[논문]실시간 정량 PCR을 통한 김치 유래 Weissella spp.에 의한 Listeria monocytogenes 생육 억제

이영덕; 김대용; 박종현

doi:10.13103/jfhs.2015.30.1.103

실시간 정량 PCR을 통한 김치 유래 Weissella spp.에 의한 Listeria monocytogenes 생육 억제
Growth Inhibition of Listeria monocytogenes by Weissella spp. from Kimchi Through Real-time PCR 원문보기

한국식품위생안전성학회지 = Journal of food hygiene and safety, v.30 no.1, 2015년, pp.103 - 108

이영덕 (서원대학교 식품공학과) , 김대용 (서원대학교 제약공학과) , 박종현 (가천대학교 식품생물공학과)

초록
AI-Helper

본 연구에서는 김치로부터 W. cibaria 0D17와 W. confusa 0D23를 생화학적 특성 분석과 16s rRNA 염기서열 분석을 통해 분리, 동정하였으며, W. cibaria 0D17와 W. confusa 0D23 배양 상등액이 L. monocytogenes에 대한 항균 효과가 있는 것으로 나타났다. 또한, 실시간 정량 PCR을 통해 W. cibaria 0D17 및 W. confusa 0D23가 L. monocytogenes를 공동 배양했을 때의 생육억제 효과를 분석한 결과, $37^{\circ}C$에서는 생육 억제 효과가 있는 것으로 확인되었다. 따라서, 김치 유래 Weissella spp.가 갖는 L. monocytogenes에 대한 항균 활성에 대한 기초 자료로 활용가능 할 것으로 판단되며, W. cibaria 0D17 및 W. confusa 0D23가 생산하는 bacteriocin 등의 항균 물질 특성에 대한 연구가 추가적으로 진행될 필요가 있을 것이다.

Abstract ▼ AI-Helper

Weissella spp. from traditional Korean foods of Kimchi were isolated and characterized against food-borne pathogenic Listeria monocytogens. The isolates were identified as W. cibaria 0D17 and W. confusa 0D23 from Kimchi by the biochemical characteristics and 16S DNA sequencing. The culture solutions of the isolates adjusted to pH 7.0 showed L. monocytogens inhibition. To analyze the quantitative detection of L. monocytogenes, real-time PCR was performed according to the SYBR Green I method. The isolates grew well and L. monocytogens did not grow during the co-culture with those strains at $37^{\circ}C$. Therefore, W. cibaria 0D17 and W. confusa 0D23 might be the candidates as the functional lactic acid bacteria for improving food safety.

주제어

AI 본문요약
AI-Helper

* AI 자동 식별 결과로 적합하지 않은 문장이 있을 수 있으니, 이용에 유의하시기 바랍니다.

문제 정의

따라서, 본 연구에서는 김치로부터 Weissella spp.를 분리 및 동정하고 정량 PCR을 통해 L. monocytogenes의 생육 억제 효과를 확인하고자 하였다.
본 연구를 통해 분리된 김치 유래 W. cibaria 0D17와 W. confusa 0D23이 식중독 세균인 L. monocytogenes에 대한 항균 활성 유무를 확인하고자 하였다. W.

제안 방법

monocytogenes의 16s rRNA를 목적으로 하는 16s forward (GGCTAATACCGAATGATGAA)와 16s reverse (AAGCAGTTACTCTTATCCT)를 사용하였다. Capillary PCR tube에 1 uL의 DNA와 10 pmol의 primer, 100 mM KCl, 40 mM Tris-HCl (pH 8.4), 0.4 mM each dNTP, 50 U/mL of iTaq DNA polymerase, 6 mM MgCl2 and 20 nM SYBR Green I을 혼합한 후 실시간 정량 PCR 을 수행하였다. 반응 조건은 95^oC 5분 간 진행 후, 95^oC 1분, 55^oC 1분, 72^oC 1분 세 단계를 45회 반복하여 목적 유전자를 증폭하였다.
L. monocytogenes의 정량분석은 LightCycler 2.01 (Roche, Mannheim, Germany)를 사용하였으며, 이를 위해 BHI broth 에서 18~24 시간 동안 배양한 L. monocytogenes를 Listeria selective agar에 단계 희석하여 도말한 후 37^oC에서 18~24시간 동안 다시 배양하였다. 배양된 균수를 바탕으로 standard plate count법을 이용하여 colony forming unit (CFU) 값을 구하였다.
그리고, temperature transition rate는 20^oC/s였고 증폭된 DNA는 SYBR Green I의 결합으로 특유의 형광을 발하게 되어 이 형광의 발생 정도를 분석하였다. Melting peak 분석은 16s rRNA 유전자 증폭 후 95^oC0초, 65^oC 15초, 95^oC 0초로 하였으며 온도변화율은 20^oC/ s이었고 마지막 3번째 단계만 0.1^o C/s로 수행하였다.
그리고 genomic DNA kit를 사용하여 DNA를 추출하여 PCR을 위한 template DNA로 이용하였으며, 세균의 16s rRNA에 대한 universal primer인 F-341 (CCTACGGGAGGCAGCAG)와 786-R (GACTACCAGGGTATCTAATC)을 사용하였다. PCR 수행 후 전기영동을 통해 450 bp의 증폭 산물을 확인하고 QIAquick PCR purification kit (QIAGEN, Hilden, Germany)를 사용하여 정제하였다. 염기서열은 Dye Terminator Cycle Sequencing Ready Reaction Kit (Biosystems, CA, USA)와 ABI 3700 sequencer (Biosystems, CA, USA)에 의해 수행하였으며, primer는 위와 동일하게 사용 하였다.
분리된 Weissella spp.가 L. monocytogens에 대한 항균작용을 하는지의 활성 유무를 확인하였다. Weissella spp.
배양된 균수를 바탕으로 standard plate count법을 이용하여 colony forming unit (CFU) 값을 구하였다. 구해진 CFU값을 기준으로 앞서 추출한 genomic DNA를 10진 희석하여 real-time PCR assay을 실행한 후, 각 희석 단계의 CFU값과 crossing point (Cp)값으로 표준 곡선을 작성하여 정량 분석하였다.
8% 멸균생리식염수로 수세하였다. 그리고 genomic DNA kit를 사용하여 DNA를 추출하여 PCR을 위한 template DNA로 이용하였으며, 세균의 16s rRNA에 대한 universal primer인 F-341 (CCTACGGGAGGCAGCAG)와 786-R (GACTACCAGGGTATCTAATC)을 사용하였다. PCR 수행 후 전기영동을 통해 450 bp의 증폭 산물을 확인하고 QIAquick PCR purification kit (QIAGEN, Hilden, Germany)를 사용하여 정제하였다.
gov/)의 BLAST search program을 이용하여 DNA database와 비교하였다. 그리고 계통학적 분석은 Clustal X, BioEdit, MEGA 4 (www.megasoftware.net/)를 이용하여 염기서열간의 유전적 거리와 phylogenic tree를 확인하였다.
1% peptone water 에 혼합 하고, stomacher를 이용하여 균질화한 후 10진 희석을 하여 MRS agar에 도말 후 37^oC에서 48~72 시간 배양하였다. 그리고 배양된 집락들 중 형태학적으로 상이한 것을 선택하여 MRS agar에 평판 획선하여 배양하여 순수 분리하였다. 그 후 분리된 유산균들을 대상으로 현미경을 통한 형태학적 특성 확인, Gram test, catalase test를 수행후 API kit 50CHL (Biomerieux Co.
반응 조건은 95^oC 5분 간 진행 후, 95^oC 1분, 55^oC 1분, 72^oC 1분 세 단계를 45회 반복하여 목적 유전자를 증폭하였다. 그리고, temperature transition rate는 20^oC/s였고 증폭된 DNA는 SYBR Green I의 결합으로 특유의 형광을 발하게 되어 이 형광의 발생 정도를 분석하였다. Melting peak 분석은 16s rRNA 유전자 증폭 후 95^oC0초, 65^oC 15초, 95^oC 0초로 하였으며 온도변화율은 20^oC/ s이었고 마지막 3번째 단계만 0.
monocytogenes에 대한 항균 활성이 있다는 보고와 유사하였다¹⁷⁾. 그리고, 분리된 W. cibaria 0D17와 W. confusa 0D23가 각각 L. monocytogenes와 공동 배양 시온도에 따른 생육 억제 효과를 SYBR Green I을 이용해 실시간 정량 PCR을 통해 확인하였다. 실시간 정량 PCR 은 다양한 형광 색소를 활용해 형광의 강도를 측정해 목적 유전자의 증폭을 확인하는 방법으로, 이중 SYBR Green I은 DNA 이중나선 사이로 결합되어 나타나는 형광을 측정함으로써 Cp 값과 Tm값을 알 수 있고 이를 통해 시료의 농도, 증폭여부 및 종을 확인할 수 있다¹⁸⁾.
0 수준이 되도록 배양한 후 10 mL의 MRS broth 에 약 3 log CFU/mL 수준으로 동시에 접종하고 37^oC와 4^oC에서 배양하였다. 그리고, 시간에 따른 생육 억제를 확인 하기 위해 24 시간 후에 배양액 1 mL을 취해 DNA를 추출하여 실시간 정량 PCR을 수행하여 L. monocytogenes의 생육 정도를 확인하였다.
22µm Syringe filter (Millipore, Billerica, MA)를 이용하여 제균하였다. 그리고, 제균액을 L. monocytogenes가 도말된 배지 위에 spot on the lawn 방법으로 10 uL 분주하고 배양한 뒤 억제환을 확인하여 생육 저해효과를 확인하였다.
김치로부터 Weissella spp.를 분리하기 위해 MRS agar 에서 배양된 집락의 형태학적인 특성에 따라 분리한 후 Gram test, catalase test, 현미경 관찰을 통한 형태학적 특성 확인 등을 통해 유산균으로 의심되는 균을 분리하였다. 그리고 API 50 CHL kit를 이용하여 당 발효특성 등의 생화학적 특성을 확인하고, 그 결과를 동정 프로그램을 통해 확인하였으며, 동정 결과(%)가 90% 이상인 균주 Weissella spp.
4 mM each dNTP, 50 U/mL of iTaq DNA polymerase, 6 mM MgCl2 and 20 nM SYBR Green I을 혼합한 후 실시간 정량 PCR 을 수행하였다. 반응 조건은 95^oC 5분 간 진행 후, 95^oC 1분, 55^oC 1분, 72^oC 1분 세 단계를 45회 반복하여 목적 유전자를 증폭하였다. 그리고, temperature transition rate는 20^oC/s였고 증폭된 DNA는 SYBR Green I의 결합으로 특유의 형광을 발하게 되어 이 형광의 발생 정도를 분석하였다.
을 API kit 50CHL을 이용해 당자 화성 특성 및 1차적으로 동정하고 최종적인 동정을 위해 16s rRNA 서열분석을 수행하였다. 서열 분석을 위해 분리된 젖산균을 MRS broth에 배양하고 배양액 1 mL을 취해 원심 분리한 후 0.8% 멸균생리식염수로 수세하였다. 그리고 genomic DNA kit를 사용하여 DNA를 추출하여 PCR을 위한 template DNA로 이용하였으며, 세균의 16s rRNA에 대한 universal primer인 F-341 (CCTACGGGAGGCAGCAG)와 786-R (GACTACCAGGGTATCTAATC)을 사용하였다.
PCR 수행 후 전기영동을 통해 450 bp의 증폭 산물을 확인하고 QIAquick PCR purification kit (QIAGEN, Hilden, Germany)를 사용하여 정제하였다. 염기서열은 Dye Terminator Cycle Sequencing Ready Reaction Kit (Biosystems, CA, USA)와 ABI 3700 sequencer (Biosystems, CA, USA)에 의해 수행하였으며, primer는 위와 동일하게 사용 하였다. 16S rRNA sequence의 homologous의 분석은 National Center for Biotechnology Information (http://www.
분리된 Weissella spp.을 API kit 50CHL을 이용해 당자 화성 특성 및 1차적으로 동정하고 최종적인 동정을 위해 16s rRNA 서열분석을 수행하였다. 서열 분석을 위해 분리된 젖산균을 MRS broth에 배양하고 배양액 1 mL을 취해 원심 분리한 후 0.
3). 표준 곡선에 위생처리를 3반복 실험한 Cp값의 평균을 대입하여 L. monocytogenes의 농도를 산출하였다. 이를 통해 W.

대상 데이터

김치로부터 Weissella spp.를 분리하기 위해 김치 제조 회사로부터 김치를 수집 하였다. 이들 시료 25 g을 225 mL의 0.
본 실험에 사용된 L. monocytogenes KCTC3710을 미생물자원센터에서 분양 받았으며, Listeria selective agar (Oxoid, UK)에서 배양한 후 BHI agar 또는 broth로 옮겨 37^oC, 호기적으로 24 시간 배양하였다. 유산균의 배양은 0.
사용한 primer는 L. monocytogenes의 16s rRNA를 목적으로 하는 16s forward (GGCTAATACCGAATGATGAA)와 16s reverse (AAGCAGTTACTCTTATCCT)를 사용하였다. Capillary PCR tube에 1 uL의 DNA와 10 pmol의 primer, 100 mM KCl, 40 mM Tris-HCl (pH 8.

데이터처리

염기서열은 Dye Terminator Cycle Sequencing Ready Reaction Kit (Biosystems, CA, USA)와 ABI 3700 sequencer (Biosystems, CA, USA)에 의해 수행하였으며, primer는 위와 동일하게 사용 하였다. 16S rRNA sequence의 homologous의 분석은 National Center for Biotechnology Information (http://www. ncbi.nlm.nih.gov/)의 BLAST search program을 이용하여 DNA database와 비교하였다. 그리고 계통학적 분석은 Clustal X, BioEdit, MEGA 4 (www.

이론/모형

monocytogenes를 Listeria selective agar에 단계 희석하여 도말한 후 37^oC에서 18~24시간 동안 다시 배양하였다. 배양된 균수를 바탕으로 standard plate count법을 이용하여 colony forming unit (CFU) 값을 구하였다. 구해진 CFU값을 기준으로 앞서 추출한 genomic DNA를 10진 희석하여 real-time PCR assay을 실행한 후, 각 희석 단계의 CFU값과 crossing point (Cp)값으로 표준 곡선을 작성하여 정량 분석하였다.

성능/효과

monocytogenes에 대한 항균 활성 유무를 확인하고자 하였다. W. cibaria 0D17와 W. confusa 0D23의 배양 상등액을 pH 7.0으로 조정했을 때와 그렇지 않을 경우 모두 L. monocytogenes에 대해 억제환을 나타내어 항균 효과가 있음을 확인하였다(data not shown). 이러한 결과는 pH를 조정하지 않았을 경우는 Weissella spp.
그리고, 정량 분석을 위한 표준 곡선은 배양된 L. monocytogenes를 약 2~6 log CFU/mL로 10진 희석하여 실시간 정량 PCR을 통해 유전자를 증폭하여 Cp 값과 농도와의 선형분석 결과, 상관계수 0.994, 기울기는 −3.006으로 나타났다(Fig. 3).
monocytogenes에 대한 생육 억제 효과가 공동 배양하지 않은 때와 비교해 약 4 log CFU/mL 수준으로 확인되었다. 또한, 4^oC에서는 W. cibaria 0D17와 W. confusa 0D23 모두 L. monocytogenes의 생육 억제에는 효과가 크게 나타나지 않는 것으로 나타났다. 이러한 결과는 Weissella spp.
monocytogenes에 대한 항균 효과가 있는 것으로 나타났다. 또한, 실시간 정량 PCR을 통해 W. cibaria 0D17 및 W. confusa 0D23가 L. monocytogenes 를 공동 배양했을 때의 생육억제 효과를 분석한 결과, 37^oC 에서는 생육 억제 효과가 있는 것으로 확인되었다. 따라서, 김치 유래 Weissella spp.
또한, 확인된 Weissella spp.를 16s rRNA 염기 서열 분석한 결과 W. cibaria 0D17와 W. confusa 0D23으로 최종 동정되었다(Fig. 1). 최근 DGGE (denaturing gradient gel electrophoresis), ARDRA법 (Amplified Ribosomal DNA Restriction Analysis), T-RFLP (terminal restriction fragment length polymorphism), metagenomics 분석 등의 다양한 분자생물학적 연구를 통해 김치의 유산균 총에 대한 연구가 활발하게 진행되고 있다^14~16).
monocytogenes 이외에 다양한 식중독 세균에 제어를 위한 생균제 또는 항균제로서 사용이 가능할 것으로 판단된다. 본 연구에서 분리된 W. cibaria 0D17와 W. confusa 0D23가 L. monocytogenes와 공동 배양 시 생육 억제 효과는 이들이 생산하는 유기산 등의 항균 효과를 갖는 물질과 함께 bacteriocin에 의해 생육 억제가 있었을 것으로 판단된다. 따라서, W.
본 연구에서는 김치로부터 W. cibaria 0D17와 W. confusa 0D23를 생화학적 특성 분석과 16s rRNA 염기서열 분석 을 통해 분리, 동정하였으며, W. cibaria 0D17와 W. confusa 0D23 배양 상등액이 L. monocytogenes에 대한 항균 효과가 있는 것으로 나타났다. 또한, 실시간 정량 PCR을 통해 W.
이 특정 온도를 이용하여 목적 유전자가 맞는지 확인할 수 있다¹⁸⁾. 본 연구에서도 L. monocytogenes의 정량 분석을 위해 melting peak를 확인한 결과 L. monocytogenes의 경우 Tm값이 약 87^oC로 고유의 melting peak가 나타나는 반면에 W. cibaria 0D17와 W. confuse 0D23는 확인되지 않았다. 이를 통해 W.
confuse 0D23는 확인되지 않았다. 이를 통해 W. cibaria 0D17와 W. confuse 0D23와 공동 배양 시에 L. monocytogene 만을 정량적으로 분석이 가능한 것을 확인하였다(Fig. 2). 그리고, 정량 분석을 위한 표준 곡선은 배양된 L.

후속연구

따라서, 김치 유래 Weissella spp.가 갖는 L. monocytogenes에 대한 항균 활성에 대한 기초 자료로 활용가능 할 것으로 판단되며, W. cibaria 0D17 및 W. confusa 0D23가 생산하 는 bacteriocin 등의 항균 물질 특성에 대한 연구가 추가적으로 진행될 필요가 있을 것이다.
monocytogenes와 Weissella spp. 가 함께 존재하였을 때 각각의 생리 특성, 발효 식품의 특성 변화 등에 대한 추가적인 연구가 수행되어야 할 것이다. 또한, 공동 배양 시 분자 수준에서 변화를 metagenomics 분석이나 transcriptomics 분석 등을 통해 규명되어야 할 것이다.
monocytogenes와 공동 배양 시 생육 억제 효과는 이들이 생산하는 유기산 등의 항균 효과를 갖는 물질과 함께 bacteriocin에 의해 생육 억제가 있었을 것으로 판단된다. 따라서, W. cibaria 0D17와 W. confusa 0D23가 생성하는 weissellicin 등의 bacteriocin에 대한 특성 규명에 대한 연구가 필요할 것이며, 다양한 식품 내에서 L. monocytogenes와 Weissella spp. 가 함께 존재하였을 때 각각의 생리 특성, 발효 식품의 특성 변화 등에 대한 추가적인 연구가 수행되어야 할 것이다.
monocytogenes의 제어를 위해서 Weissella spp. 또는 다른 유산균이 생산하는 bacteriocin과의 병행 처리를 통해 저온 발효에서도 효과적인 제어가 가능할 것을 판단된다. 최근 L.
가 함께 존재하였을 때 각각의 생리 특성, 발효 식품의 특성 변화 등에 대한 추가적인 연구가 수행되어야 할 것이다. 또한, 공동 배양 시 분자 수준에서 변화를 metagenomics 분석이나 transcriptomics 분석 등을 통해 규명되어야 할 것이다.
따라서, 추후에 김치 유래 Weissella spp.에 대한 항균 물질과 유기산 등의 특성 규명과 더불어 상호작용에 관한 연구를 통해 L. monocytogenes 이외에 다양한 식중독 세균에 제어를 위한 생균제 또는 항균제로서 사용이 가능할 것으로 판단된다. 본 연구에서 분리된 W.
가 형성하는 bacteriocin 등의 항균물질에 의한 것으로 사료된다. 하지만, L. monocytogenes를 생육을 저해하는 유기산과 bacteriocin 등의 항균 물질과의 상호작용에 대한 추후 연구가 진행 되어야 할 것으로 판단된다. 안 등은 김치에서 분리한 W.

질의응답

핵심어	질문	논문에서 추출한 답변
	L. monocytogene에 감염된 음식을 먹으면 어떤 증상이 나타날 수 있는가?	L. monocytogene는 식중독 세균으로 우유, 쇠고기, 돼지 고기, 닭고기 같은 다양한 식품으로부터 분리되었으며 이에 감염된 식품 또는 식품 원료 물질을 섭취하면 수막염, 심내막염 및 파종성육아종을 유발하고 임산부의 경우 유산, 사산, 조산 등을 일으킬 수 있는 리스테리아증(listeriosis) 이 유발될 수 있다10,11). 특히, 저온에서도 생육이 가능하여 미국과 유럽 등의 식품 제조업체에서 매우 중요한 식중독 세균으로 인식되고 있다.
	pH 조정 여부에 상관없이 Weissella spp. 두 종이 L. monocytogenes에 항균효과를 보인 것에 대한 이유로 추정하는 것은?	monocytogenes에 대해 억제환을 나타내어 항균 효과가 있음을 확인하였다(data not shown). 이러한 결과는 pH를 조정하지 않았을 경우는 Weissella spp.가 생성하는 다양한 유기산과 항균물질 등에 의한 것으로 보이며, pH를 중성으로 조정하였을 때는 Weissella spp.가 형성하는 bacteriocin 등의 항균물질에 의한 것으로 사료된다. 하지만, L.
	Weissella spp.는 어떤 균이며 무슨 일을 하는가?	이러한 Weissella spp.는 catalase 음성으로 포자를 형성하지 않는 Gram 양성 세균으로 상대적으로 적은 양의 유산을 생성하고, 포도당을 발효하여 젖산과 이산화탄소를 생성 하는 이상발효를 하는 것으로 알려져 있다. Weissella spp.

참고문헌 (25)

Leroy, F. and De Vuyst, L.: Lactic acid bacteria as functional starter cultures for the food fermentation industry. Trends Food Sci. Technol. 15, 67-78 (2004).

상세보기
Vyas, U. and Ranganathan, N.: Probiotics, prebiotics, and synbiotics: Gut and beyond. Gastroenterol. Res. Pract. 2012, 1-16 (2012).
Jeppsson, B., Mangell, P., and Thorlacius, H.: Use of probiotics as prophylaxis for postoperative infections. Nutri. 3, 604-612 (2011).

상세보기
Wallace, T.C., Guarner, F., Madsen, K., Cabana, M.D., Gibson, G., Hentges, E., and Sanders, M.E.: Human gut microbiota and its relationship to health and disease. Nutr. Rev. 69, 392-403 (2011).

상세보기
De Bruyne, K., Camu, N., De Vuyst, L., and Vandamme, P.: Weissella fabaria sp. nov., from a Ghanaian cocoa fermentation. Int. J. Syst. Evol. Microbiol. 60,1999-2005 (2010).

상세보기
Collins, M.D., Samelis, J., Metaxopoulos, J., and Wallbanks, S.: Taxonomic studies on some leuconostoc-like organisms from fermented sausages: description of a new genus Weissella for the Leuconostoc paramesenteroides group of species. J. Appl. Bacteriol. 75, 595-603 (1993).

상세보기
Kim, J.H., Lee, K.W., Han, N.S., Park, J.Y., and Chun, J.Y.: Importance of Weissella Species during Kimchi Fermentation and Future Works. J. Microbiol. Biotechnol. 38, 341-348 (2010).
Srionnual, S., Yanagida, F., Lin, L.H., Hsiao, K.N., and Chen, Y.S.: Weissellicin 110, a newly discovered bacteriocin from Weissella cibaria 110, isolated from plaa-som, a fermented fish product from Thailand. Appl. Environ. Microbiol. 73, 2247-50 (2007).

상세보기
Leong, K.H., Chen, Y.S., Lin, Y.H., Pan, S.F., Yu, B., and Wu, H.C., Yanagida, F.: Weissellicin L, a novel bacteriocin from sian-sianzih-isolated Weissella hellenica 4-7. J. Appl. Microbiol. 115, 70-76 (2013).

상세보기
Dieterich, G., Karst, U., Fischer, E. Wehland, J. and Jansch, L.: LEGER: knowledge database and visualization tool for comparative genomics of pathogenic and non-pathogenic Listeria species. Nucleic Acids Res. 34, D402-D406 (2006).

상세보기
Farber, J.M. and Peterkin, P.I.: Listeria monocytogenes, a food-borne pathogen. Microbiol. Rev. 55, 476-511 (1991).

상세보기
Gravesen, A., Z. Diao, J. Voss, B.B. Budde, and S. Knochel.: Differential inactivation of Listeria monocytogenes by Dand L lactic acid. Lett. Appl. Microbiol. 39, 528-532 (2004).

상세보기
Lu, Z., Sebranek, J.G., Dickson, J.S., Mendonca, A.F. and Bailey, T.B.: Application of predictive models to estimate Listeria monocytogenes growth on frankfurters treated with organic acid salts. J. Food Prot. 68, 2326-2332 (2005).

상세보기
Bae, J.W., Rhee, S.K., Park, J.R., Chung, W.H., Nam, Y.D., Lee, I., Kim, H. and Park, Y.H.: Development and evaluation of genome-probing microarray for monitoring lactic acid bacteria. Appl. Environ. Microbiol. 71, 8825-8835 (2005).

상세보기
Kim, M.J., and Chun, J.S.: Bacterial community structure in kimchi, a Korean fermented vegetable food, as revealed by 16S rRNA gene analysis. Int. J. Food Microbiol. 103, 91-96 (2005).

상세보기
Lee, J.S., Heo, G.Y., Lee, J.W., Oh, Y.J., Park, J.A., Park, Y.H., Pyun,Y.R., and Ahn, J.S.: Analysis of kimchi microflora using denaturing gradient gel electrophoresis. Int. J. Food Microbiol. 102, 143-150 (2005).

상세보기
Ahn, S.B., Park, H.E., Lee, S.M., Kim, S.Y., Shon, M.Y., and Lee, W.K.: Characteristics and immuno-modulatory effects of Weissella cibaria JW15 isolated from Kimchi, Korea traditional fermented food, for probiotic use. J. Biomed. Res. 14, 206-211 (2013).
Maurer, J.: The methodology of PCR. pp 27-40: In: PCR methods in foods. Maurer J (ed.), Springer, Inc., New York, NY, USA (2006).
Heo, S., Lee, S.K., Lee, C.H., Min, S.G., Park, J.S., and Kim. H.Y.: Morphological changes induced in Listeria monocytogenes V7 by a bacteriocin produced by Pediococcus acidilactici. J. Microbiol. Biotechnol. 17, 663-667 (2007).

원문보기 상세보기
Iseppi, R., Pilati, F., Marini, M., Toselli, M., Niederhausern, D.S., Guerrieri, F., Messi, P., Sabia, C., Manicardi, G., Anacarso, I., and Bondi, M.: Anti-listerial activity of a polymeric film coated with hybrid coatings doped with Enterocin 416K1 for use as bioactive food packaging. Int. J. Food Microbiol. 30, 281-287 (2008).
Shin, M.S., Han, S.K., Ryu, J.S., Kim, K.S., and Lee, W.K.: Isolation and partial characterization of a bacteriocin produced by Pediococcus pentosaceus K23-2 isolated from Kimchi. J. Appl. Microbiol. 105, 331-339 (2008).

상세보기
Trias, R., Badosa, E., Montesinos, E., and Baneras, L.: Bioprotective Leuconostoc strains against Listeria monocytogenes in fresh fruits and vegetables. Int. J. Food Microbiol. 127, 91-98 (2008).

상세보기
Boyer, R.R., Matak, K., Sumner, S.S., Meadows, B., Williams, R.C., Eifert, J.D., Birbari, W.: Survival of Listeria monocytogenes, Listeria innocua, and lactic acid bacteria in chill brines. J. Food Sci. 74, M219-M23 (2009).

상세보기
Aguilar, C., and KLOTZ, B.: Effect of the temperature on the antagonistic activity of lactic acid bacteria against Escherichia coli and Listeria monocytogenes. J. Food Safety. 30, 996-1015 (2010).

상세보기
de Carvalho, A.A., de Paula, R.A., Mantovani, H.C., and de Moraes, C.A.: Inhibition of Listeria monocytogenes by a lactic acid bacterium isolated from Italian salami. Food Microbiol. 23, 213-219 (2006).

상세보기

저자의 다른 논문 :

표제어: PCR

동의어: Packet Collision Rate

용어 설명 출처 목록 (6)

용어 설명: PCR은 세균 특이성이 있는 primer를 이용하여 적은 수의 세균이 있을지라도 쉽게 검출할 수 있는 유용한 방법이며, 이를 이용하여 구강 내 치면세균막이나 타액에서 직접 세균을 검출할 수 있게 되었다[8].

내보내기 구분	파일저장 인쇄 메일전송
구성항목	기본정보 상세정보 관리번호, 논문명, 저널/프로시딩명, 저자 , 발행년, 권, 호, 시작페이지, 끝페이지, 발행기관 관리번호, 논문명, 대등논문명, 저자 , 저널/프로시딩명, 발행기관, 발행년, 발행언어, 권, 호, 시작페이지, 끝페이지, ISBN, ISSN, 주제분야, 키워드, 초록(한글), 초록(영문), 저자(소속기관)
저장형식	Text(ASCII format) Excel format RefWorks Direct Export RIS format (for Reference Manager, ProCite, EndNote), Scholar's Aids, Mendeley
메일정보	받는사람 (필수) @ 보내는사람 (선택) @ 제목 내용 KISTI 검색결과 이메일 서비스
안내	총 건의 자료가 검색되었습니다. 다운받으실 자료의 인덱스를 입력하세요. (1-10,000) 검색결과의 순서대로 최대 10,000건 까지 다운로드가 가능합니다. 데이타가 많을 경우 속도가 느려질 수 있습니다.(최대 2~3분 소요) 다운로드 파일은 UTF-8 형태로 저장됩니다. 파일의 내용이 제대로 보이지 않을실 때는 웹브라우저 상단의 보기 -> 인코딩 -> 자동선택 여부를 확인하십시오. ~ Text(ASCII format) Excel format

연합인증