호르몬 처리에 의한 능성어 Epinephelus septemfasciatus의 배란유도 효과 Ovulation Induction Effect of Sevenband Grouper, Epinephelus septemfasciatus by Treating Hormones원문보기
This study aims to investigate how ovulation induction of sevenband grouper, Epinephelus septemfasciatus varies when treated with different hormonal substances such as ovaprim, pimozide, LHRHa, and HCG. As for LHRHa, we injected it in different concentrations: $50{\mu}g/kg$, $100{\mu...
This study aims to investigate how ovulation induction of sevenband grouper, Epinephelus septemfasciatus varies when treated with different hormonal substances such as ovaprim, pimozide, LHRHa, and HCG. As for LHRHa, we injected it in different concentrations: $50{\mu}g/kg$, $100{\mu}g/kg$, $150{\mu}g/kg$, and $200{\mu}g/kg$. All hormonal substances including LHRHa were injected into back muscles. As a result, ovulation occurred in all sample groups. The sample group injected with HCG released the largest amount of eggs, and the dimeter of eggs and oil globules were also significantly bigger than those of others. Fertilization rate, embryonic survival rate, and hatching rate were the highest in a LHRHa ($100{\mu}g/kg$) +pimozide ($1,000{\mu}g/kg$) group and buoyant rate in a LHRHa group. Ovulation rate was 100% when LHRHa was injected in different concentrations. The largest amount of eggs was released in $200{\mu}g/kg$. The diameter of eggs and oil globules were the biggest in $200{\mu}g/kg$ and the smallest in $50{\mu}g/kg$. Fertilization rate showed no significant difference through all different levels of concentration: 94.6-95.3%. Buoyant rate was the highest in $100{\mu}g/kg$ and embryonic survival rate and hatching rate in $150{\mu}g/kg$. Based on these experimental results, we concluded that LHRHa in $100{\mu}g/kg$ is the most efficient for the ovulation induction of sevenband grouper.
This study aims to investigate how ovulation induction of sevenband grouper, Epinephelus septemfasciatus varies when treated with different hormonal substances such as ovaprim, pimozide, LHRHa, and HCG. As for LHRHa, we injected it in different concentrations: $50{\mu}g/kg$, $100{\mu}g/kg$, $150{\mu}g/kg$, and $200{\mu}g/kg$. All hormonal substances including LHRHa were injected into back muscles. As a result, ovulation occurred in all sample groups. The sample group injected with HCG released the largest amount of eggs, and the dimeter of eggs and oil globules were also significantly bigger than those of others. Fertilization rate, embryonic survival rate, and hatching rate were the highest in a LHRHa ($100{\mu}g/kg$) +pimozide ($1,000{\mu}g/kg$) group and buoyant rate in a LHRHa group. Ovulation rate was 100% when LHRHa was injected in different concentrations. The largest amount of eggs was released in $200{\mu}g/kg$. The diameter of eggs and oil globules were the biggest in $200{\mu}g/kg$ and the smallest in $50{\mu}g/kg$. Fertilization rate showed no significant difference through all different levels of concentration: 94.6-95.3%. Buoyant rate was the highest in $100{\mu}g/kg$ and embryonic survival rate and hatching rate in $150{\mu}g/kg$. Based on these experimental results, we concluded that LHRHa in $100{\mu}g/kg$ is the most efficient for the ovulation induction of sevenband grouper.
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문제 정의
따라서 본 연구에서는 해상가두리 양식장에서 사육한 능성어 어미의 안정적인 우량 수정란 확보를 위해서 Ovaprim, HCG, LHRHa 및 Pimozide를 처리하고 배란유도 효과와 호르몬 처리 조건에 따른 수정률, 부상률, 난발생 생존율 및 부화율을 비교하였다.
, LTD, Korea)였다([Table 1]). 호르몬의 종류에 따른 배란유도 효과 결과를 토대로 LHRHa의 농도에 따른 배란유도 효과를 조사하였다. LHRHa의 처리 농도별 실험구는 50 ㎍/kg, 100 ㎍/kg, 150 ㎍/kg 및 200 ㎍/kg 구간으로 구분하였다 ([Table 2]).
제안 방법
먹이는 실험개시 3개월 전부터 전갱이와 굴을 1회/1일, 어체중의 1~2%를 공급하였다. 7월에 복부 팽만도와 생식공의 발달 정도에 따라 성숙한 어미를 선별하였고, 2-phenoxyethanol (Sigma Co., USA)을 200 ppm으로 희석시킨 해수로 마취시켜 cannulation하여 난모세포의 난경이 450 ㎛ 내외에 이르는 어미를 2차로 선별하여 호르몬을 처리하였다.
호르몬의 종류에 따른 배란유도 효과 결과를 토대로 LHRHa의 농도에 따른 배란유도 효과를 조사하였다. LHRHa의 처리 농도별 실험구는 50 ㎍/kg, 100 ㎍/kg, 150 ㎍/kg 및 200 ㎍/kg 구간으로 구분하였다 ([Table 2]). 각 실험구에는 능성어 암컷 5마리씩을 사용하였고 호르몬 처리는 어체 제 1극조 하부의 등 근육에 주사하여 소형 가두리(2×2×2 m)에 각각 분리 수용하였다.
각 실험구에는 능성어 암컷 5마리씩을 사용하였고 호르몬 처리는 어체 제 1극조 하부의 등 근육에 주사하여 소형 가두리(2×2×2 m)에 각각 분리 수용하였다.
난과 정액을 건식법으로 인공수정 후 수정률과 부상률을 관찰하였고, 난발생 후 부화되기 전 단계를 기준으로 난발생 생존율을 조사하였다. 정상 부화율은 부화 후 12시간을 기준으로 조사하였다.
난과 정액을 건식법으로 인공수정 후 수정률과 부상률을 관찰하였고, 난발생 후 부화되기 전 단계를 기준으로 난발생 생존율을 조사하였다. 정상 부화율은 부화 후 12시간을 기준으로 조사하였다. 통계분석은 호르몬 처리와 난과 유구의 크기 및 호르몬 처리와 난질과의 관계를 통계프로그램인 SPSS (Ver.
호르몬 주사 후 48시간 경과 시 실험어의 복부를 압박하여 배란 유무와 채란량을 조사하였고 채취한 난은 입체현미경(Olympus CX41, Japan)을 이용하여 난경과 유구의 크기를 10개씩 측정하였다. 인공수정에 사용된 정액은 실험개시 3개월 전 동일 해역에서 8년간 양성한 능성어 어미 30마리(전장 67.
대상 데이터
능성어 암컷 어미의 난 성숙 및 배란유도 효과 조사에 사용된 호르몬은 Ovaprim [salmon GnRHa (sGnRHa : D-Arg6, Pro 9Net - sGnRH), Domperidone; Syndel Laboratories LTD., Canada], Pimozide (Sigma Co. LLC., USA), LHRHa (des-Gly10, D-Ala6; Sigma Co. LLC., USA) 및 HCG (Daesung Microbiological Labs., LTD, Korea)였다([Table 1]). 호르몬의 종류에 따른 배란유도 효과 결과를 토대로 LHRHa의 농도에 따른 배란유도 효과를 조사하였다.
실험어는 2007년 6월에 전남 여수시 거문도 해역에서 채집하여 해상가두리(7×7×5 m)에서 6년동안 양성된 자연산 능성어 약 1,000마리 중 2013년 3월에 성숙한 어미 후보군(전장 58.6±3.9 cm, 체중 3.7±0.8 kg) 300마리를 1차 선별하여 사용하였다.
인공수정에 사용된 정액은 실험개시 3개월 전 동일 해역에서 8년간 양성한 능성어 어미 30마리(전장 67.1±3.9 cm, 체중 5.6±0.8 kg)를 대상으로 17α-methyltestosterone (Sigma Co., USA)을 처리하여 웅성화 유도된 어미에서 확보하였다.
데이터처리
정상 부화율은 부화 후 12시간을 기준으로 조사하였다. 통계분석은 호르몬 처리와 난과 유구의 크기 및 호르몬 처리와 난질과의 관계를 통계프로그램인 SPSS (Ver. 18)를 이용하여 Duncan-test를 통해 각 실험구간별 평균값 간의 유의성을 분석하였다.
성능/효과
LHRHa 농도를 각기 다르게 처리하여 배란을 유도한 결과, 모든 구간에서 채란이 가능하였고, 채란량은 실험어의 체중이 가장 큰 LHRHa 200㎍/kg (평균체중 6.2±0.8 kg) 처리구가 많았으나 다른 실험구와 유의적인 차이는 없었다.
난경과 유구의 크기는 Ovaprim 처리구에서 각각 863.3±23.2 ㎛, 199.7±7.7 ㎛으로 다른 구간에 비해 유의적으로 크게 나타났고, LH-PI 처리 구가 가장 작았다([Table 3]).
난경과 유구의 크기도 마찬가지로 LHRHa 200 ㎍/kg 처리구에서 각각 862.4±19.8 ㎛ 및 199.1±5.3 ㎛로 가장 크게 나타났으며, LHRHa 50 ㎍/kg 처리구가 난경 및 유구의 크기가 각각 826.7±16.7 ㎛ 및 182.6±3.5 ㎛로 가장 작았다([Table 4]).
1, B]). 난발생 과정 중 부화되기 전까지 난발생 생존율은 LH-PI와 LHRHa 처리구가 각각 98.3% 및 91.6%로 높게 나타났으며, HCG 처리구가 50.3%로 가장 낮았다([Fig. 1, C]). 부화후 12시간 경과 시 정상 부화율도 LH-PI와 LHRHa 처리구가 각각 92.
본 연구 결과를 종합해 볼 때, 해상가두리에서 양성된 성숙한 능성어 암컷의 배란유도에는 LHRHa 100 ㎍/kg의 농도로 처리하는 것이 안정적으로 수정란을 확보할 수 있을 것으로 사료된다. 또한 해상가두리에서 사육하는 능성어 어미의 성성숙 시기는 해역의 자연수온 분포와 밀접한 관계가 있으므로 향후 수온 변화에 따른 적정 배란유도 시기 등에 대한 연구도 병행해야 할 것으로 판단된다.
(2014)는 난의 크기가 생존 또는 부화에 영향을 미치지 않은 것으로 보고하였다. 본 연구에서는 모든 실험 구간의 난경이 850 ㎛ 내외로, 이전 능성어의 배란유도 연구(Song et al., 2008; Kim et al., 1997)의 난경인 800 ㎛ 내외 보다 큰 경향은 보였으나 호르몬의 종류와 처리 농도가 난경과 유구의 크기 및 부화율 등에 영향을 미치지 않는 것으로 사료된다.
본 연구에서도 해상가두리에서 양성된 능성어 암컷을 대상으로 다양한 호르몬을 처리하여 배란 유도 효과를 조사한 결과, Ovaprim과 HCG 보다는 LHRHa 또는 LHRHa와 Pimozide를 혼합하여 사용했을 때 보다 효과적으로 나타났다. HCG 처리구는 Kwon et al.
2, B]). 부화 직전까지 난발생 과정의 생존율은 LHRHa 150 ㎍/kg과 LHRHa 100 ㎍/kg 처리구가 각각 94.0 % 및 91.6%로 다른 실험구에 비해 유의적으로 높게 나타났다([Fig. 2, C]). 정상 부화율은 LHRHa 150 ㎍/kg과 LHRHa 100㎍/kg 처리구가 각각 92.
1, C]). 부화후 12시간 경과 시 정상 부화율도 LH-PI와 LHRHa 처리구가 각각 92.1% 및 91.9%로 난발생 생존율에서와 같이 높게 나타났고, Ovaprim과 HCG 처리구각 각각 66.5% 및 56.4%로 낮게 나타났다([Fig. 1, D])
성성숙 시기의 능성어 암컷을 대상으로 Ovaprim, LHRHa+Pimozide(LH-PI), LHRHa 및 HCG를 주사하여 배란을 유도한 결과, 모든 간에서 채란이 가능하였고, 채란량은 체중과 비례 하여 실험어의 체중이 가장 큰 HCG 처리구(평균 체중 7.3±1.0 kg)에서 732.8±165.3 mL로 가장 많 았다.
7 ㎛으로 다른 구간에 비해 유의적으로 크게 나타났고, LH-PI 처리 구가 가장 작았다([Table 3]). 수정률은 LH-PI와 LHRHa 처리구가 각각 97.9% 및 94.9%로 이 2개 구간에 대한 유의적인 차이는 없었으나 Ovaprim과 HCG 처리구에 비해 높게 나타났다[Fig. 1, A].
2, C]). 정상 부화율은 LHRHa 150 ㎍/kg과 LHRHa 100㎍/kg 처리구가 각각 92.2% 및 91.9%로 다른 실험구 비해 높았고 LHRHa 200 ㎍/kg 처리구가 73.9%로 가장 낮게 나타났다([Fig. 2, D]).
(1985)의 연구는 담수어를 대상으로 수행한 것으로 해수어인 능성어와 차이를 보였으며, 담수어와 해수어의 종특이성에 의한 것으로 사료된다. 호르몬 종류별 실험 결과를 토대로 LHRHa의 처리 농도를 달리한 결과, LHRHa 100 ㎍/kg에서 가장 효과적으로 나타났다.
후속연구
본 연구 결과를 종합해 볼 때, 해상가두리에서 양성된 성숙한 능성어 암컷의 배란유도에는 LHRHa 100 ㎍/kg의 농도로 처리하는 것이 안정적으로 수정란을 확보할 수 있을 것으로 사료된다. 또한 해상가두리에서 사육하는 능성어 어미의 성성숙 시기는 해역의 자연수온 분포와 밀접한 관계가 있으므로 향후 수온 변화에 따른 적정 배란유도 시기 등에 대한 연구도 병행해야 할 것으로 판단된다.
질의응답
핵심어
질문
논문에서 추출한 답변
바리과(Family Serranidae) 어류의 특징은 무엇인가?
바리과(Family Serranidae) 어류는 고급 해산어류로써 경제적으로 중요한 품종으로 알려져 있으며 양식은 대부분 아시아 지역에서 이루어 지고 있다(Kohno et al., 1993; Harikrishnan et al.
어류의 종묘생산에 있어 일부 바리과 어류들이 어려운 이유는 무엇인가?
산업적으로 중요한 어류의 종묘생산에 있어 가장 중요한 요소 중 하나는 일시에 다량의 우량 수정란을 확보해야 하는 것이다. 하지만 능성어를 포함한 일부 바리과 어류는 어미의 건강상태와 성비 불균형 등의 종 특이적인 생식생태적 특성과 산란에 적합한 사육 수심과 같은 부적합한 환경요인으로 인하여 자연산란을 위한 사육환경 조절이 쉽지 않다(Toledo et al., 1993; Okumura et al.
어류의 종묘생산에서 가장 중요한 요소는 무엇인가?
산업적으로 중요한 어류의 종묘생산에 있어 가장 중요한 요소 중 하나는 일시에 다량의 우량 수정란을 확보해야 하는 것이다. 하지만 능성어를 포함한 일부 바리과 어류는 어미의 건강상태와 성비 불균형 등의 종 특이적인 생식생태적 특성과 산란에 적합한 사육 수심과 같은 부적합한 환경요인으로 인하여 자연산란을 위한 사육환경 조절이 쉽지 않다(Toledo et al.
참고문헌 (46)
Baek, H. J..Kim, Y..An, C. M..Cho, K. C..Myeong, J. I. & Lee, N. J.(2000). Effects of hormonal treatment on induced maturation and ovulation in the spotted halibut, Varasper variegatus. Korean J Aquacult 13, 47-53.
Bromage, N. R.(1995). Broodstock management and seed quality-general considerations. In: N.R. Bromage and R.J. Roberts (Editors), Broodstock Management and Egg and Larval Quality. Cambridge University Press, Cambridge, 1-24.
Chen, L. C.(1990). Grouper culture. In: Aquaculture in Taiwan. Fishing News Books, Oxford 103-107.
Chowdhury, M..Chatterjee, A..Mondal, A. & Chatterji, U.(2010). Ovaprim abrogates expression of GnRH receptor-II in the Indian catfish. International Journal of Biology. 2(2)
Crim, L. W..Nestor Jr, J. J. & Wilson, C. E.(1988). Studies of the biological activity of LHRH analogue in the rainbow trout, landlocked salmon, and the winter flounder. Gen Comp Endocrinol 71, 372-382.
De Leeuw, R..Goos, H. J. T. h..Richter, C. J. J. & Eding, E. H.(1985). Pimozide-LHRHa induced breeding of the african catfish, Clarias gariepinus (Burchell). Aquaculture 44, 295-302.
DiMaggio, M. A..Broach, J. S. & Ohs, C. L.(2013). Evaluation of ovaprim and human chorionic gonadotropin doses on spawning induction and egg and larval quality of pinfish, Lagodon rhomboides. Aquaculture. 414-415.
Donaldson, E. M. & Hunter, G. A.(1983). Induced final maturation, ovulation and spermiation in cultured fishes. In : Hoar, W.S., Randall, D.J., Donaldson, E.M.(Eds.), Fish Physiology. Reproduction, Vol. IXB, Academic press, Orlando, FL, 351-403.
Harikrishnan, R..Kim, J. S..Balasundaram, C. & Heo, M. S.(2012). Immunomodulatory effects of chitin and chitosan enriched diets in Epinephelus bruneus against Vibrio alginolyticus infection. Aquaculture 326-329, 46-52.
Hassin, S. D..De Monbrison, Y..Hanin, A..Elizur, Y..Zohar, Y. & Popper, D. M.(1997). Domestication of the white grouper, Epinephelus aeneus 1. Growth and reproduction. Aquaculture 156, 305-316.
Hoar, W.(1969). Reproduction, In: Fish Physiology 3. Hoar W and Randall D, eds. Academic Press, New York, U.S.A., 1-72.
Hodson, R. & Sullivan, C. V.(1993). Induced maturation and spawning of domestic and wild striped bass, Morone saxatilis (Walbaum), broodstock with implanted GnRH analogue and injected HCG. Aquacult. Fish. Manage 24, 389-398.
Hur, Y. B..Kim, E. K..Lim, Y. S..Jeon, C. Y..Cho, K. C. & Myeng, J. I.(2011). Differences in Egg Quality and Larval Development among Four Population of Sea Squirt Halocynthia roretzi Adults. Kor J Fish Aquat Sci 44(5), 516-523.
Hwang, K. H..Lee, J. U..Yang, S. G..Rho, S. & Kang, Y. J.(1999). Induced ovulation in rabbitfish, Siganus canaliculatus, with human chorionic gonadotropin (HCG). Korean J Aquacult 12, 197-204.
Jang, S. I.(1996). Induced ovulation by using human chorionic gonadotropin and gonadotropin- releasing hormone analogue plus pimozide in yellow puffer, Takifugu obscurus. Korean J Aquacult 9, 3--10.
Jang, S. I..Lee, W. O..Lee, J. Y. & Son, S. J.(1998). Induced ovulation in the mandarin fish, Siniperca scherzeri by sex-maturation hormones. Korean J Aquacult 11, 513-519.
Kim, B. H..Kim, K. M..Lee, Y. D..Song, C. B. & Rho, S.(1997). Reproductive biology of the sevenband grouper, Epinephelus septemfasciatus The effect of HCG on ovulation induction. Korean J Aquacult 10, 55-61.
Kohno, H..Diani, S. & Supriatna, A.(1993). Morphological development of larval and juvenile grouper, Epinephelus fuscoguttatus. Japanese Journal of Ichthyology 40, 307-316.
Kwon, H. C..Choi, N. J. & Park, H. Y.(1996). Induced ovulation on catfish (Silurus asotus) by GnRH-Analogue. Korean J Aquacult 9, 205-213.
Lam, T. J.(1982). Application of endocrinology of fish culture. Can J Aquat Fish Sci 39, 11-137.
Lee, W. K. & Yang, W. S.(2000). Relationship between ovarian development and plasma levels of steroid hormones, and induction of oocyte maturation and ovulation in the cultured female Korean sea bass, Lateolabrax japonicus. Dev Reprod 4, 187-193.
Lee, Y. D. & Go, K. M.(2003). Aquatic industrialization by development of reproductive technology of sevenband grouper, Epinephelus septemfasciatus. Jeju univ 1-86.
Liao, I. C. & Leano, E. M.(2008). The Aquaculture of Grouper. AFS WAS FST NTOU 49-60.
Lim, S. G..Kim, K. S..Kim, Y. S..Han, H. G. & Kim, E. O.(2012). Effect of HCG, LHRHa, Ovaprim and Pimozide on Ovulation Induction in Long Snout Bullhead Leiocassis longirotris. Dev Reprod 16(2), 137-143.
Lin, H. R..Peng, C..Lu, L. Z..Zhou, X. J..Kraak, G. V. D. & Peter, R. E.(1985) Induction of ovulation in the Loach (Paramisgurnus dabryanus) using pimozide and [D-ALA6, PRO9-N-Ethylamide]-LHRH. Aquaculture 46, 333-340.
Marino, G..Panini, E..Longobardi, A..Mandich, A..Finoia, M. G..Zohar, Y. & Mylonas, C. C.(2003). Induction of ovulation in captive-reared dusky grouper, Epinephelus marginatus (Lowe, 1834), with a sustained-release GnRHa implant, Aquaculture 219, 841-858.
Mejri, S..Andet, C..Vandenberg, G. W..Parrish, C. C. & Tremblay, R.(2014). Biochemical egg quality in a captive walleye (Sander vitreus) broodstock population relative to ovulation timing following hormonal treatment. Aquaculture 431, 99-106.
Park, H. Y..Lee, J. Y..Lee, Y. J. & Kwon, H. C.(1998). Induction of ovulation by LHRH-a and pimozide in the bullhead, Pseudobagrus fulvidraco. Korean J Aquacult 11, 151-158.
Ruttanapornvareesakul, Y..Sakakura, Y. & Hagiwara, A.(2007). Effect of tank proportions on survival of seven-band grouper Epinephelus septemfasciatus (Thunberg) and devil stinger Inimicus japonicus (Cuvier) larvae. Aquaculture Research 38, 193-200.
Sakakura, Y..Shiotani, S..Chuda, H. & Hagiwara, A.(2006). Improvement of the survival in the seven-band grouper Epinephelus septemfasciatus larvae by optimizing aeration and water inlet in the mass-scale rearing tank. Fisheries Science 72(5), 939-947.
Shein, N. L..Chuda, H..Arakawa, A..Mizuno, K. & Soyano, K.(2004). Wvarian development and final oocyte maturation in cultured sevenband grouper Epinephelus septemfasciatus. Fish Sci 70, 360-365.
Sherwood, N. M..Parker, D. B..McRory, J. E. & Lescheid, D. W.(1994). Molecular evolution of growth hormone-releasing hormone and gonadotropinreleasing hormone. (in) Sherwood, N. M., Hew, C. L. (eds.), Fish Physiology. Molecular Endocrinology of Fish, Vol. VIII, Academic Press, New York, 3-66.
Sokolowska, M..Peter, R. E..Nahorniak, C. S..Pan, C. H..Chang, J. P..Crim, L. W. & Weil, C.(1984) Induction of ovulation in goldfish, Carassius auratus, by pimozide and analogues of LH-RH. Aquaculture 36, 71-83.
Song, Y. B..Baek, H. J..Kim, H. B..Soyano, K..Kim, S. J. & Lee, Y. D.(2008). Induction of maturation and ovulation with HCG treatment in the sevenband grouper Epinephelus septemfasciatus. Korean J Aquacult 21, 96-101.
Soyano, K..Saito, T..Nagae, M. & Yamauchi, K.(1993). Effects of thyroid hormone on gonadotropin-induced steroid production in medaka, Oryzias latipes, ovarian follicles. Fish physiology and biochemistry 11(1-6), 265-272.
Tamaru, C. S..Carlstrom Jr, C. T..Fitzgerald, W. J. & Ako, H.(1996). Induced final maturation and spawning of the marbled grouper, Epinephelus microdon capture from spawning aggregations in the republic of Palau, Micronesia, J World Aqua Soc 27, 363-372.
Toledo, J. D..Nagi, A. & Javellana, D.(1993). Successive spawning of grouper, Epinephelus suillus (Valenciennes), in a tank and a floating net cage. Aquaculture 115, 361-367.
Tsuchihashi, Y..Tanaka, Y..Kuromiya, Y..Kashiwagi, M. & Yoshioka, M.(2003). Control of induction of sex reversal in the sevenband grouper, Epinephelus septemfasciatus. Suisanzoshoku 51, 189-196.
Watanabe, W. O..Ellis, E. P..Ellis, S. C. & Feeley, M. W.(1998). Progress in controlled maturation and spawning of summer flounder Paralichthys dentatus broodstock. J World Aqua Soc 29, 393-404.
Wullur, S..Sakakura, Y. & Hagiwara, A.(2011). Application of the minute monogonont rotifer Proales similis de Beauchamp in larval rearing of seven-band grouper Epinephelus septemfasciatus. Aquaculture 315(3-4), 355-360.
Yeh, S. L..Kuo, C. M..Ting, Y. Y. & Chang, C. F.(2003a). The effects of exogenous androgens on ovarian development and sex change in female orange-spotted protogynous grouper, Epinephelus coioides. Aquaculture 218, 729-739.
Yeh, S. L..Kuo, C. M..Ting, Y. Y. & Chang, C. F.(2003b). Androgens stimulate sex change in protogynous grouper, Epinephelus coioides: spawning performance in sex-changed males. Comprative Biochemistry and Physiology Part C 135, 375-382.
Zohar, Y. & Mylonas, C. C.(2001). Endocrine manipulations of spawning in cultured fish: from hormones to genes. Aquaculture 197, 99-136.
Zohar, Y..Goren, A..Tosky, M..Pagelson, G..Leibovitz, D. & Koch, Y.(1989). The bioactivity of gonadotropin-releasing hormones and its regulation in the gilthead seabream, Sparus aurata: in vivo and in vitro studies. Fish Physiol Biochem 7, 59-67.
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