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감태(Ecklonia cava) 추출물의 항산화 및 세포보호 활성
Antioxidant and Cellular Protective Activities of Ecklonia cava Extracts against Reactive Oxyegen Species 원문보기

大韓化粧品學會誌 = Journal of the society of cosmetic scientists of Korea, v.41 no.3, 2015년, pp.287 - 294  

유차영 (서울과학기술대학교 정밀화학과 화장품종합기술연구소) ,  김시윤 (반포고등학교) ,  박정원 (반포고등학교) ,  성수안 (반포고등학교) ,  김다애 (반포고등학교) ,  박지현 (반포고등학교) ,  현송화 (서울과학기술대학교 정밀화학과 화장품종합기술연구소) ,  박수남 (서울과학기술대학교 정밀화학과 화장품종합기술연구소)

초록
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본 연구에서는 갈조류인 감태의 추출물과 그 분획들의 항산화 활성을 측정하였다. 모든 실험에서 감태의 50% 에탄올 추출물과 에틸아세테이트 분획, 아글리콘 분획을 사용하였다. DPPH (1,1-diphenyl-2-picrylhydrazyl)법을 이용한 자유 라디칼 소거 활성($FSC_{50}$)에서 에틸아세테이트 분획($FSC_{50}=6.98{\mu}g/mL$)과 아글리콘 분획($7.03{\mu}g/mL$)은 비교물질인 (+)-${\alpha}$-tocopherol($8.98{\mu}g/mL$)과 유사한 활성을 나타냈다. 루미놀 발광법을 이용하여 $Fe^{3+}-EDTA/H_2O_2$계에서 활성산소 소거 활성(총 항산화능, $OSC_{50}$) 결과, 모든 추출물과 분획들 중에서 아글리콘 분획($OSC_{50}=14.48{\mu}g/mL$)이 가장 큰 항산화능을 나타내었으나, 강력한 항산화제인 L-ascorbic acid ($6.88{\mu}g/mL$)보다는 낮았다. $^1O_2$로 유도된 사람 적혈구 세포 손상에 있어서 50% 에탄올 추출물은 $5{\sim}50{\mu}g/mL$에서 농도 의존적인 세포보호 효과를 나타냈다. $10{\mu}g/mL$에서 에틸아세테이트 분획과 아글리콘 분획의 세포보호 효과(${\tau}_{50}$)는 각각 442.0 min 및 539.9 min으로 세포보호 활성이 크게 나타났다. 3종류의 감태 추출물 및 분획은 $10{\mu}g/mL$에서, 비교물질인 지용성 항산화제 (+)-${\alpha}$-tocopherol (40.6 min)보다 훨씬 더 큰 세포보호 활성을 나타냈다. 이러한 결과들은 감태 추출물과 그 분획물들이 항노화 관련 화장품 분야에서 항산화제로서 이용 가능성이 있음을 시사하였다.

Abstract AI-Helper 아이콘AI-Helper

In this study, we investigated the antioxidative effects of brown seaweed Ecklonia cava extract and its subfractions. All experiments were performed with 50% ethanol extract, ethyl acetate fraction and aglycone fraction of E. cava. The free radical (1,1-diphenyl-2-picrylhydrazyl, DPPH) scavenging ac...

주제어

AI 본문요약
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제안 방법

  • 본 연구에서는 감태 추출물의 기능성 화장품 소재로서의 가능성이 있는지 확인하고자 50% 에탄올 추출물, 에틸아세테이트 분획 및 아글리콘 분획물을 제조하였으며, 이들 추출물 및 분획물에 대하여 free radical 소거활성, luminol 발광법을 이용한 Fe3+-EDTA/H2O2계에 있어서 활성산소 소거활성인 총 항산화능 평가 및 광노화에서 가장 중요한 활성산소인 1O2으로 유도된 사람 세포 손상에 대한 세포보호 효과를 평가하고자 하였다.

대상 데이터

  • 비교물질로 사용한 (+)-α-tocopherol (1,000 IU vitamin E/g)과 L-ascorbic acid는 Sigma (USA)에서 구입하였다. 본 실험에 사용한 감태는 2015년 7월 경 제주도 서귀포시에서 채집한 것으로 홍일당에서 무료로 샘플을 제공받았으며, 50% 에탄올로 추출하여 사용하였다.

데이터처리

  • 모든 실험은 3회 반복하였고 통계분석은 5% 유의수준에서 Student’s t-test를 행하였다.

이론/모형

  • Free radical 소거 활성을 평가하기 위해 DPPH법을 이용하였다. 비교적 안정한 라디칼인 DPPH (1,1-diphenyl2-picrylhydrazyl)에 대한 전자주게 능력을 통하여 시료의 환원력을 측정한다.
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질의응답

핵심어 질문 논문에서 추출한 답변
UVB는 피부에 어떤 영향을 주는가? 반면에 UVA는 표피를 통과하여 진피까지 침투한다. 에너지가 큰 UVB는 표피에 있는 DNA 염기나 방향족 곁사슬을 갖는 단백질의 아미노산 등과 같은 발색단에 흡수되어 유기 라디칼이나 라디칼 양이온 또는 라디칼 음이온 등을 생성시킴으로써 피부노화에 영향을 미칠 수 있다. 장파장의 UVA는 포르피린 등의 광증감물질에 의한 흡수를 통하여 싱글렛 옥시젼(1O2)을 비롯한 활성산소종(reactive oxygen species, ROS)을 생성시킨다[4].
감태는 무엇인가? 감태(Ecklonia cava)는 다시마목 미역과에 속하는 갈조류의 일종으로, 한반도와 일본 등 온대 연안에 분포한다. 감태는 한국의 제주도에서 풍부하게 생산되며, 식품 첨가물, 가축 사료, 비료, 의약품 분야에서 널리 사용된다[16].
피부 노화의 원인이 되는 두 가지 과정은 각각 어떤 것인가? 피부 노화의 원인은 일반적으로 두 가지 과정으로 분류하고 있다. 첫째는 선천적 또는 내인적 노화(innate or intrinsic aging)로서, 생물학적 시간(the biologic clock)에 따라 다양한 장기 및 조직이 비가역적으로 퇴화됨으로써 나타나는 노화이다. 두 번째는 외인적 노화(extrinsic aging)로서 이는 외부 환경 요소에 노출된 결과로서 나타난다. 외인적 노화 중 가장 대표적인 현상은 “광노화(photoaging)”이며 주원인은 피부가 자외선(ultraviolet rays, UV)에 지속적으로 노출될 때 나타난다[1-3].
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참고문헌 (21)

  1. J. Uitto and E. F. Bernstein, Molecular mechanisms of cutaneous aging: Connective tissue alterations in the dermis, J. Invest. Dermatol. Symp. Proc., 3(1), 41 (1998). 

  2. S. N. Park, Skin aging and antioxidant, J. Soc. Cosmet. Scientists Korea, 23(3), 75 (1997). 

  3. B. A. Gilchrest, Biochemical and molecular changes in photodamaged skin, ed. B. A. Gilchrest, 168, Photodamage, Blackwell Science, Cambridge (1995). 

  4. K. M. Hanson and J. D. Simon, Epidermal trans-urocanic acid and the UV-A-induced photoaging of the skin, Proc. Natl. Acad. Sci. U.S.A., 95(18), 10576 (1998). 

  5. F. Urbach, Biological responses to UVA radiation, ed. F. Urbach, 1, Valdemar Publishing Company, Overland Park (1992). 

  6. H. Masaki, T. Atsumi, and H. Sakurai, Detection of hydrogen peroxide and hydroxyl radicals in murine skin fibroblasts under UVB irradiation, Biochem. Biophys. Res. Commun., 206(2), 474 (1995). 

  7. B. A. Jurkiewicz and G. R. Buettnerf, EPR detection of free radicals in UV-irradiated skin: Mouse versus human, Photochem. Photobiol., 64(6), 918 (1996). 

  8. P. Brenneisen, J. Wenk, L. O. Klotz, M. Wlaschek, K. Briviba, T. Krieg, H. Sies, and K. Scharffetter-Kochanek, Central role of ferrous/ferric iron in the ultraviolet B irradiation-mediated signaling pathway leading to increased interstitial collagenase (matrix-degrading metalloproteinase (MMP)-1) and stromelysin-1 (MMP-3) mRNA levels in cultured human dermal fibroblasts, J. Biol. Chem., 273, 5279 (1998). 

  9. H. N. Ananthaswamy and W. E. Pierceall, Molecular mechanisms of ultraviolet radiation carcinogenesis, Photochem. Photobiol., 52(6), 1119 (1990). 

  10. R. Ogura, M. Sugiyama, J. Nishi, and N. Haramaki, Mechanism of lipid radical formation following exposure of epidermal homogenate to ultraviolet light, J. Invest. Dermatol., 97, 1044 (1991). 

  11. S. N. Park, D. H. Won, J. P. Hwang, and S. B. Han, Cellular protective effects of dehydroeffusol isolated from Juncus effusus L. and the mechanisms underlying these effects, J. Ind. Eng. Chem., 20, 3046 (2014). 

  12. S. N. Park, S. Y. Kim, G. N. Lim, N. R. Jo, and M. H. Lee, In vitro skin permeation and cellular protective effects of flavonoids isolated from Suaeda asparagoides extracts, J. Ind. Eng. Chem., 18, 680 (2012). 

  13. H. S. Rho, C. S. Lee, S. M. Ahn, Y. D. Hong, S. S. Shin, Y. H. Park, and S. N. Park, Studies on tyrosinase inhibitory and antioxidant activities of benzoic acid derivatives containing kojic acid moiety, Bull. Korean Chem. Soc., 32(12), 4411 (2011). 

  14. R. E. Moore, Algal nonisoprenoids, marine natural products, chemical and biological perspective, ed. P. J. Scheuer, 1, 44, Academic Press, New York (1978). 

  15. S. Koyanagi, N. Tanigawa, H. Nakagawa, S. Soeda, and H. Shimeno, Oversulfation of fucoidan enhances its anti-angiogenic and anti-tumor activities, Biochem. Pham., 65(2), 173 (2003). 

  16. S. J. Heo, E. J. Park, K. W. Lee, and Y. J. Jeon, Antioxidant activities of enzymatic extracts from brown seaweeds, Bioresour. Technol., 96(14), 1613 (2005). 

  17. M. A. Ragan and K. W. Glombitza, Phlorotannins: Brown algal polyphenols, Progress in Phycological Research, 4, 130 (1986). 

  18. A. R. Kim, T. S. Shin, M. S. Lee, J. Y. Park, K. E. Park, N. Y. Yoon, J. S. Kim, J. S. Choi, B. C. Jang, D. S. Byun, N. K. Park, and H. R. Kim, Isolation and identification of phlorotannins from Ecklonia stolonifera with anti-oxidant and anti-inflammatory properties, J. Agric. Food Chem., 57(9), 3483 (2009). 

  19. S. J. Heo, S. C. Ko, S. H. Cha, D. H. Kang, H. S. Park, Y. U. Choi, D. K. Kim, W. K. Jung, and Y. J. Jeon, Effects of phlorotannins isolated from Ecklonia cava on melanogenesis and their protective effects against photo-oxidation stress induced by UV-B radiation, Toxicol. In Vitro, 23(6), 1123 (2009). 

  20. Q. T. Le, Y. Li, Z. J. Qian, M. M. Kim, and S. K. Kim, Inhibitory effects of polyphenols isolated from marine alga Ecklonia cava on histamine release, Process Biochem., 44(2), 168 (2008). 

  21. M. J. Joe, S. N. Kim, H. Y. Choi, W. S. Shin, G. M. Park, D. W. Kang, and Y. K. Kim, The inhibitory effects of eckol and dieckol from Ecklonia stolonifera on the expression of matrix metalloproteinase-1 in human dermal fibroblasts, Biol. Pharm. Bull., 29(8), 1735 (2006). 

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