$\require{mediawiki-texvc}$

연합인증

연합인증 가입 기관의 연구자들은 소속기관의 인증정보(ID와 암호)를 이용해 다른 대학, 연구기관, 서비스 공급자의 다양한 온라인 자원과 연구 데이터를 이용할 수 있습니다.

이는 여행자가 자국에서 발행 받은 여권으로 세계 각국을 자유롭게 여행할 수 있는 것과 같습니다.

연합인증으로 이용이 가능한 서비스는 NTIS, DataON, Edison, Kafe, Webinar 등이 있습니다.

한번의 인증절차만으로 연합인증 가입 서비스에 추가 로그인 없이 이용이 가능합니다.

다만, 연합인증을 위해서는 최초 1회만 인증 절차가 필요합니다. (회원이 아닐 경우 회원 가입이 필요합니다.)

연합인증 절차는 다음과 같습니다.

최초이용시에는
ScienceON에 로그인 → 연합인증 서비스 접속 → 로그인 (본인 확인 또는 회원가입) → 서비스 이용

그 이후에는
ScienceON 로그인 → 연합인증 서비스 접속 → 서비스 이용

연합인증을 활용하시면 KISTI가 제공하는 다양한 서비스를 편리하게 이용하실 수 있습니다.

GWAS 분석을 이용한 벼 지엽각 관련 SNP 동정 및 발현 분석
Gene expression and SNP identification related to leaf angle traits using a genome-wide association study in rice (Oryza sativa L.) 원문보기

Journal of plant biotechnology = 식물생명공학회지, v.45 no.1, 2018년, pp.17 - 29  

김미선 (충북대학교 식물자원학과) ,  유의수 ((주)DNACARE) ,  강권규 (한경대학교 원예생명과학과) ,  조용구 (충북대학교 식물자원학과)

초록
AI-Helper 아이콘AI-Helper

본 연구에서는 국내외에서 수집한 벼 294개 유전자원 핵심집단을 대상으로 벼의 지엽각 특성에 대한 조사를 수행하였고, GWAS를 이용하여 지엽각 연관 유전자를 추출 및 분석하였다. 표현형 데이터를 이용한 GWAS의 Manhattan plot 결과 분석을 통해, 각 집단에서 염색체를 대상으로 표현형과 통계적 유의성을 나타내 연관성을 보이는 SNP를 발굴하였다. 지엽각 관련 특성에 대하여 선행 연구된 QTL region과의 비교를 통하여 본 연구에서 발굴된 SNP간의 유의성을 조사한 결과, 지엽각과 유의성이 있는 SNP (S8-19815442)가 이미 확인된 QTL region에 위치하는 것으로 나타났으며, 후보유전자 Os08g31950 대해 연관 유전자 변이를 관찰하기 위해서 형질 특이적 품종군 간의 염기서열을 비교한 결과 1개의 지역에서 단일염기변이가 검출되었다. Os08g31950의 조직별 RNA의 상대적 발현량 수준을 비교한 결과, Os08g31950 유전자는 모든 조직에서 높은 발현량을 확인할 수 있었으며 조직별로 다양한 발현 양상을 관찰할 수 있었다. 또한, 모두 직립형 품종군에서 상대적으로 발현량이 높게 나타났으며 뿌리보다 잎에서의 발현율이 높게 나타났다. 본 연구를 통해 동정된 지엽각 연관 후보유전자 Os08g31950는 벼 생육 및 수량 증대에 이용할 수 있는 마커제작 및 육종의 기초자료가 될 것으로 기대된다.

Abstract AI-Helper 아이콘AI-Helper

This study was conducted to investigate a morphological trait in 294 rice accessions including Korean breeding lines. We also carried out a genome-wide association study (GWAS) to detect significant single nucleotide polymorphism markers and candidate genes affecting major agronomic traits. A Manhat...

주제어

AI 본문요약
AI-Helper 아이콘 AI-Helper

* AI 자동 식별 결과로 적합하지 않은 문장이 있을 수 있으니, 이용에 유의하시기 바랍니다.

문제 정의

  • 본 연구에서는 국내외에서 수집한 벼 294개 유전자원 핵심집단을 대상으로 벼의 지엽각 특성에 대한 조사를 수행하였고, GWAS를 이용하여 지엽각 연관 유전자를 추출 및 분석하였다. 표현형 데이터를 이용한 GWAS의 Manhattan plot 결과 분석을 통해, 각 집단에서 염색체를 대상으로 표현형과 통계적 유의성을 나타내 연관성을 보이는 SNP를 발굴하였다.
  • 본 연구에서는 전세계에서 수집한 벼 294개 유전자원 핵심집단을 대상으로 엽 형태 특성에 대한 조사를 수행하였고 GWAS 분석을 실시하여 형질 관련 SNP 마커를 탐색하고, 벼의 생육 및 수량 증대에 이용할 수 있는 유전자원들을 탐색하여 유전체 육종에 필요한 기초자료를 제공하고자 하였다.
본문요약 정보가 도움이 되었나요?

질의응답

핵심어 질문 논문에서 추출한 답변
차세대 염기서열 분석(NGS)이란? 차세대 염기서열 분석(NGS)은 유전체를 수많은 조각으로 나눈 뒤 각각의 염기서열을 조합하여 게놈을 해독하는 기술로써, 지난 십년간 그 분석기술이 비약적으로 발전해왔으며 식물육종분야에 있어서 새로운 혁명을 초래하고 있다(Perezde-Castro et al. 2012; Blawid et al.
NGS 장비의 발달의 효과는? 2017). NGS 장비의 발달은 많은 주요 작물들에 대한 게놈 정보의 해독을 가속화시키고 있으며, 다양한 작물에서 재래종, 야생종 등 resequencing 분석 이나 GBS (genotyping by sequencing)등의 분석 방법으로 데이터를 대량 생산하고 있다. 또한, 벼 유전체 해독 프로젝트 (IRGSP)에 의해 벼의 게놈 해독이 완료됨으로써 표준게놈을 기반으로 한 GWAS를 수행하여 SNP, InDel 등을 단기간에 개발할 수 있게 되었다(Huang et al.
SNP(S8_19815442)의 지엽각의 발현과 관련있는 연구 결과는 어떤 것이 있는가? 3). 이 결과와 관련하여 Kobayashi 등(2003)에 따르면 RIL 집단의 지엽 형질과 관련한 QTL 분석 결과, 9번 염색체를 제외한 11개 염색체에서 총 64개의 QTL이 탐색되었으며 그 중 8번 염색체에서 LOD 4.1로 RFLP 마커인 XNpb187과 XNpb135사이의 엽각 관련 QTL이 발굴되었다. 또한 Cai et al. (2015)에 따르면 ‘인디카/자포니카’ 조합 DH 집단을 이용한 유전자 지도 작성에서 총 30개의 QTL이 탐색되었으며 1번, 2번, 6번, 7번, 8번, 9번, 12번 염색체에서 각각 LOD 값 2 이상의 엽각 관련 QTL이 발굴되었다. 이와 관련하여 본 연구에서는 ‘S8-19815442’ SNP가 이미 확인된 QTL region(17.44 Mbp ~ 26.91 Mbp)에 유사하게 위치하는 것을 확인하였다.
질의응답 정보가 도움이 되었나요?

참고문헌 (50)

  1. Abdula SE et al (2013) Development and identification of transgenic rice lines with abiotic stress tolerance by using a full-length overexpressor gene hunting system. Plant Breed Biotechnol 1:33-48 

  2. Abe A, Kosugi S, Yoshida K, Natsume S, Takagi H, Kanzaki H, Matsumura H, Yoshida K, Mitsuoka C, Tamiru M, Innan H, Cano L, Kamoun S, Terauchi R (2012) Genome sequencing reveals agronomically important loci in rice using MutMap. Nature Biotechnology 30:174-178 

  3. Alexandrov N, Tai S, Wang W, Mansueto L, Palis K, Fuentes RR, Ulat VJ, Chebotarov D, Zhang G, Li Z, Mauleon R, Sackville Hamilton R, McNally KL (2015) SNP-seek database of SNPs derived from 3000 rice genomes. Nucleic Acids Research 43(D1):1023-1027 

  4. Altshule D, Daly MJ, Lander ES (2008) Genetic mapping in human disease. Science 322:881-888. 

  5. Asano K, Takashi T, Miura K, Qian Q, Kitano H, Matsuoka M, Ashikari M (2007) Genetic and molecular analysis of utility of sd1 alleles in rice breeding. Korean Journal of Breeding Science 57:53-58 

  6. Ashikari M, Sakakibara H, Lin S, Yamamoto T, Takashi T, Nishimura A, Angeles ER, Qian Q, Kitano H, Matsuoka M (2005) Cytokinin oxidase regulates rice grain production. Science 309:741-745 

  7. Blawid R, Silva JMF, Nagata T (2017) Discovering and sequencing new plant viral genomes by next-generation sequencing: description of a practical pipeline. Annals of Applied Biology 170:301-314 

  8. Cai J, Zhang M, Guo LB, Li XM, Bao JS, Ma LY (2015) QTLs for rice flag leaf traits in doubled haploid populations in different environments. Genetics and Molecular Research 14(2): 6786-6795 

  9. Castillo-Davis CI, Mekhedov SL, Hartl DL, Koonin EV, Kondrashov FA (2002) Selection for short introns in highly expressed genes. Nature Genetics 31(4):415-418 

  10. Cheong HS, Yoon DH, Kim LH, Park BL, Lee HW, Park BL, Choi YH, Chung ER, Cho YM, Park EW, Cheong IC, Oh SJ, Yi SG, Park TS, Shin HD (2006) Growth hormone-releasing hormone (GHRH) polymorphisms associated with carcass traits of meat in Korean cattle. BMC Genetics 7:35-40 

  11. Cho DS (1975) Studies on the productivity of individual leaf blade of paddy rice. Korean Journal of Breeding Science 18:1-27 

  12. Cho YG, McCouch SR, Kuiper M, Kang MR, Pot J, Groenen JTM, Eun MY (1998) Integrated map of AFLP, SSLP, and RFLP markers using a recombinant inbred population of rice (Oryza sativa L.). Theoretical and Applied Genetics 97:370-380 

  13. Dong Y, Kamiunten H, Ogawa T, Tsuzuki E, Terao H, Lin D, Matsuo M (2004) Mapping of QTLs for leaf developmental behavior in rice (Oryza sativa L.). Euphytica 138:169-175 

  14. Feng Z, Wu C, Wang C, Roh J, Zhang L, Chen J, Zhang S, Zhang H, Yang C, Hu J, You X, Liu X, Yang X, Guo X, Zhang X, Wu F, Terzaghi W, Kim SK, Jiang L, Wan J (2016) SLG controls grain size and leaf angle by modulating brassinosteroid homeostasis in rice. Journal of Experimental Botany 16(14):4341-4253 

  15. Fujino K, Obara M, Sato K (2014) Diversification of the plantspecific hybrid glycine-rich protein (HyGRP) genes in cereals. Plant Science 24:489 

  16. Garg AK, Kim JK, Owens TG, Ranwala AP, Choi YD, Kochian LV, Wu RJ (2002) Trehalose accumulation in rice plants confers high tolerance levels to different abiotic stresses. Proceedings of the National Academy of Sciences of the United States of America 99(25):15898-15903 

  17. Grandori G, Cowley SM, James LP, Eisenman RM (2000) The Myc/Max/Mad network and the transcriptional control of cell behavior. Annual Review of Cell and Developmental Biology 16:653-699 

  18. Heang D, Sassa H (2012) Antagonistic actions of HLH/bHLH proteins are involved in grain length and weight in rice. PLoS One 7:e31325 

  19. Hu WD, Zhang H, Jiang JH, Wang YY, Sun DY, Wang XS, Liang K, Hong DL (2012) Genetic analysis and QTL mapping of large flag leaf angle trait in Japonica rice. Rice Scienc 19(4):277-285 

  20. Huang X, Feng Q, Qian Q, Zhao Q, Wang L, Wang A, Guan J, Fan D, Weng Q, Huang T, Dong G, Sang T, Han B (2009) High-throughput genotyping by whole-genome resequencing. Genome Research 19:1068-1076 

  21. Huang X, Qian Q, Liu Z, Sun H, He S, Luo D, Xia G, Chu C, Li J, Fu X (2009) Natural variation at the DEP1 locus enhances grain yield in rice. Nature Genetics 41:494-497 

  22. Hunter KW, Crawford NPS (2008) The future of mouse QTL mapping to diagnose disease in mice in the age of whole-genome association studies. Annual Review of Genetics 42:131-141 

  23. Jang S, An G, Li HY (2017) Rice leaf angle and grain size are affected by the OsBUL1 transcriptional activator complex. Plant Physiology 173(1):688-702 

  24. Jung KH, Dardick C, Bartley LE, Cao P, Phetsom J, Canlas P, Seo YS, Shultz M, Ouyang S, Yuan Q, Frank BC, Ly E, Zheng L, Jia Y, Hsia AP, An K, Chou HH, Rocke D, Lee GC, Schnable PS, An G, Buell CR, Ronald PC (2008) Refinement of light-responsive transcript lists using rice oligonucleotide arrays: evaluation of gene-redundancy. PLoS ONE 3:e3337 

  25. Kim TS, He Q, Kim KW, Yoon MY, Ra WH, Li FP, Tong W, et al. (2016) Genome-wide resequencing of KRICE_CORE reveals their potential for future breeding, as well as functional and evolutionary studies in the post-genomic era. BMC Genomics 17:408 

  26. Kobayashi S, Fukuta Y, Morita S, Sato T (2003) Quantitative trait loci affecting flag leaf development in rice (Oryza sativa L.). Breeding Science 53:255-262 

  27. Kruglyak L (2008) The road to genome-wide association studies. Nature Reviews Genetics 9(4):314-318 

  28. Kump B, Javornik B (1996) Evaluation of genetic variability among common buckwheat (Fagopyrum esculentum Moench) population by RAPD markers. Plant Science 114:149-158 

  29. Li J (2008) A novel strategy for detecting multiple loci in Genome-Wide Association Studies of complex diseases. International Journal of Bioinformatics Research and Applications 4(2):150-163 

  30. Lipka AE, Tian F, Wang Q, Peiffer J, Li M, Bradbury PJ, Gore MA, Buckler ES, Zhang Z (2012) GAPIT: genome association and prediction integrated tool. Bioinformatics 28:2397-2399 

  31. Ma X, Fu Y, Zhao X, Jiang L, Zhu Z, Gu P, Xu W, Su Z, Sun C, Tan L (2016) Genomic structure analysis of a set of Oryza nivara introgression lines and identification of yield-associated QTLs using whole-genome resequencing. Scientific Reports 6:27425 

  32. Massari ME, Murre C (2000) Helix-loop-helix proteins: regulators of transcription in eukaryotic organisms. Molecular and Cellular Biology 20:429-440 

  33. Nicolae DL, Gamazon E, Zhang W, Duan S, Eileen Dolan M, Cox NJ (2010) Trait-associated SNPs are more likely to be eQTLs: annotation to enhance discovery from GWAS. PLoS Genetics 6(4):e1000888 

  34. Park HS, Ha KY, Kim KY, Kim WJ, Nam JK, Baek MK, Kim JJ, Jeong JM, Cho YC, Lee JH, Kim BK, Ahn SN (2015) Development of high-yielding rice lines and analysis of panicle and yield-related traits using doubled haploid lines derived from the cross between Deuraechan and Boramchan, high-yielding japonica rice cultivars in Korea. Korean Journal of Breeding Science 47:384-402 

  35. Peng B, Kong HL, Li YB, Wang LQ, Zhong M, Sun L, Gao GJ, Zhang QL, Luo LJ, Wang GW, Xie WB, Chen JX, Yao W, Peng Y, Lei L, Lian XM, Xiao JH, Xu CG, Li XH, He YQ (2014) OsAAP6 functions as an important regulator of grain protein content and nutritional quality in rice. Nature Communications 5:4847 

  36. Perez-de-Castro AM, Vilanova S, Canizares J, Pascual L, Blanca JM, Diez MJ, Prohens J, Pico B (2012) Application of genomic tools in plant breeding. Current Genomics 13:179-195 

  37. Sakai H, Kanamori H, Arai-Kichise Y, Shibata-Hatta M, Ebana K, Oono Y, Kurita K, et al. (2014) Construction of pseudomolecule sequences of the Aus rice cultivar kasalath for comparative genomics of asian cultivated rice. DNA research 21(4):397-405 

  38. Schatz MC, Maron LG, Stein JC, Wences AH, Gurtowski J, Biggers E, Lee H, et al. (2014) New whole genome de nomo assemblies of three divergent strains of rice (O. sativa) documents novel gene space of aus and indica. bioRxiv doi:http://dx.doi.org/10.1101/003764 

  39. Shabalina SA, Spiridonov NA (2004) The mammalian transcriptome and the function of non-coding DNA sequences. Genome Biology 5(4):105 

  40. Sladek R, Rocheleau G, Rung J, Dina C, Shen L, Serre D, Boutin P (2007) A genome-wide association study identifies novel risk loci for type 2 diabetes. Nature 445(7130):881-885 

  41. Su JJ, Pang CY, Wei HL, Li LB, Liang B, Wang CX, Song MZ, Wang HT, Zhao SQ, Jia XY, Mao GZ, Huang L, Geng DD, Wang CS, Fan SL, Yu SX (2016) Identification of favorable SNP alleles and candidate genes fortraits related to early maturity via GWAS in upland cotton. BMC Genomics 17:687 

  42. Sugimoto K, Takeuchi Y, Ebana K, Miyao A, Hirochika H, Hara N, Ishiyama K, Kobayashi M, Ban Y, Hattori T, Yano M (2010) Molecular coloning of Sdr4, a regulator incolced in seed dormancy and domestication of rice. Preceedings of the National Academy of Sciences of the United States of America 107:5792-5797 

  43. Takagi H, Uemura A, Yaegashi H, Tamiru M, Abe A, Mitsuoka C, Utsushi H, et al. (2013) MutMap-Gap: whole-genome resequencing of mutant F2 progeny bulk combined with de novo assembly of gap regions identifies the rice blast resistance gene Pii. New Phytoloist 200:276-283 

  44. Tanaka A, Nakagawa H, Tomita C, Shimatani Z, Ohtake M, Nomura T, Jiang CJ, Dubouzet JG, Kikuchi S, Sekimoto H (2009) BRASSINOSTEROID UPREGULATED1, encoding a helix-loop-helix protein, is a novel gene involved in brassinosteroid signaling and controls bending of the lamina joint in rice. Plant Physiology 151:669-680 

  45. Toledo-Ortiz G, Huq E, Quail PH (2003) The Arabidopsis basic/helix-loop-helix transcription factor family. Plant Cell 15:1749-1770 

  46. Wallace C, Newhouse SJ, Braund P, Zhang F, Tobin M, Falchi M, Ahmadi K, et al. (2008) Genome-wide association study identifies genes for biomarkers of cardiovascular disease: serum urate and dyslipidemia. American Journal of Human Genetics 82(1):139-149 

  47. Weedon MN, Lettre G, Freathy RM, Lindgren GM, Voight BF, Perry JR, Elliott KS, et al. (2007) A common variant of HMGA2 is associated with adult and childhood height in the general population. Nature Genetics 39(10):1245-1250 

  48. Y H, Feng J, Zhang L, Zhang J, Mispan MS, Cao Z, Yang J, Beighley DH, Gu X (2015) Map-based cloning of qSD1-2 identified a gibberellin synthesis gene regulating the development of endosperm-imposed dormancy in rice. Plant Physiology 169:152-165 

  49. Zhang LY, Bai MY, Wu J, Zhu JY, Wang H, Zhang Z, Wang W, Sun Y, Zhao J, Sun X (2009) Antagonistic HLH/bHLH transcription factors mediate brassinosteroid regulation of cell elongation and plant development in rice and Arabidopsis. Plant Cell 21:3767-3780 

  50. Zhang Z, Ersoz E, Lai CQ, Todhunter RJ, Tiwari HK, Gore MA, Bradbury PJ, Yu J, Arnett DK, Ordovas JM, Buckler ES (2010) Mixed linear model approach adapted for genome-wide association studies. Nature Genetics 42:355-360 

저자의 다른 논문 :

LOADING...

관련 콘텐츠

오픈액세스(OA) 유형

GOLD

오픈액세스 학술지에 출판된 논문

섹션별 컨텐츠 바로가기

AI-Helper ※ AI-Helper는 오픈소스 모델을 사용합니다.

AI-Helper 아이콘
AI-Helper
안녕하세요, AI-Helper입니다. 좌측 "선택된 텍스트"에서 텍스트를 선택하여 요약, 번역, 용어설명을 실행하세요.
※ AI-Helper는 부적절한 답변을 할 수 있습니다.

선택된 텍스트

맨위로