도라지에서의 RAPD 마커 분석과 Actin 유전자 염기서열에서 유래한 CAPS 분자표지 개발 Development of a CAPS Marker Derived from the Pg-Actin Gene Sequences and RAPD Markers in Platycodon grandiflorum원문보기
본 연구에서는 도라지의 품종 구분 및 유전적 다양성 분석에 활용될 수 있는 분자표지 개발을 위하여 RAPD 마커를 활용하여 분석하였으며, 동시에 actin유전자 염기서열에서 유래한 분자표지를 제작하였다. 총 30개의 RAPD 분자표지를 활용한 분석을 진행하였으나, 재현성과 안정성이 확보된 DNA 상의 다형성은 확보할 수 없었다. 이에, 도라지 actin (Pg-actin) 유전자에 존재하는 Single Nucleotide Polymorphism (SNP)을 이용하여 품종 간 구분에 활용 가능한 분자마커로의 전환을 탐색하였다. 도라지 genomic DNA에 actin 유래 유전자를 사용하여 2개의 actin homologs를 확보하였으며, 이를 염기서열 분석하여 3.4 kb의 Pg-actin fragment와 Pg-actin과 28.6%의 유사도를 가진 1.4 kb의 actin homologue를 획득하였다. 획득된 Pg-actin은 4개의 exon과 3개의 intron으로 구성된 유전자로, DNA 다형성 탐색을 통해 intron 3의 286 bp 위치에서 SNP (G ↔ A)를 발견하였으며, 이를 활용도 높은 CAPS marker로 전환하여 PgActin-Int3 마커를 개발하였다. Pg-Actin-Int3 마커를 32개의 도라지 유전자원에 적용시켜 본 결과 품종 간의 차이를 보이는 부분이 확인되었다. 본 연구에서 확보된 도라지 DNA 염기서열정보는 도라지의 유전적 다양성 분석 및 도라지 분자육종에 활용될 수 있을 것이라 전망된다.
본 연구에서는 도라지의 품종 구분 및 유전적 다양성 분석에 활용될 수 있는 분자표지 개발을 위하여 RAPD 마커를 활용하여 분석하였으며, 동시에 actin유전자 염기서열에서 유래한 분자표지를 제작하였다. 총 30개의 RAPD 분자표지를 활용한 분석을 진행하였으나, 재현성과 안정성이 확보된 DNA 상의 다형성은 확보할 수 없었다. 이에, 도라지 actin (Pg-actin) 유전자에 존재하는 Single Nucleotide Polymorphism (SNP)을 이용하여 품종 간 구분에 활용 가능한 분자마커로의 전환을 탐색하였다. 도라지 genomic DNA에 actin 유래 유전자를 사용하여 2개의 actin homologs를 확보하였으며, 이를 염기서열 분석하여 3.4 kb의 Pg-actin fragment와 Pg-actin과 28.6%의 유사도를 가진 1.4 kb의 actin homologue를 획득하였다. 획득된 Pg-actin은 4개의 exon과 3개의 intron으로 구성된 유전자로, DNA 다형성 탐색을 통해 intron 3의 286 bp 위치에서 SNP (G ↔ A)를 발견하였으며, 이를 활용도 높은 CAPS marker로 전환하여 PgActin-Int3 마커를 개발하였다. Pg-Actin-Int3 마커를 32개의 도라지 유전자원에 적용시켜 본 결과 품종 간의 차이를 보이는 부분이 확인되었다. 본 연구에서 확보된 도라지 DNA 염기서열정보는 도라지의 유전적 다양성 분석 및 도라지 분자육종에 활용될 수 있을 것이라 전망된다.
Balloon flower (Platycodon grandiflorum A. DC.) is a perennial plant of mainly Campanulaceae family, which have been widely used as a food ingredient and herbal medicine in East Asia. Although demands on related products and yearly cultivation area for balloon flower are increasing, diverse fundamen...
Balloon flower (Platycodon grandiflorum A. DC.) is a perennial plant of mainly Campanulaceae family, which have been widely used as a food ingredient and herbal medicine in East Asia. Although demands on related products and yearly cultivation area for balloon flower are increasing, diverse fundamental technologies and molecular breeding studies are not very well supported in Platycodons. In this study, 30 random amplification of polymorphic DNA (RAPD) primers were test in an attempt to explore genetic diversities. In addition, sequences information of the actin gene, a well conserved gene encoding a globular protein that forms microfilaments, was retrieved and analyzed. Two actin homologs were recovered; 3.4 kb fragment is a Pg-actin and 1.4 kb fragment is a Pg-actin homolog with 28.6% similarity. We have confirmed that the Pg-actin gene is configured into 4 exons and 3 introns. A single nucleotide polymorphism (SNP), G↔A, was detected on the intron 3, which served as a target for the CAPS marker development. The marker Pg-Actin-Int3 was applied to 32 balloon flower accessions. Balloon flower DNA sequence information generated in this study is expected to contribute to the analysis and molecular breeding and genetic diversity analysis of balloon flowers.
Balloon flower (Platycodon grandiflorum A. DC.) is a perennial plant of mainly Campanulaceae family, which have been widely used as a food ingredient and herbal medicine in East Asia. Although demands on related products and yearly cultivation area for balloon flower are increasing, diverse fundamental technologies and molecular breeding studies are not very well supported in Platycodons. In this study, 30 random amplification of polymorphic DNA (RAPD) primers were test in an attempt to explore genetic diversities. In addition, sequences information of the actin gene, a well conserved gene encoding a globular protein that forms microfilaments, was retrieved and analyzed. Two actin homologs were recovered; 3.4 kb fragment is a Pg-actin and 1.4 kb fragment is a Pg-actin homolog with 28.6% similarity. We have confirmed that the Pg-actin gene is configured into 4 exons and 3 introns. A single nucleotide polymorphism (SNP), G↔A, was detected on the intron 3, which served as a target for the CAPS marker development. The marker Pg-Actin-Int3 was applied to 32 balloon flower accessions. Balloon flower DNA sequence information generated in this study is expected to contribute to the analysis and molecular breeding and genetic diversity analysis of balloon flowers.
* AI 자동 식별 결과로 적합하지 않은 문장이 있을 수 있으니, 이용에 유의하시기 바랍니다.
문제 정의
위해 진행되었다. 또한, 분자표지 제작 및 활용을 통해 국내 도라지의 유전적 다양성 분석뿐만 아니라, 보다 체계적 인도라지 분자육종의 기초자료로 활용될 수 있도록 하기 위하여 본 연구가 시행되었다.
본 연구는 도라지의 유전적 다양성 분석을 위하여 RAPD 마커를 활용한 분석 시도 및 actin 유전자 염기서열 유래 분자표지 제작을 위해 진행되었다. 또한, 분자표지 제작 및 활용을 통해 국내 도라지의 유전적 다양성 분석뿐만 아니라, 보다 체계적 인도라지 분자육종의 기초자료로 활용될 수 있도록 하기 위하여 본 연구가 시행되었다.
또한, N8001과 OPC08의 분석을 통해 얻어진 산물을 DNA 다형성을 활용한 SCAR 마커로의 전환도 시도하였으나, 용이하지 않았다. 이에 보다 재현성 있고 안정적인 분자표지 개발을 위해 sequence-derived 분자표지 개발을 진행하였다.
제안 방법
coli에 형질전환되었다. Colony PCR반응을 통해 cloning 여부를 확인한 후, plasmid mini prep kit (Solgent, KOREA)를 사용하여 plasmid DNA를 정제하고 insert 확인 후 Solgent 사에 염기서열 분석을 의뢰하였다.
사용하였다. DNA 추출은 CTAB법을 변형하여(Kang, et al., 2001) 사용하였다. 어린 잎 2-3장을 iron bead와 liquid N2를 사용하여 마쇄하고, 300 ㎕의 CTAB buffer를 넣고 10분 간격으로 흔들어주면서 65℃에서 30분 처리 후, 150 ㎕의 chloroform과 섞어 12, 000 rpm에서 15분간 원심분리하여 상층액을 취하였다.
Intron 3의 286번째 염기서열에서 발견된 G ↔ A의 인접 부위에서의 제한효소 탐색을 실시하였으며, 이를 활용하여 CAPS 마커인 Pg-Actin-Int3을 개발하였다. Pg-Actin-Int3은 제한효소 AflⅢ (#)에 의하여 286 bp의 염기서열이 A 인 부위를 선택적으로 잘라주어서 DNA 단편 분석 시 개체 간에 DNA 단편의 크기 차이를 판별할 수 있도록 제작되었다(Table 4, Fig.
Cloning 을 위한 증폭 조건은 94℃에서 10분간 초기 변성시키고, 94℃에서 1분, 57℃에서 1분, 72℃에서 3분 과정을 30회 반복 후 72℃ 에서 10분간 확장 반응시켰다. PCR 산물은 ethidium bromide (EtBr)로 염색된 1.2% agarose gel로 전기영동 후 Gel Doc (BIO- RAD, USA)으로 확인하였다. PCR로 증폭된 DNA fragment 는 TOPO TA Cloning® Kit (Invitrogen, USA)와 chemically competent cell (Invitrogen, USA)을 이용하여 heat-shock 기법으로 E.
PCR 증폭 조건은 94℃ 에서 10분간 초기 변성시키고, 94℃에서 30초, 36℃에서 30초, 72℃에서 3분 과정을 5회 반복 후, 94℃에서 1분, 45℃에서 1분, 72℃에서 2분 과정을 30회 반복 후, 72℃에서 10분간 확장 반응시켰다. PCR 산물의 증폭 여부는 ethidium bromide (Et Br)로 염색한 1.5% agarose gel로 전기영동 후 Gel Doc (BIO-RAD, USA)으로 확인하였다.
1. RAPD profile of eight different balloon flower genotypes using four RAPD markers; N8001, OPC08, OPC19, and OPC03 primers. 1: IT229231, 2: IT220636, 3: IT212113, 4: IT209935, 5: IT208629, 6: IT208627, 7: IT180997, 8: IT180533, M: 1 kb DNA ladder, ‣ Indicates the band size of 1 kb.
15 ㎕ 5 unit rTaq polymerase (Takara, Japan), 각 1 ㎕ 10 pmol․㎕⁻1 Primer (Table 4). T-100 Thermal Cycler (BIO-RAD, USA)을 이용하였으며, PCR 조건은 94℃에서 10분간 초기 변성시키고, 94℃에서 1분, 50℃에서 40초, 72℃에서 40초 과정을 40회 반복 후 72℃에서 10분간 반응시켰다. 생성된 PCR product 15 ㎕에 2 ㎕ AflⅢ (NEB, England), 2 ㎕ buffer, 증류수 2 ㎕을 넣은 후 37℃에서 1시간 처리하였으며, EtBr이 함유된 1.
T-100 Thermal Cycler (BIO-RAD, USA)을 이용하였으며, PCR 조건은 94℃에서 10분간 초기 변성시키고, 94℃에서 1분, 50℃에서 40초, 72℃에서 40초 과정을 40회 반복 후 72℃에서 10분간 반응시켰다. 생성된 PCR product 15 ㎕에 2 ㎕ AflⅢ (NEB, England), 2 ㎕ buffer, 증류수 2 ㎕을 넣은 후 37℃에서 1시간 처리하였으며, EtBr이 함유된 1.6% agarose gel에서 확인하였다.
이렇게 확보된 도라지 actin full genomic sequence를 활용하여 품종 간 구분이 가능한 분자표지를 제작하기 위한 SNP 및 Insertion/Deletion (InDel)을 탐색하였다. Actine 모든 진핵생물이 가지고 있는 유전자이며, 특히 식물체 간 염기 서열상의 유사성이 매우 높은 유전자로 알려져 있다.
위치한 SNP가 CAPS 마커로 전환되었다. 제작된 CAPS 마커의 분석을 위하여 PCR 후 제한효소를 처리하여 DNA 단편들의 크기를 분석하였다. PCR 용액 조성은 2 ㎕ gDNA , 2.
명시되어 있는 3쌍의 primer sets가 사용되었다. 확보된 염기서열 정보에 대한 contigs 작성 및 염기서열 비교 분석을 위해서 SeqMan, EditSeq, MegAlign (DNASTAR, USA)을 사용하였다.
대상 데이터
JF781303)를 바탕으로 제작되었으며(Table 3), 네 가지 도라지 accession인 IT104606, IT104093, IT10403720, IT102753이 actin gene cloning에 사용되었다. PCR 용액 조성은 1 ㎕ gDNA, 2.5 ㎕ 10x PCR buffer, 2 ㎕ dNTP mixture, 0.15 ㎕ 5 unit exTaq polymerase (Takara, Japan), 각각의 1 ㎕ 10 pmol․μl⁻¹ primer로 진행되었으며, T-100 Thermal Cycler (BIO-RAD, USA)을 사용하였다. Cloning 을 위한 증폭 조건은 94℃에서 10분간 초기 변성시키고, 94℃에서 1분, 57℃에서 1분, 72℃에서 3분 과정을 30회 반복 후 72℃ 에서 10분간 확장 반응시켰다.
(2006)의 방법을 약간 변형하여 사용하였다. PCR용액 조성은 1 ㎕ gDNA, 2.5 ㎕ 10x PCR buffer, 2 ㎕ dNTP mixture, 0.15 ㎕ 5 unit rTaq polymerase (Takara, Japan), 1 ㎕ 10 pmol․μl⁻¹ primer로 진행되었으며, T-100 Thermal Cycler (BIO-RAD, USA)을 사용하였다. PCR 증폭 조건은 94℃ 에서 10분간 초기 변성시키고, 94℃에서 30초, 36℃에서 30초, 72℃에서 3분 과정을 5회 반복 후, 94℃에서 1분, 45℃에서 1분, 72℃에서 2분 과정을 30회 반복 후, 72℃에서 10분간 확장 반응시켰다.
Primer는 Genbank에서 확보된 도라지 actin 유전자의 cDNA 염기서열정보(Genbank accession no. JF781303)를 바탕으로 제작되었으며(Table 3), 네 가지 도라지 accession인 IT104606, IT104093, IT10403720, IT102753이 actin gene cloning에 사용되었다. PCR 용액 조성은 1 ㎕ gDNA, 2.
도라지 actin 유전자의 전체 염기서열 확보를 위하여 Table 3 에 명시되어 있는 3쌍의 primer sets가 사용되었다. 확보된 염기서열 정보에 대한 contigs 작성 및 염기서열 비교 분석을 위해서 SeqMan, EditSeq, MegAlign (DNASTAR, USA)을 사용하였다.
총 32종의 다양한 도라지 유전자원들이 본 연구에 사용되었으며(Table 1), 이 중 21종은 농업유전자원센터에서 분양받았으며, 11종은 경신종묘(경북, 의성)에서 분양받아 사용하였다. DNA 추출은 CTAB법을 변형하여(Kang, et al.
세척한 pellete 완전히 건조시켜 100 ㎕의 DNase-free water를 넣고 42℃에서 5분간 녹여내었다. 추출한 DNA는 전기영동을 통해 육안으로 정량하여 사용하였다.
이론/모형
2% agarose gel로 전기영동 후 Gel Doc (BIO- RAD, USA)으로 확인하였다. PCR로 증폭된 DNA fragment 는 TOPO TA Cloning® Kit (Invitrogen, USA)와 chemically competent cell (Invitrogen, USA)을 이용하여 heat-shock 기법으로 E.coli에 형질전환되었다. Colony PCR반응을 통해 cloning 여부를 확인한 후, plasmid mini prep kit (Solgent, KOREA)를 사용하여 plasmid DNA를 정제하고 insert 확인 후 Solgent 사에 염기서열 분석을 의뢰하였다.
성능/효과
분석 결과, actin의 exon 상에서는 다양한 도라지 accession들 간의 차이점이 발견되지 않았다. Actin 유전자 유래 분자표지 개발을 통해 유전적 다양성 분석이 가능한 DNA 다형성을 확보하기 위하여 intron 내 염기서열상의 차이를 탐색한 결과, intron 3의 286번째 염기서열에서 한 개의 SNP(G ↔ A)를 확보할 수 있었다(Fig. 4).
GenBank에서 확보된 actin 유전자의 cDNA 염기서열정보인 JF781303를 기반으로 제작된 primer를 사용하여, Fig. 2에서와 같이 3.4, 1.4 kb의 재현성 있는 두 개의 PCR 산물을 확보할 수 있었다. 이들을 염기서열 분석한 결과, 3.
RAPD 분석에 사용된 30개의 primers를 확보된 도라지 accession들에 적용시켜본 결과, OPB-15, OPB-17, OPB-18, OPC-08, OPC-12, OPC-13, OPC-16, OPC-17, OPC-19, OPC-20, OPD-02, OPD-03, OPD-11, N8001, N8004, N8005, N8007의총 17개 primers에서 PCR 증폭 산물을 확인할 수 있었다. RAPD 분석 결과 중의 일부를 Fig.
네 개의 exonse 61, 399, 615, 62 bp이고, 세 개의 introns는 157, 1, 198, 927 bp였다. 또한, 1.4 kb의 DNA 단편을 염기서열 분석한 결과 Pg-actin과 28.6%의 유사도를 가진 actin homolog 임이 확인되었다.
Actine 모든 진핵생물이 가지고 있는 유전자이며, 특히 식물체 간 염기 서열상의 유사성이 매우 높은 유전자로 알려져 있다. 분석 결과, actin의 exon 상에서는 다양한 도라지 accession들 간의 차이점이 발견되지 않았다. Actin 유전자 유래 분자표지 개발을 통해 유전적 다양성 분석이 가능한 DNA 다형성을 확보하기 위하여 intron 내 염기서열상의 차이를 탐색한 결과, intron 3의 286번째 염기서열에서 한 개의 SNP(G ↔ A)를 확보할 수 있었다(Fig.
4 kb의 재현성 있는 두 개의 PCR 산물을 확보할 수 있었다. 이들을 염기서열 분석한 결과, 3.4 kb의 증폭 산물이 actin 유전자의 genomic DNA fragment였고, 총 4개의 exon과 3개의 intron으로 구성된 유전자임을 확인하였다(Fig. 3). 네 개의 exonse 61, 399, 615, 62 bp이고, 세 개의 introns는 157, 1, 198, 927 bp였다.
총 32개의 도라지 유전자원을 대상으로 genotyping 분석을 실시한 결과 genotyping이 A~C의 세 가지 types로 20 품종이 A, 4 품종이 B, 8품종이 C type으로 구분되었다(Fig. 5). 도라지 actin gene의 intron 3을 분석하여 분자표지로 적용해본 결과품종 간의 차이를 구별할 수 있었으며 연구에서 유사도가 매우 높아 구별되지 않는 품종에 대해서는 특성 조사와 더불어 다양한 마커 분석이 필요할 것으로 사료되었다.
품종 구분용 CAPS marker를 제작하기 위하여 actin 유전자 내 intron 상의 염기서열 다형성이 탐색되었으며, 그 중 intron 3에 위치한 SNP가 CAPS 마커로 전환되었다. 제작된 CAPS 마커의 분석을 위하여 PCR 후 제한효소를 처리하여 DNA 단편들의 크기를 분석하였다.
후속연구
1에 제시하였다. 그 중, N8001과 OPC08의 경우, 약간의 다형성이 검출되는 경우도 있었으나, 분석 재현성에 있어서 불안정성을 보였기 때문에 본 결과를 품종 구분용 마커 개발 및 유전적 다양성 분석에 활용하기에는 문제점이 발견되었다. 또한, N8001과 OPC08의 분석을 통해 얻어진 산물을 DNA 다형성을 활용한 SCAR 마커로의 전환도 시도하였으나, 용이하지 않았다.
5). 도라지 actin gene의 intron 3을 분석하여 분자표지로 적용해본 결과품종 간의 차이를 구별할 수 있었으며 연구에서 유사도가 매우 높아 구별되지 않는 품종에 대해서는 특성 조사와 더불어 다양한 마커 분석이 필요할 것으로 사료되었다. 본 연구에서 획득된 도라지 CAPS 마커는 품종 간의 유전적 유연관계 분석 및 유전적 다양성을 파악하는데 활용될 수 있을 것이며 도라지 분자육종의 기초 자료로 활용도가 높을 것으로 기대된다.
도라지 actin gene의 intron 3을 분석하여 분자표지로 적용해본 결과품종 간의 차이를 구별할 수 있었으며 연구에서 유사도가 매우 높아 구별되지 않는 품종에 대해서는 특성 조사와 더불어 다양한 마커 분석이 필요할 것으로 사료되었다. 본 연구에서 획득된 도라지 CAPS 마커는 품종 간의 유전적 유연관계 분석 및 유전적 다양성을 파악하는데 활용될 수 있을 것이며 도라지 분자육종의 기초 자료로 활용도가 높을 것으로 기대된다.
참고문헌 (32)
Aggarwal, R.K., P.S. Hendre, R.K. Varshney, P.R. Bhat, V. Krishnakumar and L. Singh. 2007. Identification, characterization and utilization of EST-derived genic microsatellite markers for genome analyses of coffee and related species. Theor. Appl. Genet. 114(2):359-372.
Bang, K.H., C.G. Park, D.C. Jin, H.S. Kim, H.W. Park, C.H. Park and N.S. Seong. 2003. Discrimination of species specific DNA markers using RAPD and AFLP analysis between Atractylodes japonica Koidz. and Atractylodes macrocephala Koidz. Korean J. Medicinal Crop Sci. 11:268-273.
Drouin, G. and G.A. Dover. 1990. Independent gene evolution in the potato actin gene family demonstrated by phylogenetic procedures for resolving gene conversions and the phylogeny of angiosperm actin genes. J. Mol. Evol. 31(2):132-150.
Huang, S., B. Zhang, D. Milbourne, L. Cardle, G. Yang and J. Guo. 2000. Development of pepper SSR markers from sequence databases. Euphytica 117:163-167.
Jeong, C.H. and K.H. Shim. 2006. Chemical composition and antioxidative activities of Platycodon grandiflorum leaves and stems. Kor. J. Soc. Food Sci. Nutr. 35(5):511-515 (in Korean).
Kang, B.C., S.H. Nahm, J.H. Huh, H.S. Yoo, J.W. Yu, M.H. Lee and M.H. Kim. 2001. An interspecific (Capsicum annuum × C. chinese) F 2 linkage map in pepper using RFLP and AFLP markers. Theor. Appl. Genet. 102:531-539.
Kim, S.C., Y.H. Jung, K.C. Seong, S.J. Chun, C.H. Kim, C.K. Lim, J.H. Joa and D.S. Lee. 2014. Development of a SCAR marker for sex identification in asparagus. Korean J. Plant Res. 27(3):236-241.
Kim, T.W., S.J. Lee, M.B. Kim, C.G. Park, Y.W. Shin, Y.S. Cho and S.W. Lee. 2014. Differentiation of indigenous balloon flower (Platycodon grandiflorum DC.) germ lines in South Korea by using RAPD analyses. J. Plant Biotechnol. 41:19-25 (in Korean).
Konieczny, A. and F.M. Ausubel. 1993. A procedure for mapping arabidopsis mutations using co-dominant ecotype-specific PCR-based markers. Plant J. 4(2):403-410.
Lee, C.B. 1980. Illustrated flora of Korea, Haengmun Press, Seoul, Korea. p. 725.
Lee, J.M., S.H. Nahm, Y.M. Kim and B.D. Kim. 2004. Characterization and molecular genetic mapping of microsatellite loci in pepper. Theor. Appl. Genet. 108:619-627.
Lee, S.I. 1981. Chinese parmaceutics. Sooseowon Press, Seoul, Korea. p. 129.
Lim, K.H. 1971. A Medicinal phytology (The details). Dong Myoung Press, Seoul, Korea. p. 281.
Lin, K.H., H.F. Lo, S.P. Lee, C.G. Kuo, J.T. Chen and W.L., Yeh. 2006. RAPD markers for the identification of yield traits in tomatoes under heat stress via bulked segregant analysis. Hereditas 143:142-154.
Long, W., Y. Li, W. Zhou, H.Q. Ling and S. Zheng. 2013. Sequencebased SSR marker development and their application in defining the introgressions of LA0716 (Solanum pennellii) in the background of cv. M82 (Solanum lycopersicum). PLoS One 8(12):e81091.
Paran, I. and R.W. Michelmore. 1993. Development of reliable PCR based markers linked to downy mildew resistance genes in lettuce. Theor. Appl. Genet. 85:985-993.
Park, C.G. 2006. Classification of Platycodon grandiflorum(JACQ.) A. DC. collections by growth characteristics and RAPD analysis. Department of Agronomy Grauate School, Ph.D. Thesis, Kyungpook National Univ., Korea.
Park, C.G., K.H. Bang, O.T. Kim, D.C. Jin, D.H. Kim, J.S. Sung, N.S. Seong, H.W. Park. and S.C. Lee. 2007. Development of SCAR marker for discriminating between violet flowered lines and white flowered lines in chinese bellflower (Platycodon grandiflorum A.). Kor. J. Medicinal Crop Sci. 15(1):1-5.
Park, S.J., J.W. Kim, S.J. Park and T.J. Kim. 2012. Effects of Platycodon grandiflorum including platycodin DinIgE/Ag-Induced type I hypersensitivity. Life Sci. 22:595-599 (in Korean).
Peremyslov, V.V., T.C. Mockler, S.A. Filichkin, S.E. Fox, P. Jaiswal, K.S. Makarova, E.V. Koonin and V.V. Dolja. 2011. Expression, splicing, and evolution of the myosin gene family in plants. Plant Physiol. 155(3):1191-1204.
Shin, S.S., J.S. Choi and M.K. Huh. 2009. ISSR markers of authentication for korean and chinese Platycodon grandiflorum. Kor. J. Oriental Physiol. Pathol. 23(1):214-218.
Shirasawa, K., S. Isobe, S. Tabata and H. Hirakawa. 2014. Kazusa Marker DataBase: A database for genomics, genetics, and molecular breeding in plants. Breed. Sci. 64(3):264-271.
Son, I.H., Y.H. Park, S.I. Lee, H.D. Yang and H.I. Moon. 2007. Neuroprotective activity of triterpenoid saponins from Platycodi radix against glutamate-induced toxicity in primary cultured rat cortical cells. Molecules 12(5):1147-1152.
Wen, S.S., D.W. He, C.M. Liao, J. Li, G.Q. Wen and X.H. Liu. 2014. Cloning and sequence analysis of an actin gene in aloe. Genet Mol. Res. 13(3):4949-4955.
Yi, G., J.M. Lee, S. Lee, D. Choi and B.D. Kim. 2006. Exploitation of pepper EST-SSRs and an SSR-based linkage map. Theor. Appl. Genet. 114(1):113-130.
Zhang, D., Q. Du, B. Xu, Z. Zhang and B. Li. 2010. The actin multigene family in Populus: organization, expression and phylogenetic analysis. Mol. Genet. Genomics 284(2):105-119.
Korean Statistical Information Service, 2010-2012 Search board: Wild green plants of cities and countries index. Retrieved Oct. 15. 2014. from the World Wide Web: http://kosis.kr/statHtml/statHtml.do?orgId136&tblIdDT_13606_A031&conn_pathI3.
※ AI-Helper는 부적절한 답변을 할 수 있습니다.