀도가 줄었음을 보여주고 있었다(Table 3).
토양직접분리의 경우는 유채박 무처리 1,596 마리에 비교하여 제주재래종 유채박이 653 마리로 2.44배, ‘선망’ 유채박이 867 마리로 1.84배 선충발생밀도가 줄어들었다.
89배 선충발생밀도가 줄었음을 보여주고 있었다(Table 3). 특히 유채박을 혼합하지 않은 경우 비교적 뿌리가 기형적으로 비대해지고 혹의 발생이 증가하는 경향을 보였다(Fig. 2). 토화분에 토마토를 이식한 후 활착이 된 다음에 선충을 접종하게 되면 선충이 뿌리에 기생하면서 선충이 증식을 하게 되는데 유채박을 처리한 경우에는 선충의 증식을 억제한다는 것을 알 수 있었다(Brown and Morra, 1996).
질의응답
핵심어
질문
논문에서 추출한 답변
선충방제를 위한 방법 중 살선충제 처리가 야기하는 문제점은 무엇인가?
sp lycopersici), 풋마름병 등이 복합적으로 발생하여 수확되는 과실수량이 60~80% 감소하기도 한다. 선충 피해를 감소시키기 위해 윤작, 객토, 태양열 소독, 담수처리, 토양훈증, 살선충제 처리 등을 이용하는데, 살선충제 처리의 경우 제한된 공간에 약효보다 약해 등의 부작용이 많고 농민들의 건강에 악영향을 미치며, 또한 연작으로 인한 선충서식 부위가 깊어져서 살선충제의 효과가 제대로 미치지 못하여 밀도회복이 빨라지는 문제점이 발생한다(Thomas, 1978). 위와 같은 이유로 선충방제는 효과가 지속적이고 환경에 안정적이어야 하는데, 유채의 박에는 다량의 glucosinolate를 함유하고 있기 때문에 (Karcher et al.
국내재배지에서 큰 피해를 주는 뿌리혹선충에는 어떤것들이 있는가?
, 2000; Kim and Choi, 2001). 가지, 감자, 고추, 당근, 수박, 오이, 토마토, 호박 등을 기주식물로 하는 땅콩 뿌리혹선충, 당근 뿌리혹선충, 고구마 뿌리혹선충 등 3종이 국내재배지에서 큰 피해를 주고 있다 (Choi and Choo, 1978). 국내의 시설하우스 재배지에는 연작으로 인해 오이, 참외, 토마토 등의 거의 모든 작물들이 큰 피해를 받고 있으며, 뿌리혹선충의 감염으로 연간 약 30~40%의 수량감소를 가져온다(Lee, 2003).
시설재배의 특징은?
시설재배는 집약적인 재배특성으로 인하여 화학비료와 퇴비의 사용량이 많고, 친환경 농업을 위해 투입된 미숙퇴비는 결국 선충의 먹이가 되어 선충의 밀도를 높이는 원인이 되며, 뿌리혹선충은 작물의 뿌리에 기생하여 작물의 생육을 저해하게 된다 (McSorley et al., 1999).
참고문헌 (21)
Bennett, R., J. Ludwig-Muler, G. Kiddle, W. Hilgenberg and R. Wallsgrove. 1995. Developmental regulation of aldoxime formation in seedlings and mature plants of Chinese cabbage (Brassica campestris ssp. pekinensis) and oilseed rape (Brassica napus): Glucosinolate and IAA biosynthetic enzymes. Planta 196:239-244.
Brown, P.D. and M.J. Morra. 1996. Hydrolysis products of glucosinolates in Brassica napus tissues as inhibitors of seed germination. Plant and Soil. 181:307-316.
Choi, Y.E. and H.Y. Choo. 1978. A study on the root-knot nematodes (Meloidogyne spp.) affecting economic crops in Korea. Korean J. Plant Protec. 17:89-98 (in Korean).
Collins, H.P., A. Alva, R.A. Boydston, R.L. Cochran, P.B. Hamm, A. McGuire and E. Riga. 2006. Soil microbial, fungal, and nematode responses to soil fumigation and cover crops under potato production. Biol Fertil Soils 42:247-257.
Jeong, J.H., B.W. Sin and C.H. Yoo. 2001. Effects of the successive application of organic matters on soil properties and rice yield. J. Korea Soc. Soil Sci and Fert. 34(2):129-133 (in Korean).
Jun, H.S. and W.C. Park. 2001. Soil chemical characteristics and comparison with infested status of nematode (Meloidogyne, spp.) in plastic house continuously cultivated oriental melon in Songju. Korean J. Environ. Agric. 20:127-132 (in Korean).
Karcher A., H.A. Melouk and Z. EI Rassi. 1999. High-performance liquid phase separation of glycosides. 5. Determination of individual glucosinolate in cabbage and rapeseed by laserinduced fluorescence capillary electrophoresis via the enzymatically released isothiocyanate aglycon. J. Agri. Food Chem. 47:4267- 4274.
Kim, D.G. and S.K. Choi. 2001. Effects of incorporation method of nematicides on reproduction of meloidogyne arenaria. Korean J. Appl. Entomol. 40:89-95 (in Korean).
Kim, H.K., K.C. Ma, M.S. Kim, G.P. Bang, J.K. Kim and M.S. Park. 2010. Environmentally-friendly control of soil nematode by crashed-rape (Brassica napus) seed. Korean J. Environ. Agric. 29(3):282-286 (in Korean).
Lee, J.G. 2003. Occurrence, ecology and control of rootknot nematodes under greenhouse cultivation system. Ph.D Thesis, Chungnam National Univ., Korea. (in Korean).
Ludwig-Muler, J., B. Schubert, K. Pieper, S. Ihmig and W. Hilgenberg. 1997. Glucosinolate content in susceptible and resistant chinese cabbage varieties during development of clubroot disease. Phytochemistry 44(3):407-414.
Hur, B.K., L.Y. Kim, I.S. Jo, Y.S. Park, K.T. Um and M.S. Kim. 1986. Effects of organic matter resources on the soil improvement and crop growth. J. Korean Soc. Soil Sci. Fet. 28:7-12 (in Korean).
McSorley, R., M. Ozores-Hamton, P.A. Stanly and M. Conner. 1999. Nematode management, soil fertility and yield in organic vegetable production. NMTROPICA 29(2):206-213.
Mithen, R., B.G. Lewis, R. Heaney and G.R. Fenwick. 1987. Glucosinolates of wild and cultivated Brassica species. Phytochemistry 26:1969-1973.
National Academy of Agriculture Science. 2000. Method of soil and crop plant analysis.
Rural Development Administration. 2001. Method of Tomato Culture.
Southey, J.F. 1986. Laboratory methods for with plant and soil nematodes. Her Majesty's Stationery Office, Encyclopaedia Britannica, London, UK. p. 202.
Thomas, S.H. 1978. Population densities of nematodes under seven tillage regimes. J. Nmatology 10(1):24-27.
Grsic-Rausch, S., B. Kirchheim, K. Pieper, M. Fritsch, W. Hilgenberg and J. Ludwig-Muler. 1999. Induction of auxin biosynthetic enzymes by jasmonic acid and in clubroot diseased Chinese cabbage plants. Physiol. Plant. 105:521-531.
Grsic-Rausch, S., P. Kobelt, J.M. Siemens, M. Bischoff, and J. Ludwig-Muler. 2000. Expression and localization of nitrilase during symptom development of the clubroot disease in Arabidopsis. Plant Physiol. 122:369-378.
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