감태나무(Lindera glauca Blume) 에탄올 추출물의 항산화 및 인체 대장암세포 증식 억제 효과에 대한 연구 Antioxidative and Antiproliferative Effects of Lindera glauca Blume on Human Colorectal Cancer Cells원문보기
본 연구에서는 감태나무 추출물의 항산화 활성을 측정하기 위하여 총 폴리페놀 함량, DPPH 라디칼 소거능, 아질산염 소거능, 환원력 방법을 사용하였으며 HT-29와 HCT116 암세포를 이용하여 세포 증식 억제 효과를 측정하였다. 그 결과 본 연구에서 사용된 식물 중 감태나무 뿌리와 감태나무 줄기가 가장 높은 총 폴리페놀 함량을 보였으며 또한 DPPH 라디칼 소거능, 아질산염 소거 활성, 환원력도 가장 높게 나타났다. 암세포 증식 억제 효능평가에서도 감태나무 줄기와 뿌리는 대장암세포 HT-29, HCT116 세포주의 증식 억제에 대한 높은 활성을 나타냈다. 이러한 연구 결과는 감태나무의 기능성 소재로써의 기초적 데이터베이스로 활용할 수 있을 것으로 생각되며, 앞으로 더욱 더 감태나무의 질병에 대한 효능 및 기전연구가 지속되어야 할 것으로 생각된다.
본 연구에서는 감태나무 추출물의 항산화 활성을 측정하기 위하여 총 폴리페놀 함량, DPPH 라디칼 소거능, 아질산염 소거능, 환원력 방법을 사용하였으며 HT-29와 HCT116 암세포를 이용하여 세포 증식 억제 효과를 측정하였다. 그 결과 본 연구에서 사용된 식물 중 감태나무 뿌리와 감태나무 줄기가 가장 높은 총 폴리페놀 함량을 보였으며 또한 DPPH 라디칼 소거능, 아질산염 소거 활성, 환원력도 가장 높게 나타났다. 암세포 증식 억제 효능평가에서도 감태나무 줄기와 뿌리는 대장암세포 HT-29, HCT116 세포주의 증식 억제에 대한 높은 활성을 나타냈다. 이러한 연구 결과는 감태나무의 기능성 소재로써의 기초적 데이터베이스로 활용할 수 있을 것으로 생각되며, 앞으로 더욱 더 감태나무의 질병에 대한 효능 및 기전연구가 지속되어야 할 것으로 생각된다.
Various medicinal plants were collected, air-dried, and subjected to extraction with ethanol. Ethanol extracts were screened for their efficacies as antioxidative and antiproliferative agents against cancer cells. Among the 15 species, extract of Lindera glauca Blume stem with a total polyphenolic c...
Various medicinal plants were collected, air-dried, and subjected to extraction with ethanol. Ethanol extracts were screened for their efficacies as antioxidative and antiproliferative agents against cancer cells. Among the 15 species, extract of Lindera glauca Blume stem with a total polyphenolic content of $70.99{\pm}1.88{\mu}g/TAE\;{\mu}g$, was found to possess high DPPH radical scavenging ($IC_{50}=30.54{\pm}0.62{\mu}g/mL$), nitrite scavenging ($IC_{50}=787.94{\pm}89.28{\mu}g/mL$), and reducing power activities ($595.76{\pm}1.90{\mu}g/mL$). The antiproliferative activities of plant extracts were determined using MTT assay in human colorectal cancer cells. Extracts of stems and roots from L. glauca Blume were found to possess high anti-proliferative activities in HT-29 and HCT116 cells ($IC_{50}=711.52{\pm}40.27{\mu}g/mL$ and $IC_{50}=85.07{\pm}4.06{\mu}g/mL$, respectively). These results suggest that L. glauca Blume extract could be a useful natural antioxidant and anticancer resource.
Various medicinal plants were collected, air-dried, and subjected to extraction with ethanol. Ethanol extracts were screened for their efficacies as antioxidative and antiproliferative agents against cancer cells. Among the 15 species, extract of Lindera glauca Blume stem with a total polyphenolic content of $70.99{\pm}1.88{\mu}g/TAE\;{\mu}g$, was found to possess high DPPH radical scavenging ($IC_{50}=30.54{\pm}0.62{\mu}g/mL$), nitrite scavenging ($IC_{50}=787.94{\pm}89.28{\mu}g/mL$), and reducing power activities ($595.76{\pm}1.90{\mu}g/mL$). The antiproliferative activities of plant extracts were determined using MTT assay in human colorectal cancer cells. Extracts of stems and roots from L. glauca Blume were found to possess high anti-proliferative activities in HT-29 and HCT116 cells ($IC_{50}=711.52{\pm}40.27{\mu}g/mL$ and $IC_{50}=85.07{\pm}4.06{\mu}g/mL$, respectively). These results suggest that L. glauca Blume extract could be a useful natural antioxidant and anticancer resource.
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문제 정의
또한 항산화력이 우수한 약용식물 및 식용식물을 이용한 체내 면역반응이나 항암 효능에 관한 연구가 국내외에서 활발히 이루어지고 있다(7-14). 최근 국내에서도 식생활 방식의 서구화로 인하여 대장암 발병률이 급격히 증가하고 있고(15-18), 본 연구에서는 식용 가능한 여러 식물들의 항산화 및 대장암 항암 활성을 측정하고자 하였다. 본 연구에서 사용된 식물들은 식품의약품안전처 식품 원재료 데이터베이스(19)에서 확인된 식용 가능한 식물을 이용하였다.
가설 설정
1)X650 is the concentration of 50% inhibition. 2)Mean±standard deviation.
2)Mean±standard deviation. 3)ND: not detected. 4)BHT was used as a positive control
제안 방법
)로 흡광도를 측정하였다. DPPH 라디칼 소거 활성은 추출물의 첨가 전과 후의 차이를 1-[(시료첨가 구의 흡광도/ 무첨가구의 흡광도)X100]인 백분율로 계산하여 추출물에 의해서 DPPH 라디칼을 50% 소거 활성을 나타내는 추출물의 농도를 IC50 값으로 표현하였다.
)로 562 nm에서 흡광도를 측정하였다. 대조구는 Griess reagent 대신 증류수를 가하여 동일한 방법으로 측정하여 추출물의 첨가구와 무첨가 구 사이의 흡광도 차이를 백분율인 1-[(시료첨가구의 흡광도/ 무첨가구의 흡광도)X100]으로 나타냈으며 추출물이 아질산염을 50% 소거시키는 농도를 IC50 값으로 표현하였다.
이 plate를 다시 37℃, 5% CO2 incubator 에서 48시간 배양하고 배지를 제거한 후 MTT(1 mg/mL) 용액을 각각 200 此씩 첨가하여 4시간 동안 37℃, 5% CO2 incubator에서 배양하고 MTT가 환원되도록 하였다. 배양 후 formazan 형성을 현미경으로 관찰하고 바닥에 형성된 formazan 결정이 흐트러지지 않도록 주의하면서 모든 well 의 배지를 제거하고 각 well에 DMSO 200 成씩 첨가한 후 분광광도계(Biochrom Co.)를 이용하여 흡광도 570 nm에서 측정하였다. 추출물을 처리하지 않은 세포를 대조군으로 100% 하였을 때의 상대적인 세포사멸능으로 나타내었다.
assay를 실시하였다(23). 배양된 암세포는 24 well plate에 1X105 cells/well이 되도록 900 uL씩 분주하여 37 ℃, 5% CO2 incubator에서 24시간 배양한 후 각 시료를 RPMI 1640 배지로 희석하여 각 well당 일정 농도의 추출물을 100 此씩 첨가하고, 대조군에는 시료 대신 PBS를 100 UL씩 첨 가하였다. 이 plate를 다시 37℃, 5% CO2 incubator 에서 48시간 배양하고 배지를 제거한 후 MTT(1 mg/mL) 용액을 각각 200 此씩 첨가하여 4시간 동안 37℃, 5% CO2 incubator에서 배양하고 MTT가 환원되도록 하였다.
본 연구에서는 감태나무 추출물의 항산화 활성을 측정하기 위하여 총 폴리페놀 함량, DPPH 라디칼 소거능, 아질산염소거능, 환원력 방법을 사용하였으며 HT-29와 HCT116 암세포를 이용하여 세포 증식 억제 효과를 측정하였다. 그 결과 본 연구에서 사용된 식물 중 감태나무 뿌리와 감태나무 줄기가 가장 높은 총 폴리페놀 함량을 보였으며 또한 DPPH 라디칼 소거능, 아질산염 소거 활성, 환원력도 가장 높게 나타났다.
세포배양을 위해 사용한 배지는 RPMI 1640 배지에 10% FBS를 첨가하고 미생물의 오염이나 증식을 억제하기 위해 1% penicillin 을 첨가하였다. 95%의 습도가 유지되는 37℃, 5% CO2 in- cubator(Thermo Fisher Scientific Inc.
9 % 에탄올을 가하여 교반하면서 환류 냉각하여 추출하고 여과(Wh atman filter paper No 2, Whatman, Newton, MA, USA)하여 얻었다. 이렇게 얻어진 추출액을 회전감압농축기 (rotary vacuum evaporator, BUCHI Labortechnik AG, Flawil, Switzerland)로 감압농축 건조시켜 고형물의 함량을 산출하였다. 식물의 추출물 수율(%)은 [추출 분말의 무게(g)/ 처음 사용한 시료(g)]x100으로 나타내었다.
활성을 측정하였다. 일정 농도의 에탄올 추출물 시료 200 uL에 1.5 mM DPPH 용액(99.9% ethyl alcoh이에 용해) 400 uL를 가한 후, vortex mixer로 10초간 진탕하고 30분간 실온 암실에서 반응시킨 다음 517 nm에서 분광광도계(Biochrom Co.)로 흡광도를 측정하였다. DPPH 라디칼 소거 활성은 추출물의 첨가 전과 후의 차이를 1-[(시료첨가 구의 흡광도/ 무첨가구의 흡광도)X100]인 백분율로 계산하여 추출물에 의해서 DPPH 라디칼을 50% 소거 활성을 나타내는 추출물의 농도를 IC50 값으로 표현하였다.
총 페놀 함량은 Gutfringer(20)의 방법을 변형하여 측정하였다. 페놀성 물질인 phosphomolybdic acid와 반응하여 청색을 나타내는 현상을 이용한 방법으로 측정하였다.
페놀성 물질인 phosphomolybdic acid와 반응하여 청색을 나타내는 현상을 이용한 방법으로 측정하였다. 식물추출물과 Folin-Ciocalteu reagent(Sigma-Aldrich Co.
, Cambridge, UK)를 이용하여 725 nm에서 흡광도를 측정하였다. 표준물질로 tannic acid(Sigma-Aldrich Co.)를 이용하였으며 표준물질의 표준 곡선으로부터 총 폴리페놀 함량(TAE mg/g)을 계산하였다.
대상 데이터
, Luffa cylindrica Roemer, Canavalia gladiata DC., Artemisia annua Linne, Momordica charantia L., Dendropanax morbifera Nakai를 사용하였으며 , 본 연구에서 생리활성 이 가장 높고 현재까지의 생리활성 연구가 미흡한 감태나무(L glauca Blum) 추출물을 중심으로 연구를 지속하였다.
25% trypsin-EDTA, fetal bovine serum(FBS), penicilline Gibco사(Brooklyn, NY, USA) 제품을 사용하였다. 3-(4, 5-Dimethylthiazol-2-yl) -2, 5-diphenyltetrazolium bromide(MTT)는 Biosesang 사(Gyeonggi, Korea) 제품을 구매하여 사용하였고 본 실험에 사용된 그 외의 시약 및 용매는 모두 일급 시약의 등급을 사용하였다.
본 실험에서 사용된 소재는 식품의약품안전처 식품 원재료 데이터베이스(19)에서 모두 식용으로 가능함을 확인한 약초로서 상기 15종의 소재는 2013년 5월에 광주광역시 광산구 월곡시장에서 구입하였다. 모든 유용식물은 15일간 자연 건조한 후 분말화하였다.
본 실험에서는 인간 대장암 유래의 세포주로 HT-29와 HCT116(KCLB, Seoul, Korea)을 사용하였다. 세포배양을 위해 사용한 배지는 RPMI 1640 배지에 10% FBS를 첨가하고 미생물의 오염이나 증식을 억제하기 위해 1% penicillin 을 첨가하였다.
최근 국내에서도 식생활 방식의 서구화로 인하여 대장암 발병률이 급격히 증가하고 있고(15-18), 본 연구에서는 식용 가능한 여러 식물들의 항산화 및 대장암 항암 활성을 측정하고자 하였다. 본 연구에서 사용된 식물들은 식품의약품안전처 식품 원재료 데이터베이스(19)에서 확인된 식용 가능한 식물을 이용하였다.
(Hamp-ton, NH, USA)의 HPLC급 시약을 사용하였다. 세포배양에 사용된 RPMI 1640 배지 및 0.25% trypsin-EDTA, fetal bovine serum(FBS), penicilline Gibco사(Brooklyn, NY, USA) 제품을 사용하였다. 3-(4, 5-Dimethylthiazol-2-yl) -2, 5-diphenyltetrazolium bromide(MTT)는 Biosesang 사(Gyeonggi, Korea) 제품을 구매하여 사용하였고 본 실험에 사용된 그 외의 시약 및 용매는 모두 일급 시약의 등급을 사용하였다.
데이터처리
실험 결과는 3번의 반복실험으로 평균土표준편차로 나타내었고 SPSS(version 19.0, SPSS Inc., Chicago, IL, USA) 를 이용하여 분산분석(ANOVA)을 실시하였으며, 각 측정 평균값의 유의성을 항산화 효과는 Duncan's multiple range test로 검정하였고 항암 효능 효과는 Dunnett's lest로 검정하였다. 유의성은 *P<0.
이론/모형
DPPH 라디칼 소거능의 측정은 Jeong 등(21)의 방법에 준하여 활성을 측정하였다. 일정 농도의 에탄올 추출물 시료 200 uL에 1.
식물 추출물의 암세포 증식 억제 효능을 측정하기 위해 MTT assay를 실시하였다(23). 배양된 암세포는 24 well plate에 1X105 cells/well이 되도록 900 uL씩 분주하여 37 ℃, 5% CO2 incubator에서 24시간 배양한 후 각 시료를 RPMI 1640 배지로 희석하여 각 well당 일정 농도의 추출물을 100 此씩 첨가하고, 대조군에는 시료 대신 PBS를 100 UL씩 첨 가하였다.
성능/효과
1C와 같다. 감태나무 추출물의 환원력을 흡광도 수치(OD 700)가 0.500일 때의 농도를 산출하여 나타낸 결과 대조구로 사용된 합성 항산화제인 BHT 흡광도 수치(OD 700)가 0.500일 때의 농도는 250 ug/mL 농도로 확인되었고, 감태나무 줄기와 뿌리 추출물은 각각 527 Ug/mL, 595 ug/mL 농도로 확인되었다. 시료의 환원력은 전자 공여를 통한 라디칼의 소거능과 관련성이 높기 때문에 DPPH 라디칼 소거능이 높은 시료인 경우 환원력이 대체적으로 높은 것으로 알려져 있다(38).
여러 식물들의 DPPH 라디칼 소거 활성에 미치는 영향을 Table 1에 나타내었다. 감태나무의 DPPH 라디칼 소거능 IC50 을 산출한 결과 감태나무 뿌리 29.4±0.3 ug/mL, 감태나무 줄기 30.5 ±0.6 ug/mL이고, 본 연구의 결과에서 대조구로 사용된 합성 항산화제인 BHT는 82.2±4.0 ug/mL의 라디칼 소거 능을 보였다. 대조구로 사용된 BHT가 100 ug/mL 농도에서 55.
이용하여 세포 증식 억제 효과를 측정하였다. 그 결과 본 연구에서 사용된 식물 중 감태나무 뿌리와 감태나무 줄기가 가장 높은 총 폴리페놀 함량을 보였으며 또한 DPPH 라디칼 소거능, 아질산염 소거 활성, 환원력도 가장 높게 나타났다. 암세포 증식 억제 효능평가에서도 감태나무 줄기와 뿌리는 대장암세포 HT-29, HCT116 세포주의 증식 억제에 대한 높은 활성을 나타냈다.
0 ug/mL의 라디칼 소거 능을 보였다. 대조구로 사용된 BHT가 100 ug/mL 농도에서 55.14%의 소거능을 나타내었고 감태나무 줄기 추출물은 100 ug/mL 농도에서 94.09%의 소거능을 나타내었으며, 감태나무 뿌리 추출물은 100 ug/mL 농도에서 89.46%로 BHT보다 높은 DPPH 라디칼 소거능을 보였다(Fig. 1A). 감태나무의 경우 현재까지 추출물의 항산화능이 연구된 바가 없고 높은 항산화능으로 인해 향후 천연 항산화 자원으로서 이용 가능성이 높을 것으로 생각된다.
2A). 또한 HCT116 세포주에 대해 감태나무 뿌리 85.0±4.0 ug/mL, 감태나무 줄기 470.6±2.0 Ug/mL로 대장암세포 성장을 억제하는 것으로 확인하였다 (Fig. 2B).
IC50 은 시료 농도에 따른 암세포 증식 억제능 변화 곡선으로부터 암세포를 50% 억제시키는 농도를 표시한 것이다. 먼저 HT-29 세포주에 대해 감태나무 줄기 711.5±40.2 ug/mL, 감태나무 뿌리 1, 016.2±259.0 ug/mL로 대장암세포 성장을 억제하는 것으로 확인하였다(Fig. 2A). 또한 HCT116 세포주에 대해 감태나무 뿌리 85.
본 연구의 결과에서 보이는 것과 같이 감태나무 줄기와 뿌리는 항산화능뿐만 아니라 대장암세포의 증식 억제에 높은 효능이 있는 것으로 확인되었다. 이의 유용성분에 관한 연구는 앞으로 다각도로 확인이 필요할 것으로 생각된다.
그 결과 본 연구에서 사용된 식물 중 감태나무 뿌리와 감태나무 줄기가 가장 높은 총 폴리페놀 함량을 보였으며 또한 DPPH 라디칼 소거능, 아질산염 소거 활성, 환원력도 가장 높게 나타났다. 암세포 증식 억제 효능평가에서도 감태나무 줄기와 뿌리는 대장암세포 HT-29, HCT116 세포주의 증식 억제에 대한 높은 활성을 나타냈다. 이러한 연구 결과는 감태나무의 기능성 소재로써의 기초적 데이터베이스로 활용할 수 있을 것으로 생각되며, 앞으로 더욱 더 감태나무의 질병에 대한 효능 및 기전연구가 지속되어야 할 것으로 생각된다.
)를 이용하여 흡광도 570 nm에서 측정하였다. 추출물을 처리하지 않은 세포를 대조군으로 100% 하였을 때의 상대적인 세포사멸능으로 나타내었다.
후속연구
1A). 감태나무의 경우 현재까지 추출물의 항산화능이 연구된 바가 없고 높은 항산화능으로 인해 향후 천연 항산화 자원으로서 이용 가능성이 높을 것으로 생각된다.
IC50은 시료 농도에 따른 아질산염 소거능 변화 곡선으로부터 아질산염을 50% 소거시키는 농도를 표시한 것이다. 그 결과 감태나무 줄기 787.9±89.2 ug/mL, 감태나무 뿌리 796.7±40.0 ug/mL 활성을 보여주었으나 positive contr이인 합성 항산화제 BHT의 아질산염 소거능은 447.3 ±13.7 ug/mL와 비교하였을 때 감태나무 줄기 및 뿌리는 비슷한 활성을 확인하여 일상에서 노출될 수 있는 발암성 nitrosamine의 생성 억제에도 효과를 나타낼 수 있을 것으로 판단되며, 이를 기반으로 다각적인 연구가 필요할 것이라고 생각된다. Kang 등(36)의 연구에서 phenolic acid, flavonoids 등 페놀화합물질의 함량이 높을수록 아질산염 소거 능이 높아지는 양적 상관관계를 나타내는 것으로 보고하였다.
암세포 증식 억제 효능평가에서도 감태나무 줄기와 뿌리는 대장암세포 HT-29, HCT116 세포주의 증식 억제에 대한 높은 활성을 나타냈다. 이러한 연구 결과는 감태나무의 기능성 소재로써의 기초적 데이터베이스로 활용할 수 있을 것으로 생각되며, 앞으로 더욱 더 감태나무의 질병에 대한 효능 및 기전연구가 지속되어야 할 것으로 생각된다.
효능이 있는 것으로 확인되었다. 이의 유용성분에 관한 연구는 앞으로 다각도로 확인이 필요할 것으로 생각된다.
참고문헌 (38)
Valko M, Leibfritz D, Moncol J, Cronin MT, Mazur M, Telsor J. 2007. Free radicals and antioxidant in normal physiological functions and human disease. Int J Biochem Cell Biol 39: 44-84.
Lakshimi SV, Padmaja G, Kuppusamy P, Kutala VK. 2009. Oxidative stress in cardiovascular disease. Indian J Biochem Biophys 46: 421-440.
Reuter S, Gupta SC, Chaturvedi MM, Aggarwal BB. 2010. Oxidative stress inflammation and cancer; How are they linked? Free Radic Biol Med 49: 1603-1616.
Kim HH, Park GH, Park KS, Lee JY, An BJ. 2010. Anti-oxidant and anti-inflammation activity of fractions from Aster glehni Fr. Schm. Korean J Microbiol Biotechnol 38: 434-441.
Park HJ, Kang SA, Lee JY, Cho YJ. 2012. Antioxidant activities of extracts from medical plants. Korean J Food Preserv 19: 744-750.
Choi IS, Cha EJ, Lee YR, Kim JK. 2012. Antioxidant and anticancer activities of Yak-Sun tea prepared by oriental medicinal herbs. Korean J Food & Nutr 25: 447-453.
Won YS, Lee JH, Kwon SJ, Ahn DU, Shin DY, Seo KI. 2014. Anticancer effect of cultivated Orostachys japonicus on human prostate cancer cells. J Korean Soc Food Sci Nutr 43: 67-73.
Yeo HS, Lee MH, Ko SG, Choi YK, Jun CY, Park JH. 2014. Antineoplastic effect of several herbal medicines on SNU-80 anaplastic thyroid carcinoma cell line. J Soc Prev Korean Med 18: 83-92.
Kim HH, Kwon JH, Park KH, Kim MH, Oh MH, Choe KI, Park SH, Jin HY, Kim SS, Lee MW. 2012. Screening of antioxidative activities and antiinflammatory activities in local native plants. Kor J Pharmacogn 43: 85-93.
Kim HJ, Lee DJ, Ku JJ, Choi K, Park KW, Kang SH, Moon C, Lee PJ. 2013. Anti-inflammatory effect of extracts from folk plants in Ulleung island. Korean J Plant Res 26: 169-177.
Jeong SM, Kim SY, Park HR, Lee SC. 2004. Effect of farinfrared radiation on the activity of extracts from Citrus unshiu peels. J Korean Soc Food Sci Nutr 33: 1580-1583.
Yen GH, Chen HY. 1995. Antioxidant activity of various tea extracts in relation to their antimutagenicity. J Agric Food Chem 45: 27-32.
Mosmann T. 1983. Rapid colorimetric assay for the cellular growth and survival; application to proliferation and cytotoxicity assays. J Immunol Methods 65: 56-63.
Kim SY, Kim JH, Kim SK, Oh MJ, Jung MY. 1994. Antioxidant activities of selected oriental herb extracts. J Am Oil Chem Soc 71: 633-640.
Kim EU, Baik IH, Kim JH, Kim SR, Rhyu MR. 2004. Screening of the antioxidant activity of some medicinal plants. Korean J Food Sci Technol 36: 333-338.
Nicoli MC, Anese M, Parpinel M. 1999. Influence of processing on the antioxidant properties of fruit and vegetables. Trends Food Sci Technol 10: 94-100.
Lee YS. 2007. Antioxidative and physiological activity of extracts of Angelica dahurica leaves. Korean J Food Preserv 14: 78-86.
Ahn SI, Heuing BJ, Son JY. 2007. Antioxidative activities and nitrite-scavenging abilities of some phenolic compounds. Korean J Food Cookery Sci 23: 19-24.
Duval B, Shetty K. 2001. The stimulation of phenolics and antioxidant activity in pea (Pisum sativum) elicited by genetically transformed anise root extract. J Food Biochem 25: 361-377.
Huh GW, Park JH, Kang JH, Jeong TS, Kang HC, Baek NI. 2014. Flavonoids from Lindera glauca Blume as low-density lipoprotein oxidation inhibitors. Nat Prod Res 28: 831-834.
Choi Y, Lee SM, Chun J, Lee HB, Lee J. 2006. Influence of heat treatment on the antioxidant activities and polyphenolic compounds of Shiitake (Lentiuns edodes) mushroom. Food Chem 99: 381-387.
Hassas-Roudsari M, Chang PR, Pegg RB, Tyler RT. 2009. Antioxidant capacity of bioactives extracted from canola meal by subcritical water, ethanolic and hot water extraction. Food Chem 114: 717-726.
Massey RC, Crews C, Davies R, McWeeny DJ. 1978. A study of the competitive nitrosations of pyrrolidine, ascorbic acid, cysteine and p-cresol in a protein-based model system. J Sci Food Agric 29: 815-821.
Yeon SH, Ham H, Sung J, Kim Y, Namkoong S, Jeong HS, Lee J. 2013. Antioxidant activities of hot water extract from Cornus waltert Wanger against oxidative stress induced by tert-butyl hydroperoxide in HepG2 cells. J Korean Soc Food Sci Nutr 42: 1525-1532.
Kim SJ, Kim DW. 2007. Antioxidative activity of hot water and ethanol extracts of Lespdeza cuneata seeds. Korean J Food Preserv 14: 332-335.
Kang YH, Park YK, Lee GD. 1996. The nitrite scavenging and electron donating ability of phenolic compounds. Korean J Food Sci Technol 28: 232-239.
Kwak JH, Choi GN, Park JH, Kim JH, Jeong HR, Jeong CH, Heo HJ. 2010. Antioxidant and neuronal cell protective effect of purple sweet potato extract. J Agric Life Sci 44: 57-66.
Gordon MH. 1990. The mechanism of antioxidant action in vitro. In Food Antioxidants. Hudson BJF, ed. Elsevier Applied Science Ltd., London, UK. p 1-18.
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